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小鼠胚胎冷凍保存條件探究

2014-12-12 12:04:01張立蘋曹輝劉西梅畢延震肖紅衛(wèi)
湖北農(nóng)業(yè)科學(xué) 2014年20期
關(guān)鍵詞:小鼠

張立蘋+曹輝+劉西梅+畢延震+肖紅衛(wèi)+李莉+華再東+華文君

摘要:為探索在實驗室條件下最佳的小鼠胚胎冷凍保存條件。對不同發(fā)育階段小鼠胚胎按照同一個冷凍程序進行冷凍;兩個不同的冷凍程序?qū)ν粋€發(fā)育階段的小鼠胚胎進行冷凍。結(jié)果表明,-7 ℃平衡10 min,然后以0.3 ℃/min的速率迅速降至-35℃,-35 ℃平衡5 min后投入液氮中,此冷凍程序比較適合小鼠胚胎冷凍;冷凍保存對16細胞以上的小鼠胚胎影響較小。

關(guān)鍵詞:小鼠;胚胎;冷凍保存

中圖分類號:Q954.4 ? ? ? ?文獻標識碼:A ? ? ? ?文章編號:0439-8114(2014)20-4915-02

DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2014.20.037

Cryopreservation Conditions for Mouse Embryo

ZHANG Li-ping1,CAO Hui2,LIU Xi-mei1,BI Yan-zhen1,XIAO Hong-wei1,LI Li1,HUA Zai-dong1,HUA Wen-jun1

(1.Institute of Animal and Veterinary Science/ Hubei Key Laboratory of Animal Embryo Engineering and Molecular Breeding, Hubei Academy of Agriculture Sciences,Wuhan 430064,China; 2.Pulike Biological Engineering Inc., Luoyang 471000, Henan, China)

Abstract: The optimal cryopreservation conditions of growth stage and cryopreservation process for mouse embryo were investigated. The results showed that the optimal program was putting the embry into -7 ℃ for 10 min, then cooling rate to -35℃ with -0.3 ℃/min, after holding for 5 min, putting it into liquid nitrogen for cryopreservation. It had a small effect on the embryos with more than 16-cell.

Key words: mouse; embryo; cryopreservation

小鼠胚胎冷凍體外受精胚胎移植自1972年Whittingham等[1]首次用液氮冷凍保存小鼠胚胎成功后,哺乳動物胚胎冷凍保存技術(shù)取得了飛躍的進展,在畜牧業(yè)和實驗動物種質(zhì)保存中發(fā)揮了巨大的作用。隨著遺傳工程小鼠的大量出現(xiàn),建立一種常規(guī)的安全可靠的胚胎冷凍方法保存這些極其珍貴的遺傳資源至關(guān)重要。本試驗對影響小鼠受精胚胎冷凍因素進行了對比,旨在尋找在本實驗室條件下最佳的小鼠胚胎冷凍條件,建立一種適合于本實驗室的無需專業(yè)實驗室人員即可操作的快速簡便的動物胚胎冷凍方法,從而用于指導(dǎo)實踐。

1 ?材料與方法

1.1 ?小鼠胚胎的獲取

6~10周齡昆明白雌鼠控光(14 h光照,10 h黑暗)飼養(yǎng)1~2周后,腹腔注射10 IU/支PMSG(寧波激素制品廠)46~48 h腹腔注射10 IU/支hCG(寧波激素制品廠)進行超排。注射hCG后與雄鼠合籠,次日早晨檢查陰道栓。

見栓雌鼠分別于注射hCG后52~54 h、65~66 h和77 ~78 h處死,采集4-cell、8-cell和16-cell以上細胞。

1.2 ?胚胎冷凍

冷凍液為從乙二醇(Ethylene glycol,EG)冷凍液(直接從北京市譚河科技開發(fā)中心購買,貨號TH044)。先將胚胎移入已經(jīng)預(yù)熱過的EG中室溫平衡5 min,再裝入0.25 mL的塑料細管中,每管2~5個胚胎。將裝有胚胎的塑料細管放入冷凍儀(planer,英國)中,按照試驗設(shè)計的程序運行。運行完畢后,迅速投入液氮罐中保存。

1.3 ?胚胎解凍

胚胎冷凍保存1周后解凍。自液氮罐中取出塑料細管,室溫下于空氣中停留數(shù)秒后置入盛有32 ℃水浴的燒杯中,停留數(shù)秒。取出細管,將解凍后的胚胎推入平皿中,再移入已經(jīng)預(yù)熱的M16,用M16洗3次以便徹底去除EG。

