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棘梢斑螟危害對樟子松球果象甲SOD活性的影響

2014-09-14 08:53:10張秋爽張國珍李大波張國財
中國林副特產 2014年2期
關鍵詞:危害植物

張秋爽,張國珍*,李大波,張國財

(1.東北林業大學,哈爾濱150040;2.紅花爾基林業局)

在植物生存環境受到諸如干旱、溫度、病蟲害、土壤pH、金屬的脅迫時,就會產生大量活性氧,活性氧量與抗氧化系統間的平衡就會被打破,對植物造成損傷[1]。在環境脅迫初期,植物體內的抗氧化物質上升,自身會產生一定的保護性反應,酶促防御系統和非酶促防御系統就會發揮作用[2]。植物體內通過SOD、CAT和POD同工酶的相互協調配合,可清除過剩的自由基,使體內自由基維持正常的動態平衡,提高植物抗逆性。SOD的主要功能是特異性的催化超氧陰離子的歧化反應,對防止活性氧對機體的傷害及防御機體衰老有十分重要的作用[3]。在植物中存在Cu·Zn-SOD、Mn-SOD和Fe-SOD三種。測定SOD的方法有NBT光化還原法、超氧化鉀直接測定法、鄰苯三酚自氧化法和黃嘌呤氧化酶法等[4]。

本試驗采用黃嘌呤氧化酶法,對遭受棘梢斑螟[5]危害的樟子松球果中的SOD活性進行測定,以確定最佳測定條件。

1 試驗材料

1.1 球果:采自內蒙古紅花爾基林業局林場,按危害程度不同,分成4個等級,健康的為0級,表面有輕微取食痕跡的為1級,中度危害(表面能看到兩個取食孔)為2級,重度危害(表面有3個或3個以上取食孔,球果表面產生變色現象)為3級。

1.2 試劑:磷酸二氫鉀、氫氧化鈉、冰醋酸、考馬斯亮藍G-250、95%乙醇、85% H3PO4、標準牛血清蛋白、氯化鈉、雙蒸水、碳酸鈣、石英砂、SOD測試盒(南京建成)。

1.3 儀器設備:研缽、離心機、分析天平、電熱恒溫水浴鍋、移液器、1cm光徑比色皿、紫外分光光度儀。

2 試驗方法

2.1 試驗流程

2.1.1 相同危害等級的球果樣品混在一起,準確稱取樟子松球果2g,加入8mL 0.1mL/L pH=7.2的磷酸鹽緩沖液,加少量碳酸鈣和石英砂,冰浴下研磨成勻漿,制備成20%的勻漿液,3500~4000r/min離心10min,取上清液待測。

2.1.2 按下表加入試劑,應用液要現用現配。

表1 SOD活性測定流程 mL

混勻,室溫放置10min后,于波長550nm處,1cm光徑比色皿,用雙蒸水調零,進行比色。

2.2 最佳取樣量確定

由于酶的百分抑制率與酶的活力呈拋物線關系,抑制率在15%~55%基本為正比關系,因此最佳取樣量應控制在15%~55%,以45%左右為最佳。

抑制率R=(對照OD值—測定OD值)/對照OD值

2.3 顯色時間對SOD活力的影響

有時由于實驗量等因素的影響,導致不能及時測定樣品的吸光度,故設計不同顯色時間。在混勻后,分別于室溫放置10、15、20min測定吸光度,用SPSS17.0軟件進行差異顯著性分析。

2.4 試驗的可重復性

取10個健康球果樣品進行3平行試驗,計算變異系數。

2.5 總SOD活力計算

2.5.1 根據組織濕重進行換算

以每克組織在1mL反應液中SOD抑制率達50%時所對應的SOD量為一個SOD活力單位(U)。

注:R為抑制率;V1為反應液總體積(mL);V2為取樣量(mL);勻漿液濃度(g/mL)C1=(組織濕重(g))/(勻漿介質體積(mL))

