周成江,張 姝,姜樹原,黃麗華,呂國蔚,張顏波,吉訓明,邵 國,,*
(1.包頭醫(yī)學院 生物醫(yī)學研究中心 基礎(chǔ)醫(yī)學部, 內(nèi)蒙古 包頭 014010;2.首都醫(yī)科大學低氧醫(yī)學研究所,北京 100069; 3.泰山醫(yī)學院 附屬醫(yī)院 神經(jīng)內(nèi)科, 山東 泰安 217000; 4.首都醫(yī)科大學附屬宣武醫(yī)學院 低氧醫(yī)學研究所, 北京 100053)
研究論文
DNA甲基轉(zhuǎn)移酶1、3A和3B在低氧預適應小鼠大腦中的表達
周成江1#,張 姝1#,姜樹原1,黃麗華1,呂國蔚2,張顏波3,吉訓明4,邵 國1,2,4*
(1.包頭醫(yī)學院 生物醫(yī)學研究中心 基礎(chǔ)醫(yī)學部, 內(nèi)蒙古 包頭 014010;2.首都醫(yī)科大學低氧醫(yī)學研究所,北京 100069; 3.泰山醫(yī)學院 附屬醫(yī)院 神經(jīng)內(nèi)科, 山東 泰安 217000; 4.首都醫(yī)科大學附屬宣武醫(yī)學院 低氧醫(yī)學研究所, 北京 100053)
目的研究DNA甲基轉(zhuǎn)移酶(DNMT)1、3A和3B在低氧預適應小鼠大腦中的變化,探討低氧預適應形成過程中DNMTs的變化與腦保護作用的關(guān)系。方法小鼠隨機分成常氧組(H0)、低氧1次組(H1)或4次組(H4),取大腦皮質(zhì)組織,應用實時定量PCR 技術(shù)、免疫印跡技術(shù)和DNA甲基轉(zhuǎn)移酶活性檢測DNMT1、DNMT3A和DNMT3B mRNA和蛋白質(zhì)及DNMT活性。結(jié)果H1組和H4組DNMT3A和DNMT3B的mRNA和蛋白質(zhì)水平較H0組顯著降低(Plt;0.05),H4組DNMT活性較H0組降低(Plt;0.05)。結(jié)論DNMT3A和3B水平及DNMT活力的變化可能與低氧預適應小鼠獲得腦保護的關(guān)系密切。
低氧預適應;大腦;DNA甲基轉(zhuǎn)移酶;小鼠
低氧預適應的細胞組織機制的理論于上世紀60年代被提出[1],這種組織和細胞機制是在極端條件下,細胞面臨生死抉擇時的基因表達的變化,而調(diào)控這些基因變化很可能涉及表觀遺傳學。表觀遺傳學指基因在不改變序列情況下如何與環(huán)境相互作用產(chǎn)生特定的表型[2]。低氧耐受的內(nèi)源性機制很可能是組織細胞在低氧特定環(huán)境下基因表達的變化。DNA甲基化是表觀遺傳修飾的一種重要方式,催化該反應的酶為DNA(胞嘧啶-C5)甲基轉(zhuǎn)移酶(DNMT)。研究顯示DNMT1的蛋白水平降低可以保護神經(jīng)元的缺血損傷[3]。因此DNMTs很可能是極端條件下細胞面臨生死抉擇時調(diào)節(jié)基因表達的重要分子。本研究利用急性重復低氧小鼠模型,研究成年小鼠大腦皮質(zhì)組織DNMTs的變化,探討其與神經(jīng)細胞保護的關(guān)系。
1.1 動物及試劑
清潔級18~22 g雄性昆明小鼠(6~8周)內(nèi)蒙古大學實驗動物中心,合格證號:SCXK(蒙)2002;trizol,superscript Ⅲ(Invitrogen 公司);2× real-time PCR Mix(Roche公司);兔源DNMT、DNMT3A和DNMT3B多克隆抗體(Santa Cruze公司);鼠源β-actin單克隆抗體(Sigma公司);辣根過氧化物酶標記羊抗兔二抗和驢抗鼠二抗(北京博奧森生物技術(shù)有限公司);BCA 試劑(Pierce公司);EpiQuik Nuclear Extraction Kit和EpiQuik DNMT activity/inhibition assay Ultra kit(Epigentek公司);其余試劑為國產(chǎn)試劑。
1.2 動物模型復制
將小鼠隨機分為3組: 對照組(H0), 低氧1次組(H1)和 低氧4次組(H4)。低氧4次組的低氧耐受時間為(78.7±7.9)min,顯示成功復制了急性重復低氧小鼠模型。低氧結(jié)束后立即斷頭取大腦皮質(zhì)組織,-70 ℃凍存?zhèn)溆谩?/p>