1.4 ?胚胎培養(yǎng)

培養(yǎng)液為M16(Sigma),提前2 h將M16做50 μL微滴并覆蓋石蠟油,放入CO2培養(yǎng)箱中平衡。將解凍胚胎移入培養(yǎng)微滴中,10~15枚/滴,放入37.5 ℃、5% CO2、飽和濕度的培養(yǎng)箱內(nèi)進行培養(yǎng)并記錄發(fā)育率和囊胚發(fā)育率。

1.5 ?胚胎細胞計數(shù)

將胚胎移入含10 μg/mL的Hoechst33342的M2中處理10 min,后在熒光顯微鏡下觀察,記錄胚胎細胞數(shù)。

1.6 ?試驗設(shè)計

1)對不同發(fā)育階段(4-cell、8-cell、16-cell以上)小鼠胚胎按照同一個冷凍程序進行冷凍,解凍后比較3個發(fā)育階段小鼠胚胎的發(fā)育率和囊胚率。

2)采用兩個不同的冷凍程序?qū)ν粋€發(fā)育階段的小鼠胚胎進行冷凍,程序1:-7 ℃平衡10 min,然后以0.3 ℃/min的速率迅速降至-35 ℃,-35 ℃平衡5 min后投入液氮中;程序2:5℃平衡5 min,后以0.2 ℃/min的速率降至-7 ℃,-7 ℃平衡5 min,以0.5 ℃/min速率降至-30 ℃,-30 ℃平衡5 min后投入液氮中。解凍后比較兩個冷凍程序?qū)ν粋€發(fā)育階段小鼠胚胎的影響。

2 ?結(jié)果與分析

2.1 ?冷凍對不同發(fā)育階段小鼠胚胎的影響

從表1可以看出,冷凍對不同發(fā)育階段小鼠胚胎的影響有明顯差異(P<0.05),其中解凍后胚胎(4-cell、8-cell、16-cell)發(fā)育率分別為10.0%、35.2%、84.2%;囊胚發(fā)育率(4-cell、8-cell、16-cell)分別為0%、45.5%、62.5%。

2.2 ?冷凍程序?qū)π∈笈咛サ挠绊?/p>

從表2可以看出,冷凍程序?qū)π∈笈咛ダ鋬龊笥绊戯@著(p<0.05),程序1、程序2解凍后胚胎發(fā)育率分別為84.2%、60.2%,囊胚率分別為62.5%、36.2%。

3 ?討論

胚胎冷凍是長期保存動物種質(zhì)資源的一項實用技術(shù)。胚胎冷凍技術(shù)的發(fā)展和應(yīng)用減少了時間和空間對胚胎操作造成的限制,并可有效避免因家畜的活體運輸所造成的疾病傳播。以前,小鼠和人的冷凍胚胎常用PG作為保護劑,但是最近研究證明,EG毒性較小[2-4],并且已廣泛用于動物胚胎的慢速和玻璃化冷凍[5]。本試驗采用牛胚胎的冷凍程序[6],同時將其冷凍和解凍程序進行簡化后對小鼠不同發(fā)育階段(4-cell、8-cell及16-cell以上)的胚胎進行了冷凍,解凍后發(fā)現(xiàn),4-cell和8-cell胚胎有部分胚胎的透明帶已經(jīng)完全破損,雖然有的胚胎透明帶完好,但是細胞質(zhì)出現(xiàn)微小的顆粒,并且細胞間距和卵周隙增大,分析可能因為4-cell和8-cell胚胎放入冷凍液后卵裂球因脫水收縮造成;16-cell以上不出現(xiàn)透明帶破損現(xiàn)象,去除冷凍液后,胚胎也可以恢復(fù)到冷凍前狀態(tài),但是細胞質(zhì)內(nèi)同樣出現(xiàn)微小顆粒,與羅明久等[7]的結(jié)果相同。經(jīng)培養(yǎng)后,16-cell以上的胚胎囊賠率可以達到62.5%,低于孫艷香等[8]報道的凍后發(fā)育率(91%),但是遠遠高于4-cell(0%)和8-cell(45.5%),此結(jié)果與Tao等[9]相同。

