999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

柿EST—SSR標記在柿屬植物中的通用性研究

2015-01-20 19:11:01羅純張青林羅正榮
湖北農業科學 2014年22期

羅純 張青林 羅正榮

摘要:公共數據庫和柿轉錄組測序產生的大量EST序列為開發新的SSR標記提供了有效資源。我們在前期利用這些數據開發出112個EST-SSR標記,此次研究選用其中11個標記對柿屬(Diospyros L.)15個種20份試材進行了標記通用性檢測。結果表明,所有引物均能擴增出產物,多態性引物比率達100%,并且UPGMA聚類結果可靠,說明柿EST-SSR標記在近緣種中可以通用。上述通用性標記為柿屬植物遺傳多樣性研究提供了標記資源。

關鍵詞:柿屬植物(Diospyros L.);EST-SSR標記;通用性

中圖分類號:Q949.775.3;Q943.2 文獻標識碼:A 文章編號:0439-8114(2014)22-5434-04

簡單重復序列(Simple sequence repeats,SSR)分子標記技術通常又稱為微衛星標記(Microsatellites),它是指以1~6個核苷酸為單位多次串聯重復的DNA序列。與其他分子標記技術相比,SSR標記具有多態性高、共顯特性、易用聚合酶鏈式反應(Polymerase chain reaction,PCR)檢測、重復性強、數量豐富和對基因組有很好的覆蓋性等特點[1]。根據SSR的來源可將其分為基因組SSR和表達序列標簽(Expressed sequence tag,EST)-SSR。EST是來自隨機選取的特定處理的cDNA克隆末端序列,能反映mRNA的信息,在功能基因組研究中具有重要意義。EST-SSR與基因組SSR標記相比,具有不同物種間通用性較好、開發方法簡單及成本低廉等優點[2]。而且EST-SSR標記來自于基因的編碼序列,更容易獲得基因表達的信息,所以現在已成為重要的農作物農藝性狀定位、遺傳作圖、遺傳多樣性、比較基因組學研究的新型工具。目前,大麥(Hordeum vulgare L.)[3]、小麥(Triticum aestivum L.)[3]、油菜(Brassica campestris L.)[4]、柑橘(Citrus reticulata Blanco)[5]等許多農作物已從公共數據庫中成功地開發出了大量的EST-SSR標記。

柿(Diospyros kaki Thunb.)是柿科(Ebenaceae)柿屬(Diospyros L.)植物中作為果樹栽培的代表種,其栽培歷史已有二千余年。中國是柿屬植物的分布中心和原產中心之一,擁有豐富的種質資源。目前,已利用多種分子標記技術對柿屬植物進行了遺傳分析,如Du等[6]在柿上開發了反轉座子標記,Guo等[7]利用簡單序列重復區間擴增多態性(Inter-simple sequence repeat,ISSR)技術開發了SSR標記。我們也開發了EST-SSR和靶位區域擴增多態性(Target region amplified polymorphism,TRAP)標記[8,9],并在柿品種間進行了遺傳分析,但是這些標記對于柿屬其他種植物是否能通用尚需進一步試驗。本研究利用前期開發的11個EST-SSR標記對柿屬15個種20份試材進行了標記通用性評價,旨在為柿及其近緣種種質鑒定及遺傳多樣性分析提供實用、高效的研究工具。

1 材料與方法

1.1 材料和模板DNA的提取

利用柿屬15個種的20份材料(表1)進行標記通用性評價。采用CTAB法提取材料基因組DNA,參照程運江等[10]的方法并作適當改動。試驗所用引物序列基本信息見表2。

1.2 擴增反應體系

PCR反應體系20 μL,其中包括:1×Buffer,20 ng DNA 模板,1.5 mmol/L MgCl2,0.1 mmol/L dNTPs,0.8 μmol/L 引物,1 U Taq酶。擴增反應是在德國Biometra TProfessional PCR儀上進行,擴增程序如下:94 ℃預變性2 min;94 ℃變性45 s,55 ℃(不同引物退火溫度不同)復性1 min,72 ℃延伸75 s,35個循環;72 ℃延伸5 min。試驗所用引物序列的基本信息及各引物退火溫度見表2。

1.3 凝膠電泳及銀染

SSR擴增產物通過6%變性聚丙烯酰胺凝膠電泳分離后進行銀染[11,12],用數碼相機拍照保存電泳圖譜。根據圖譜分析各EST-SSR位點的擴增情況,包括是否擴增、各位點在不同種中所得到的等位基因數量,根據DNA分子量標準估算等位基因片段的大小。