2.5.2 根據蛋白濃度進行換算

蛋白質含量測定采用考馬斯亮藍法。以每毫克組織蛋白在1mL反應液中SOD抑制率達50%時所對應的SOD量為1個SOD活力單位(U)。

注:R為抑制率;V1為反應液總體積(mL);V2為取樣量(mL);C2為待測樣本蛋白濃度(mgprot/mL);mgprot為毫克蛋白數。

3 試驗結果

3.1 最佳取樣量確定

表2 不同取樣量下SOD抑制率

因此,取樣量定為80μL。

3.2 顯色時間對SOD活力的影響

顯色10、15、20min所測OD值,進行單因素ANOVA分析,P值為0.859>0.05,差異不顯著,因此顯色時間對SOD活力影響不大。

3.3 可重復性

測定結果,吸光度OD=0.337±0.007,P值為0.336,樣品間差異不顯著;變異系數CV為(1.19±0.11)%,可見該方法可重復性良好。

3.4 用不同方法計算總SOD活力

3.4.1 組織濕重法

圖1 組織濕重法SOD總活力趨勢圖

用組織濕重法表示總SOD活力,隨危害等級的增加,總SOD活力呈現先上升后下降的趨勢,危害等級為2級時總SOD活力最高,3級時雖有所下降但仍高于0級。顯著性檢驗時,P值為0.000,說明不同危害等級的球果SOD活力差異極其顯著。

3.4.2 用蛋白濃度表示總SOD活力

蛋白濃度標準曲線y=.0069x,R2=0.999

表3 不同危害等級的球果中蛋白濃度

圖2 蛋白濃度法SOD總活力趨勢圖

用蛋白濃度法表示SOD總活力,結果與組織濕重法基本一致,可以排除蛋白質的存在對測定結果的干擾。顯著性檢驗,P值為0.000,說明不同危害等級的球果SOD活力差異極其顯著。

4 結論

樟子松是我國固沙造林地區重要的造林樹種之一,具有耐瘠、耐旱、防風、固沙特點[6]。在遭受棘梢斑螟危害后,樟子松球果SOD活性發生顯著變化。結果表明,隨危害等級的增加,總SOD活力呈現先上升后下降的趨勢,危害等級為2級時總SOD活力最高,為108.51U/mg prot,危害等級為3級時總SOD活力82.36 U/mg prot,雖有所下降但仍高于0級的74.74 U/mg prot,說明樟子松在逆境(蟲害)條件下,發生明顯的防御反應,來降低自身的損傷。采用黃嘌呤氧化酶法[7]測定樟子松球果總SOD活力,應用液與顯色劑需現配現用,最佳取樣量為80μl,此時SOD抑制率為46.5%,線性關系最佳,測定效果好,該方法顯色穩定,可重復性強,適用于樟子松球果總SOD活力測定。研究結果可為樹種抗性選優提供理論依據,在害蟲綜合治理中,利用植物本身的抗蟲性是重要的策略[8]。

[1]喻方圓,徐錫增.植物逆境生理研究進展[J].世界林業研究, 2003, 16(5): 6-11.

[2]萬東石,李紅玉,周攻克,等.蟲害對不同水分條件胡楊披針形葉活性氧代謝的影響[J].2004,15(5):849-852.

[3]陳鴻鵬,譚曉風.超氧化物歧化酶 (SOD) 研究綜述[J].經濟林研究, 2007, 25(1): 59-65.

[4]李合生.植物生理生化實驗原理和技術[M].北京:高等教育出版社, 2000.

[5]樸哲浩,孫玉芬,張永衛.樟子松種實害蟲防治的初步探討[J].內蒙古林業, 2004, 2: 25-26.

[6]康宏樟,朱教君,李智輝,等.沙地樟子松天然分布與引種栽培[J].生態學雜志,2004,23(5): 134-139.

[7]翁閃凡,張曉林.黃嘌呤氧化酶法優化大鼠血清SOD測定條件的探討[J].佛山科學技術學院學報: 自然科學版, 2011, 29(3): 67-67.

[8]劉井蘭,楊霞,吳進才.褐飛虱侵害對水稻葉片,根SOD活性及丙二醛含量的影響[J].應用昆蟲學報, 2011, 48(5):1387-1393.

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