1972年Whittingham等[1]建立了緩慢冷凍法,并且第一次報道小鼠胚胎冷凍獲得成功,將胚胎置于冷凍保護劑中,利用程序冷凍儀或不同溫差的冰箱分階段降溫。在胚胎凍存的四個階段中:①從室溫降至誘發(fā)結(jié)晶溫度;②誘發(fā)結(jié)晶(Seeding);③慢速(0.3 ℃ ~0.5 ℃/min)冷凍至一個中間溫度(-30 ℃ ~-35 ℃);④快速冷凍至液氮溫度(-196 ℃)。目前,胚胎的體外成熟培養(yǎng)技術(shù)日趨成熟,體外生產(chǎn)(IVP)的胚胎低溫保存已經(jīng)取得成功[10]。隨著冷凍技術(shù)的不斷進步,經(jīng)過數(shù)十年的發(fā)展,現(xiàn)已建立了許多冷凍保存的方法,常用的有常規(guī)的緩慢冷凍法、玻璃化冷凍法和開放式拉管法等。本試驗對小鼠胚胎進行了程序化冷凍條件的探索,結(jié)果發(fā)現(xiàn),不同的冷凍程序?qū)π∈笈咛サ膿p傷不同,慢速冷凍的速率越快,對胚胎的損傷越大,胚胎死亡率越高,透明帶破損率越高,囊胚率越低。

參考文獻:

[1] WHITTINGHAM D G,LEIBO S P,MAZUR P.Survival of mouse embryos frozen to -196℃ and ?-206 ℃[J].Science,1972,178(59):411-414.

[2] DONNAY I,AUQUIER P, KAIDI S ,et al.Vitrification of in vitro produced bovine blastocysts:methodological studier and developmental capacity[J].Anim Reprod Sci,1998,52:93-104.

[3] SOMMERFELD V,NIEMANN H.Cryopreservation of bovine in vitro produced embryos using ethylene glycol in controlled freezingor vitrification[J].Cryobiology,1999,38:95-105.

[4] ZHU S E,KASAI M,OTOGE H ,et al.Cryopreservation of expanded mouse blastocysts by vitrification in ethylene glycol-based solutions[J].J Reprod Fertil,1993,98:139-145.

[5] ALI J,SHELTON JN.Design of vitrification solutions for the cryopreservation of embryos[J]. J Reprod Fertil,1993,99:471-477.

[6] EMILIANI S,VAN DEN BERGH M,VANNIN A S, et al.Comparison of ethylene glycol,1,2-propanediol and glycerol for cryopreservation of slow-cooled mouse zygotes,4-cell embryos and blastocysts[J].Hum Reprod,2000,15:905-910.

[7] 羅明久,劉 ?娜,苗德強,等.應(yīng)用乙二醇冷凍小鼠胚胎:優(yōu)化和簡化程序的探索[J].生物工程學(xué)報,2005,21(5):766-772.

[8] 孫艷香,姜國誠,雷俊英.小鼠囊胚玻璃化冷凍保存研究[J].廣西師范大學(xué)學(xué)報,2002,20(3):73-75.

[9] TAO J,TAMIS R,F(xiàn)INK K.Cryopreservation of mouse embryos at morula/compact stage[J].J Assist Reprod Genet,2001,18:235-243.

[10] FUKUDA Y,ICHIKAWA M,NAITO K,et al.Birth of nomal calves resulting from bovine oocytes matured,fertilized and cultured with cumulus cells in vitro up to blastocyst stage[J].Biol Reprod,1990,42:114-119.

2 ?結(jié)果與分析

2.1 ?冷凍對不同發(fā)育階段小鼠胚胎的影響

從表1可以看出,冷凍對不同發(fā)育階段小鼠胚胎的影響有明顯差異(P<0.05),其中解凍后胚胎(4-cell、8-cell、16-cell)發(fā)育率分別為10.0%、35.2%、84.2%;囊胚發(fā)育率(4-cell、8-cell、16-cell)分別為0%、45.5%、62.5%。

2.2 ?冷凍程序?qū)π∈笈咛サ挠绊?/p>

從表2可以看出,冷凍程序?qū)π∈笈咛ダ鋬龊笥绊戯@著(p<0.05),程序1、程序2解凍后胚胎發(fā)育率分別為84.2%、60.2%,囊胚率分別為62.5%、36.2%。