1.4 遺傳多樣性分析

對11個柿EST-SSR位點在20份柿近緣種中的擴增結果DNA譜帶進行數字化統計,有帶的位置記為1,無帶的位置記為0。將所有試驗數據在Microsft Office Excel 2003軟件里進行標準化處理,利用NTSYSpc 2.10e分析軟件構建數據矩陣;在Simint程序下選擇Dice系數計算20份柿近緣種間的遺傳相似系數,采用非加權組平均法(Unweighted pair-group method with arithmetic means,UPGMA)建立相應的系統樹狀樹,通過聚類劃分類群來完成聚類分析。

2 結果與分析

2.1 柿EST-SSR引物在柿近緣種中的擴增結果

11對柿EST-SSR引物在20份柿近緣種中的擴增結果分別見表3、圖1。由表3可以看出,在所有的11對EST-SSR引物中,以引物1430、5845與5553的通用性最高,可在所有20份柿近緣種材料中得到擴增片段;而其他8對引物都在某些材料中沒有擴增產物出現,如引物460在麗江君遷子1以外的其他近緣種中都得到了擴增產物;引物6665也有較高的通用性,除了在麗江君遷子1和麗江君遷子4中沒有得到擴增產物外,在其他的近緣種中都得到了清晰的擴增條帶。引物8125、4379和9004在3個近緣種中無擴增產物。引物1554、6615、8917在4個近緣種中無擴增產物,通用性稍低。

2.2 EST-SSR擴增圖譜分析

對11個EST-SSR位點在20份柿屬植物中的擴增圖譜(圖1)進行分析。結果表明,在擴增與否和各位點擴增的等位基因數量方面,不同種間存在著差異。從EST-SSR位點的擴增情況來看,麗江君遷子1除了引物1430、5845、8125和5553可得到目的擴增產物外,在其他7個位點中均無擴增產物,可擴增位點較少;烏材、麗江君遷子4和麗江君遷子6分別得到7、6、7個可擴增位點;青茶柿、象牙樹、麗江君遷子3和苗山柿各自除一個位點外,其他10個位點均能有效擴增;其他12份近緣種材料在所供試的EST-SSR位點均有目的產物擴增出來。

從表3各EST-SSR位點所得到的等位基因數目來看,各近緣種所得到的等位基因數目差異較小。各個近緣種材料在8917、1430位點上擴增得到的等位基因數較多,其中,嶺南柿在8917位點上得到等位基因數目最多,為8個。位點1554所表現的多態性較低,除黑皮柿和青茶柿分別擴增出2個和3個等位基因外,所檢測的其他材料在該位點上表現為單態或無擴增。

2.3 UPGMA聚類分析

20份柿近緣種EST-SSR分析的UPGMA聚類分析結果見圖2。從圖2可見,由于試驗材料是柿屬中不同的種,除各類君遷子外,其他種間的相似系數都比較低。所有材料中,最大的Dice相似系數為0.909(麗江君遷子3和麗江君遷子5之間),最小的為0.059(烏材和嶺南柿之間)。烏材與供試其他材料之間的相似系數均很小,說明烏材與之的親緣關系都非常遠,是否是個更古老的野生種,有待進一步確認。而各類君遷子之間的親緣關系較近,聚在一起后與浙江柿相聚,說明浙江柿是與君遷子親緣關系最近的一個近緣種。

3 小結與討論

為檢測在柿栽培種中開發的EST-SSR引物對其近緣種的通用性高低,我們利用11對EST-SSR引物,以20份柿近緣種為試材進行了測試。結果這11對引物均能擴增出產物,且多態性引物比例為100%,表明柿EST-SSR引物對其近緣種是可通用的,而且顯示的多態性頻率很高。EST-SSR標記引物是根據其側翼序列設計的,因此側翼序列的保守程度決定著EST-SSR引物在不同種間的通用性。試驗中,不同EST-SSR引物的通用性不同,引物1430、5845與5553在所有20份柿近緣種材料中都能成功擴增,而引物1554、6615、8917在4個近緣種中無目的擴增產物,這很可能就是它們各自對應EST-SSR的側翼序列的保守程度不同所造成的。

20份柿近緣種的UPGMA聚類分析結果表明,供試的EST-SSR標記在種間進行遺傳分析是比較可靠的。比如各類君遷子屬于同一個種,它們能夠很好地聚在一起,并且與浙江柿親緣關系較近,此結果與前人研究的一致[13]。

與基因組SSR標記相比,由于EST-SSR來源于基因組編碼序列,其保守程度更高,因此比基因組SSR具有更高的種間通用性[2,14,15]。目前,高通量測序技術可以產生海量的EST序列,這為大量開發EST-SSR標記提供了充足的序列來源。試驗前期分別利用公共數據庫及自主轉錄組測序獲得的柿EST序列開發了100余個EST-SSR標記,根據本試驗的結果,柿EST-SSR標記具有很高的種間通用性,這就有效地彌補了柿近緣種分子標記的不足,提高了該標記的利用價值,為柿近緣種的種質鑒定及遺傳分析等研究工作提供了標記資源。

參考文獻:

[1] POWELL W, MACHRAY G C, PROVAN J. Polymorphism revealed by simple sequence repeat[J]. Trends in Plant Science,1996,1(7):215-222.