1.3 RNA提取及實時定量PCR
按照說明書方法提取小鼠大腦皮質(zhì)總RNA,紫外分光光度計檢測RNA純度和含量。取2 μg RNA按照反轉(zhuǎn)錄反應試劑盒進行反轉(zhuǎn)錄PCR,得到20 μL cDNA產(chǎn)物-20 ℃保存。使用ABI的96孔板進行PCR反應,每孔依次加入2×real-time PCR Mix 12.5 μL,cDNA 1 μL,上游和下游引物各1 μL(引物序列見下表),加雙蒸水至25 μL,在ABI 7900 real-time PCR反應儀上反應,每個樣本設(shè)3個復孔。反應參數(shù):94 ℃預變性3 min,再進行92 ℃,30 s;54.5 ℃,35 s;72 ℃,30 s(40 cycles),最后72 ℃延伸5 min停止反應。實時定量PCR結(jié)果以ΔΔCT法計算,用均數(shù)±標準差表示數(shù)值。
1.4 免疫印記
使用RIAP緩沖液裂解皮質(zhì)組織, 用BCA試劑測定蛋白含量, 通過電泳緩沖液調(diào)整各組含量為4 μg/μL,每個樣本上樣量為80 μg, 在10% 聚丙烯酰胺凝膠(SDS-PAGE)進行電泳后轉(zhuǎn)移至聚偏二氟乙烯膜(PVDF膜), 預染蛋白標準分子質(zhì)量確定蛋白分子質(zhì)量標準位置。 用含10%脫脂奶粉Tris Tween鹽緩沖液(TTBS)液封閉, TTBS洗10 min×3;加入1抗,4 ℃振蕩孵育過夜,TTBS洗10 min×3;1比10 000加入辣根過氧化物酶標記相應的二抗,37 ℃振蕩孵育1 h, TTBS洗10 min×3;按Pierce公司的ECL試劑盒進行熒光顯色反應。暗室中曝光,顯影,定影。用分析軟件bandscan分析每個條帶的吸光度值,以目的蛋白豐度/β-actin蛋白吸光度比值的均數(shù)±標準差來表示。
1.5 DNMT活力實驗
按照試劑盒說明提取核蛋白及檢測小鼠大腦皮質(zhì)組織DNMT活力。
1.6 統(tǒng)計學分析
結(jié)果以均數(shù)±標準差表示,用SPSS10.0數(shù)據(jù)統(tǒng)計軟件ANOVA和Tukey對組間數(shù)據(jù)進行處理和分析。

名稱正向引物反向引物DNMT1F:5′?ACTCTGACAAAAAGGATGCACC?3′R:5′?CAAGGGCGAACCTTCTTGG?3′DNMT3AF:5′?GGCCGAATTGTGTCTTGGTG?3′R:5′?CCATCTCCGAACCACATGAC?3′DNMT3BF:5′?AAGCTCCCGGCTGTCTAAGA?3′R:5′?CTGCGTGTAATTCAGAAGGCT?3′β?actinF:5′?GGCTGTATTCCCCTCCATCG?3′R:5′?CCAGTTGGTAACAATGCCATGT?3′
2.1 mRNA的檢測
各組間未見DNMT1 mRNA有差異,H0組DNMT3A 和DNMT3B mRNA高于H1和H4組(表1)。
2.2 DNMT蛋白的檢測
各組間未見DNMT1 蛋白表達有差異。H1組和H4組較H0組DNMT3A和DNMT3B顯著性降低 (Plt;0.05)(圖1)。
2.3 DNMT活性的檢查
H0組、H1組和H4組大腦皮質(zhì)組織中DNMT的活性,H0組的活性為0.33±0.018, H1組的活性為0.31±0.023,H4組的活性為0.29±0.010(Plt;0.05, H4vsH0,n=6),急性重復低氧預適應使DNMT的活性降低(圖2)。
急性重復低氧預適應小鼠的顯著特征是低氧耐受時間呈線性增加[4-7],同時伴有大量基因表達的改變[6]。研究發(fā)現(xiàn)還低氧預適應可以使小鼠空間學習記憶能力增加[7]。表觀遺傳學機制在正常的大腦功能和異常的神經(jīng)現(xiàn)象中的作用已有報道[8],研究報道DNMTS/1小鼠對溫和的缺血損傷有耐受[9],DNMT1的蛋白水平降低可以保護神經(jīng)元的缺血損傷[3]。DNMT變化意味著其在低氧環(huán)境下維持大腦功能方面有重要作用。
*Plt;0.05 compared with H0.