3 ?討論

胚胎冷凍是長期保存動物種質(zhì)資源的一項實用技術(shù)。胚胎冷凍技術(shù)的發(fā)展和應(yīng)用減少了時間和空間對胚胎操作造成的限制,并可有效避免因家畜的活體運輸所造成的疾病傳播。以前,小鼠和人的冷凍胚胎常用PG作為保護劑,但是最近研究證明,EG毒性較小[2-4],并且已廣泛用于動物胚胎的慢速和玻璃化冷凍[5]。本試驗采用牛胚胎的冷凍程序[6],同時將其冷凍和解凍程序進行簡化后對小鼠不同發(fā)育階段(4-cell、8-cell及16-cell以上)的胚胎進行了冷凍,解凍后發(fā)現(xiàn),4-cell和8-cell胚胎有部分胚胎的透明帶已經(jīng)完全破損,雖然有的胚胎透明帶完好,但是細胞質(zhì)出現(xiàn)微小的顆粒,并且細胞間距和卵周隙增大,分析可能因為4-cell和8-cell胚胎放入冷凍液后卵裂球因脫水收縮造成;16-cell以上不出現(xiàn)透明帶破損現(xiàn)象,去除冷凍液后,胚胎也可以恢復(fù)到冷凍前狀態(tài),但是細胞質(zhì)內(nèi)同樣出現(xiàn)微小顆粒,與羅明久等[7]的結(jié)果相同。經(jīng)培養(yǎng)后,16-cell以上的胚胎囊賠率可以達到62.5%,低于孫艷香等[8]報道的凍后發(fā)育率(91%),但是遠遠高于4-cell(0%)和8-cell(45.5%),此結(jié)果與Tao等[9]相同。

1972年Whittingham等[1]建立了緩慢冷凍法,并且第一次報道小鼠胚胎冷凍獲得成功,將胚胎置于冷凍保護劑中,利用程序冷凍儀或不同溫差的冰箱分階段降溫。在胚胎凍存的四個階段中:①從室溫降至誘發(fā)結(jié)晶溫度;②誘發(fā)結(jié)晶(Seeding);③慢速(0.3 ℃ ~0.5 ℃/min)冷凍至一個中間溫度(-30 ℃ ~-35 ℃);④快速冷凍至液氮溫度(-196 ℃)。目前,胚胎的體外成熟培養(yǎng)技術(shù)日趨成熟,體外生產(chǎn)(IVP)的胚胎低溫保存已經(jīng)取得成功[10]。隨著冷凍技術(shù)的不斷進步,經(jīng)過數(shù)十年的發(fā)展,現(xiàn)已建立了許多冷凍保存的方法,常用的有常規(guī)的緩慢冷凍法、玻璃化冷凍法和開放式拉管法等。本試驗對小鼠胚胎進行了程序化冷凍條件的探索,結(jié)果發(fā)現(xiàn),不同的冷凍程序?qū)π∈笈咛サ膿p傷不同,慢速冷凍的速率越快,對胚胎的損傷越大,胚胎死亡率越高,透明帶破損率越高,囊胚率越低。

參考文獻:

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[2] DONNAY I,AUQUIER P, KAIDI S ,et al.Vitrification of in vitro produced bovine blastocysts:methodological studier and developmental capacity[J].Anim Reprod Sci,1998,52:93-104.

[3] SOMMERFELD V,NIEMANN H.Cryopreservation of bovine in vitro produced embryos using ethylene glycol in controlled freezingor vitrification[J].Cryobiology,1999,38:95-105.

[4] ZHU S E,KASAI M,OTOGE H ,et al.Cryopreservation of expanded mouse blastocysts by vitrification in ethylene glycol-based solutions[J].J Reprod Fertil,1993,98:139-145.

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[6] EMILIANI S,VAN DEN BERGH M,VANNIN A S, et al.Comparison of ethylene glycol,1,2-propanediol and glycerol for cryopreservation of slow-cooled mouse zygotes,4-cell embryos and blastocysts[J].Hum Reprod,2000,15:905-910.

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[10] FUKUDA Y,ICHIKAWA M,NAITO K,et al.Birth of nomal calves resulting from bovine oocytes matured,fertilized and cultured with cumulus cells in vitro up to blastocyst stage[J].Biol Reprod,1990,42:114-119.

2 ?結(jié)果與分析

2.1 ?冷凍對不同發(fā)育階段小鼠胚胎的影響

從表1可以看出,冷凍對不同發(fā)育階段小鼠胚胎的影響有明顯差異(P<0.05),其中解凍后胚胎(4-cell、8-cell、16-cell)發(fā)育率分別為10.0%、35.2%、84.2%;囊胚發(fā)育率(4-cell、8-cell、16-cell)分別為0%、45.5%、62.5%。

2.2 ?冷凍程序?qū)π∈笈咛サ挠绊?/p>

從表2可以看出,冷凍程序?qū)π∈笈咛ダ鋬龊笥绊戯@著(p<0.05),程序1、程序2解凍后胚胎發(fā)育率分別為84.2%、60.2%,囊胚率分別為62.5%、36.2%。