[2] VARSHNEY R K, GRANER A, SORRELLS M E. Genic microsatellite markers in plants: Features and applications[J]. Trends in Biotechnology, 2005, 23 (1): 48-55.

[3] THIEL T, MICHALEK W, VARSHNEY R K, et al. Exploiting EST database derived for the development and characterization of gene SSR-markers in barley(Hordeum vulgare L.) [J].Theoretical and Applied Genetics,2003,106(3): 411-422.

[4] 李小白,張明龍,崔海瑞.油菜EST資源的SSR信息分析[J].中國油料作物學報,2007,29(1):20-25.

[5] CHEN C, ZHOU P, CHOI Y A, et al. Mining and characterizing microsatellitesfrom citrus ESTs[J]. Theoretical and Applied Genetics, 2006, 112 (7): 1248-1257.

[6] DU X Y, ZHANG Q L, LUO Z R. Development of retrotransposon primers and their utilization for germplasm identification in Diospyros spp.(Ebenaceae)[J]. Tree Genetics & Genomes, 2009, 5 (1): 235-245.

[7] GUO D L, LUO Z R. Development of SSR primers using ISSR-PCR in Diospyros kaki Thunb.[J]. Molecular Ecology Notes, 2006, 6 (3): 886-887.

[8] LUO C,ZHANG F, ZHANG Q L, et al. Characterization and comparison of EST-SSR and TRAP markers for genetic analysis of the Japanese persimmon Diospyros kaki[J]. Genetics and Molecular Research,2013,12(3):2841-2851.

[9] LUO C,ZHANG Q L, LUO Z R. Development and characterization of novel transcriptome-derived microsatellites for genetic analysis of persimmon[J]. Genetics and Molecular Research, 2014,13(2):3013-3024.

[10] 程運江,伊華林,龐曉明,等.幾種木本果樹DNA的有效提取[J].華中農業大學學報,2001,20(5):481-483.

[11] BASSAM B J, CAETANO-ANOLLES G, GRESSHOFF P M. Fast and sensitive silver staining of DNA in polyacrylamide gels [J]. Analytical Biochemistry, 1991, 196 (1): 80-83.

[12] CHARTERS Y M, ROBERTSON A, WILKINSON M J, et al. PCR analysis of oilseed rape cultivars (Brassica napus L. ssp. oleifera DC.) using 5-anchored simple sequence repeat (SSR) primers [J]. Theoretical and Applied Genetics, 1996, 92 (3/4): 442-447.

[13] 杜曉云.系列逆轉座子分子標記的建立及其在柿屬植物中的應用研究[D].武漢:華中農業大學,2008.

[14] RODER M S,KORZUN V,WENDEHAKE K,et al. A microsatellite map of wheat[J]. Genetics,1998,149(4):2007-2023.

[15] HOLTON T A, CHRISTOPHER J T, MCCLURE L, et al. Identification and mapping of polymorphic SSR markers from expressed gene sequences of barley and wheat[J]. Molecular Breeding, 2002, 9 (2): 63-71.

(責任編輯 王 珞)

[8] LUO C,ZHANG F, ZHANG Q L, et al. Characterization and comparison of EST-SSR and TRAP markers for genetic analysis of the Japanese persimmon Diospyros kaki[J]. Genetics and Molecular Research,2013,12(3):2841-2851.

[9] LUO C,ZHANG Q L, LUO Z R. Development and characterization of novel transcriptome-derived microsatellites for genetic analysis of persimmon[J]. Genetics and Molecular Research, 2014,13(2):3013-3024.

[10] 程運江,伊華林,龐曉明,等.幾種木本果樹DNA的有效提取[J].華中農業大學學報,2001,20(5):481-483.

[11] BASSAM B J, CAETANO-ANOLLES G, GRESSHOFF P M. Fast and sensitive silver staining of DNA in polyacrylamide gels [J]. Analytical Biochemistry, 1991, 196 (1): 80-83.

[12] CHARTERS Y M, ROBERTSON A, WILKINSON M J, et al. PCR analysis of oilseed rape cultivars (Brassica napus L. ssp. oleifera DC.) using 5-anchored simple sequence repeat (SSR) primers [J]. Theoretical and Applied Genetics, 1996, 92 (3/4): 442-447.

[13] 杜曉云.系列逆轉座子分子標記的建立及其在柿屬植物中的應用研究[D].武漢:華中農業大學,2008.

[14] RODER M S,KORZUN V,WENDEHAKE K,et al. A microsatellite map of wheat[J]. Genetics,1998,149(4):2007-2023.