*Plt;0.05 compared with H0圖1 免疫印跡分析DNMT1、DNMT3A 和DNMT3B在小鼠大腦皮質(zhì)中的表達

*Plt;0.05 compared with H0圖2 H0、H1和H4組小鼠大腦皮層中DNMT活性Fig 2 DNMT activity in the cerebral cortex of the mice in H0、H1 and H4(n=6)
研究顯示蒙古沙鼠經(jīng)短暫全腦缺血處理后6、12和24 h神經(jīng)元DNMT1不發(fā)生變化,缺血處理后2、4、5和7 d神經(jīng)元DNMT1降低[10]。因此DNMT在缺血/低氧耐受中必定扮演了重要角色。雖然本研究中DNMT1的mRNA和蛋白質(zhì)在H0、H1和H4組小鼠之間沒有顯著差異。根據(jù)研究報道可以推論DNMT1在低氧條件下的變化可能有時間依賴性[10],由于本研究的H1組和H4組與的低氧暴露時間均低于24 h,所以DNMT1在急性重復低氧耐受中的作用可能不是主要的。本研究顯示急性重復低氧使DNMT3A和DNMT3B在mRNA和蛋白水平表達均降低,DNMT活性也發(fā)生了降低。DNMT活性的變化從另一個側(cè)面驗證了低氧預適應過程中DNMT3A和DNMT3B的變化。DNMT3A和DNMT3B的功能是DNA甲基化的重頭合成,DNMT3A和DNMT3B在急性重復低氧下的變化可能意味著新的DNA甲基化模式的建立。根據(jù)“好的基因?qū)箟牡幕颉崩碚揫9],新的DNA甲基化模式使“好的基因”表達增加并提高了神經(jīng)細胞對缺血/低氧的耐受。
急性重復低氧預適應的細胞組織分子機制可能是使腦保護基因“好的基因”表達上調(diào)并使腦損傷基因“壞的基因”表達下調(diào)[6],而DNMT在腦保護作用中的可能是通過調(diào)節(jié)腦保護基因“好的基因”和腦損傷基因“壞的基因”實現(xiàn)的。本研究中急性重復低氧預適應小鼠海馬中DNMT3A和DNMT3B表達降低及DNMT活性降低可能是急性重復低氧預適應腦保護獲得的重要步驟。DNMT抑制劑5-Aza-dC處理后發(fā)現(xiàn)神經(jīng)細胞可以提高對缺血的耐受[11]和DNMT1的蛋白水平降低可以保護神經(jīng)元的缺血損傷顯示DNMT在神經(jīng)細胞缺血/低氧耐受中具有重要作用[3]。而要明確DNMT1、DNMT3A和DNMT3B在腦保護中的作用則需要更深入的研究。
[1] Lu GW. Tissue-cell Adaptation to hypoxia [J]. Adv Pathophy, 1963, 1:197-239.
[2] Mimura I, Tanaka T, Wada Y,etal. Pathophysiological response to hypoxia-from the molecular mechanisms of malady to drug discovery: epigenetic regulation of the hypoxic response via hypoxia-inducible factor and histone modifying enzymes [J]. J Pharmacol Sci, 2011, 115:453-458.