3 ?討論

胚胎冷凍是長期保存動物種質(zhì)資源的一項實用技術(shù)。胚胎冷凍技術(shù)的發(fā)展和應(yīng)用減少了時間和空間對胚胎操作造成的限制,并可有效避免因家畜的活體運輸所造成的疾病傳播。以前,小鼠和人的冷凍胚胎常用PG作為保護劑,但是最近研究證明,EG毒性較小[2-4],并且已廣泛用于動物胚胎的慢速和玻璃化冷凍[5]。本試驗采用牛胚胎的冷凍程序[6],同時將其冷凍和解凍程序進行簡化后對小鼠不同發(fā)育階段(4-cell、8-cell及16-cell以上)的胚胎進行了冷凍,解凍后發(fā)現(xiàn),4-cell和8-cell胚胎有部分胚胎的透明帶已經(jīng)完全破損,雖然有的胚胎透明帶完好,但是細胞質(zhì)出現(xiàn)微小的顆粒,并且細胞間距和卵周隙增大,分析可能因為4-cell和8-cell胚胎放入冷凍液后卵裂球因脫水收縮造成;16-cell以上不出現(xiàn)透明帶破損現(xiàn)象,去除冷凍液后,胚胎也可以恢復(fù)到冷凍前狀態(tài),但是細胞質(zhì)內(nèi)同樣出現(xiàn)微小顆粒,與羅明久等[7]的結(jié)果相同。經(jīng)培養(yǎng)后,16-cell以上的胚胎囊賠率可以達到62.5%,低于孫艷香等[8]報道的凍后發(fā)育率(91%),但是遠遠高于4-cell(0%)和8-cell(45.5%),此結(jié)果與Tao等[9]相同。

1972年Whittingham等[1]建立了緩慢冷凍法,并且第一次報道小鼠胚胎冷凍獲得成功,將胚胎置于冷凍保護劑中,利用程序冷凍儀或不同溫差的冰箱分階段降溫。在胚胎凍存的四個階段中:①從室溫降至誘發(fā)結(jié)晶溫度;②誘發(fā)結(jié)晶(Seeding);③慢速(0.3 ℃ ~0.5 ℃/min)冷凍至一個中間溫度(-30 ℃ ~-35 ℃);④快速冷凍至液氮溫度(-196 ℃)。目前,胚胎的體外成熟培養(yǎng)技術(shù)日趨成熟,體外生產(chǎn)(IVP)的胚胎低溫保存已經(jīng)取得成功[10]。隨著冷凍技術(shù)的不斷進步,經(jīng)過數(shù)十年的發(fā)展,現(xiàn)已建立了許多冷凍保存的方法,常用的有常規(guī)的緩慢冷凍法、玻璃化冷凍法和開放式拉管法等。本試驗對小鼠胚胎進行了程序化冷凍條件的探索,結(jié)果發(fā)現(xiàn),不同的冷凍程序?qū)π∈笈咛サ膿p傷不同,慢速冷凍的速率越快,對胚胎的損傷越大,胚胎死亡率越高,透明帶破損率越高,囊胚率越低。

參考文獻:

[1] WHITTINGHAM D G,LEIBO S P,MAZUR P.Survival of mouse embryos frozen to -196℃ and ?-206 ℃[J].Science,1972,178(59):411-414.

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[3] SOMMERFELD V,NIEMANN H.Cryopreservation of bovine in vitro produced embryos using ethylene glycol in controlled freezingor vitrification[J].Cryobiology,1999,38:95-105.

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[5] ALI J,SHELTON JN.Design of vitrification solutions for the cryopreservation of embryos[J]. J Reprod Fertil,1993,99:471-477.

[6] EMILIANI S,VAN DEN BERGH M,VANNIN A S, et al.Comparison of ethylene glycol,1,2-propanediol and glycerol for cryopreservation of slow-cooled mouse zygotes,4-cell embryos and blastocysts[J].Hum Reprod,2000,15:905-910.

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[8] 孫艷香,姜國誠,雷俊英.小鼠囊胚玻璃化冷凍保存研究[J].廣西師范大學(xué)學(xué)報,2002,20(3):73-75.

[9] TAO J,TAMIS R,F(xiàn)INK K.Cryopreservation of mouse embryos at morula/compact stage[J].J Assist Reprod Genet,2001,18:235-243.

[10] FUKUDA Y,ICHIKAWA M,NAITO K,et al.Birth of nomal calves resulting from bovine oocytes matured,fertilized and cultured with cumulus cells in vitro up to blastocyst stage[J].Biol Reprod,1990,42:114-119.

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