[15] HOLTON T A, CHRISTOPHER J T, MCCLURE L, et al. Identification and mapping of polymorphic SSR markers from expressed gene sequences of barley and wheat[J]. Molecular Breeding, 2002, 9 (2): 63-71.

(責任編輯 王 珞)

[8] LUO C,ZHANG F, ZHANG Q L, et al. Characterization and comparison of EST-SSR and TRAP markers for genetic analysis of the Japanese persimmon Diospyros kaki[J]. Genetics and Molecular Research,2013,12(3):2841-2851.

[9] LUO C,ZHANG Q L, LUO Z R. Development and characterization of novel transcriptome-derived microsatellites for genetic analysis of persimmon[J]. Genetics and Molecular Research, 2014,13(2):3013-3024.

[10] 程運江,伊華林,龐曉明,等.幾種木本果樹DNA的有效提取[J].華中農業大學學報,2001,20(5):481-483.

[11] BASSAM B J, CAETANO-ANOLLES G, GRESSHOFF P M. Fast and sensitive silver staining of DNA in polyacrylamide gels [J]. Analytical Biochemistry, 1991, 196 (1): 80-83.

[12] CHARTERS Y M, ROBERTSON A, WILKINSON M J, et al. PCR analysis of oilseed rape cultivars (Brassica napus L. ssp. oleifera DC.) using 5-anchored simple sequence repeat (SSR) primers [J]. Theoretical and Applied Genetics, 1996, 92 (3/4): 442-447.

[13] 杜曉云.系列逆轉座子分子標記的建立及其在柿屬植物中的應用研究[D].武漢:華中農業大學,2008.

[14] RODER M S,KORZUN V,WENDEHAKE K,et al. A microsatellite map of wheat[J]. Genetics,1998,149(4):2007-2023.

[15] HOLTON T A, CHRISTOPHER J T, MCCLURE L, et al. Identification and mapping of polymorphic SSR markers from expressed gene sequences of barley and wheat[J]. Molecular Breeding, 2002, 9 (2): 63-71.

(責任編輯 王 珞)

主站蜘蛛池模板: 亚洲黄色成人| 白浆视频在线观看| 91丨九色丨首页在线播放| 欧美激情福利| 四虎永久免费地址在线网站| 青草娱乐极品免费视频| 欧美亚洲一二三区| 全部毛片免费看| 成人综合网址| 亚洲综合狠狠| 欧美中文字幕在线播放| 国产精品自在线拍国产电影| 国产噜噜噜视频在线观看| 美女黄网十八禁免费看| 四虎亚洲精品| 久久大香香蕉国产免费网站| 欧美亚洲日韩不卡在线在线观看| jizz国产视频| 国产成人精品视频一区二区电影| 亚洲国产高清精品线久久| 国产精品网址在线观看你懂的| 国产91线观看| 欧美影院久久| 欧美自慰一级看片免费| 国产电话自拍伊人| 国产成人毛片| 免费在线成人网| 毛片一区二区在线看| 老司机久久精品视频| 一级一级特黄女人精品毛片| 国产91精品最新在线播放| 99精品视频在线观看免费播放| 国产成人AV综合久久| 国产微拍精品| 污污网站在线观看| 国产精品女熟高潮视频| 91激情视频| 色香蕉网站| 色噜噜综合网| 久久久噜噜噜久久中文字幕色伊伊| 亚洲AⅤ综合在线欧美一区| 一区二区三区四区精品视频| 手机永久AV在线播放| 亚洲国产精品成人久久综合影院| 国产免费黄| 久久午夜夜伦鲁鲁片无码免费 | 五月激情婷婷综合| 成人日韩视频| 亚洲第一天堂无码专区| 欧美激情伊人| 中文字幕资源站| 88av在线| 色妞www精品视频一级下载| 久久性视频| 欧美一区国产| 视频在线观看一区二区| 国产精品无码翘臀在线看纯欲| 精品国产Av电影无码久久久| 国产成人精品视频一区视频二区| 色偷偷av男人的天堂不卡| 国产va欧美va在线观看| 播五月综合| 91成人试看福利体验区| 国产在线专区| 免费一级毛片在线播放傲雪网| 亚洲乱码在线视频| 精品国产一区91在线| 日韩精品久久久久久久电影蜜臀| 国产手机在线小视频免费观看| 亚洲视频一区| 国产精品第5页| 国产欧美视频在线| 久久久久久久久18禁秘| 久久国产精品波多野结衣| 国产亚洲欧美日韩在线一区二区三区| 伊人欧美在线| 无码啪啪精品天堂浪潮av| 亚洲成肉网| 欧美中文字幕无线码视频| 一区二区三区成人| 亚洲色欲色欲www网| 88av在线|