[3] Endres M, Fan G, Meisel A,etal. Effects of cerebral ischemia in mice lacking DNA methyltransferase 1 in post-mitotic neurons [J]. Neuroreport, 2001, 12:3763-3766.
[4] Shao G, Gao CY, Lu GW. Alterations of hypoxia-inducible factor-1 alpha in the hippocampus of mice acutely and repeatedly exposed to hypoxia [J]. Neurosignals, 2005, 14:255-261.
[5] Shao G, Gong KR, Li J,etal. Antihypoxic effects of neuroglobin in hypoxia-preconditioned mice and SH-SY5Y cells [J]. Neurosignals, 2009, 17:196-202.
[6] Shao G, Lu GW. Hypoxic preconditioning in an autohypoxic animal model [J]. Neurosci Bull, 2012, 28:316-320.
[7] Shao G, Zhang R, Wang ZL,etal. Hypoxic preconditioning improves spatial cognitive ability in mice [J]. Neurosignals, 2006, 15:314-321.
[8] Rana G, Donizetti A, Virelli G,etal. Cortical spreading depression differentially affects lysine methylation of H3 histone at neuroprotective genes and retrotransposon sequences [J]. Brain Res, 2012, 1467:113-119.
[9] Endres M, Meisel A, Biniszkiewicz D,etal. DNA methyltransferase contributes to delayed ischemic brain injury [J]. J Neurosci, 2000, 20:3175-3181.
[10] Lee JC, Park JH, Yan BC,etal. Effects of Transient Cerebral Ischemia on the Expression of DNA Methyltransferase 1 in the Gerbil Hippocampal CA1 Region [J]. Neurochem Res, 2013, 38:74-81.
[11] Liu PK, Hsu CY, Dizdaroglu M,etal. Damage, repair, and mutagenesis in nuclear genes after mouse forebrain ischemia-reperfusion [J]. J Neurosci, 1996, 16:6795-6806.
The expression of DNA methyltransferases 1, 3A and 3B in the brain of hypoxic preconditioned mice
ZHOU Cheng-jiang1#, ZHANG Shu1#, JIANG Shu-yuan1, HUANG Li-hua1, Lü Guo-wei2,ZHANG Yan-bo3, JI Xun-ming4, SHAO Guo1,2,4*
(1.Biomedicine Research Center and Basic Medical Department, BaoTou Medical College, Baotou 014010; 2.Institute for Hypoxia Medicine,Capital Medical University, Beijing 100069; 3.Dept. of Neurology, Affiliated Hospital of Taishan Medical College, Tai’an 271000;4.Institute for Hypoxia Medicine, Xuanwu Hospital, Capital Medical University, Beijing 100053,China)
ObjectiveTo study the changes of DNA methyltransferases (DNMT) in the brain of mouse with acute hypoxia.MethodsMice were randomly divided into control group (H0), hypoxia group (H1) and hypoxia for 4 runs group (H4). Real-time PCR, Western blot and methyltransferase activity assay were used to detect the changes of three kinds of DNMTs.ResultsmRNA and protein levels of DNMT3A and DNMT3B were found to be decreased in H1 and H4 (Plt;0.05). The activity of DNA methyltransferase was decreased in H4(Plt;0.05).ConclusionsThe changes of DNA methyltransferase may be closely related to protection of the brain in hypoxic preconditioned mice.
hypoxic preconditioning; brain; DNA methyltransferase; mouse
2013-04-02
2013-08-17
國家自然科學基金(81060212,81160244,81360316);內(nèi)蒙古自然科學基金(2010BS1104);中國博士后基金(20080430851);內(nèi)蒙古自治區(qū)高等學校科研項目(NJZY12221,NJZY12225);內(nèi)蒙古自治區(qū)高等學校青年科技英才支持計劃資助(NJYT-13-A10);教育部留學回國人員科研啟動基金(46批)
*通信作者:shao_guo_china@163.com
#對本文有相同貢獻
1001-6325(2014)02-0151-04
R339.5
A