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急性一氧化碳中毒對大鼠少突膠質前體細胞的影響

2015-03-14 01:28:49孫瑞佼郭大志李航李銘鑫胡慧軍潘曉雯
中國康復 2015年1期

孫瑞佼,郭大志,李航,李銘鑫,胡慧軍,潘曉雯

急性一氧化碳中毒(acute arbon monoxide poisoning,ACOP)是國內外最常見的意外中毒之一[1],研究證實,腦白質的脫髓鞘改變是最常見、最主要的病理改變[2],但髓鞘脫失機制不詳。在中樞神經系統中,少突膠質前體細胞(oligodendrocyte precursor cells,OPCs)向少突膠質細胞(oligodendrocytes,OLs)的分化是髓鞘形成的關鍵步驟,也是髓鞘損傷后再生修復的主要來源[3]。本研究應用免疫組織化學染色和Western Blot觀察ACOP大鼠中樞神經系統髓鞘損傷后髓鞘標志物髓鞘堿性蛋白(myelin basic protein,MBP)和OPCs特異性細胞標志物硫酸軟骨素蛋白多糖NG2表達的變化,為探討ACOP后中樞神經系統髓鞘脫失機制提供一定的實驗參考。

1 材料與方法

1.1 材料 ①實驗動物:健康成年雄性Sprague-Dawley大鼠36只(軍事醫學科學院實驗動物中心提供),清潔級,9~10周齡,體質量200~250g,于12h明-暗交替、室溫18~20℃的動物房適應性飼養1周。自由進食標準大鼠飼料及普通自來水。②主要儀器和設備:輪轉切片機(德國Leica公司),組織勻漿器(BIOSPEC公司),低溫水平離心機(美國),垂直電泳槽(BIO-RAD公司),半干轉移電泳儀(BIO-RAD公司),凝膠成像分析系統(美國),全自動顯微照相機(日本Olympus)。

1.2 方法 參照Fechter[4]及王耀宏等[5]的研究,利用分次腹腔注射CO法制作ACOP大鼠模型。參考前期預實驗結果,預計染毒死亡率約50%,故36只SD大鼠中按電腦隨機數選取24只進行染毒,分次腹腔內注射純品CO氣體(99.9%,燕山石化),首次劑量120ml/kg,后以半量追加注射3次,每次間隔4h。其余12只作為對照組按同樣方案注射空氣。染毒后每隔15~20min觀察1次大鼠變化。造模結束后從存活大鼠中隨機選取12只作為染毒組納入實驗;正常對照組注射空氣后無死亡,全部納入。

1.3 檢測指標 ①免疫組織化學染色:在染毒后第1d、3d,2組各隨機取3只大鼠,腹腔注射20%烏拉坦(0.7 ml/100g體質量)麻醉,灌注,取腦,4%中性甲醛液固定2h,30%蔗糖溶液脫水7d,浸蠟,包埋,切片(厚度15um),石蠟切片脫蠟后,3%雙氧水滅活內源性過氧化酶,經微波對抗原進行熱修復后加入一抗MBP、NG2,0.01mol/L PBS清洗后,添加生物素標記的山羊抗兔二抗,37℃孵箱孵育30min,PBS清洗后加入ABC復合物,37℃孵箱孵育30min。DAB顯色,蘇木精復染,常規脫水,透明,封片。②組織蛋白樣本制備及Western Blot分析:在相同實驗節點2組各隨機取3只大鼠,處死后取腦,加入5ml細胞裂解液及蛋白酶抑制劑充分勻漿,再加蛋白上樣液,95℃加熱5min,離心后取上清,每孔加樣5ul,用10%SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白質,經轉膜及封閉后,將膜移入含抗MBP、NG2多克隆抗體的一抗反應液中,4℃過夜,洗膜后加入二抗,室溫避光緩搖60min,洗膜后掃描,攝片。③圖像分析: MBP、NG2免疫組織化學染色結果:在光鏡下采集圖像,每個標本取5個視野,應用Imagic-Pro 5.1圖像分析軟件測定髓鞘、MBP、NG2的積分光密度值(integral optical density,IOD)。Western Blot以β-actin為內參,計算目的蛋白的表達水平。

2 結果

2.1 染毒后表現 大鼠腹腔注射CO后中毒癥狀與王耀宏等[5]文獻報道類似,5~10min出現煩躁、撞籠,15min陸續出現少動、四肢癱軟、抽搐、昏迷,黏膜及肢端皮膚呈櫻桃紅色,部分發生角弓反張。上述癥狀體征持續至末次染毒后6h逐漸消失。造模后CO染毒組存活14只,死亡10只,尸檢發現大鼠皮膚黏膜及肝臟呈典型“櫻桃紅”樣改變,心臟、肝臟及脾臟等臟器重度充血伴散在出血點,腦組織充血水腫嚴重。對照組大鼠無異常表現,無死亡。

2.2 免疫組織化學染色結果 大鼠ACOP后1d,MBP表達輕度下降,與對照組比較IOD值差異無統計學意義;3d后MBP表達進一步下降,與對照組比較IOD值差異有統計學意義(P<0.05),見圖1;大鼠ACOP后1d,NG2表達減少,與對照組比較IOD值差異無統計學意義,3d時進一步減少,與對照組比較IOD值顯著下降(P<0.05),見圖2。局部放大后觀察,對照組可見數目較多的NG2陽性細胞,胞體小,呈圓形或橢圓形,從胞體向四周放射狀伸出多數突起。染毒3d后OPCs數量減少,細胞形態異常,胞體縮小,突起減少,見圖3。具體數據見表1。

2.3 Wester Blot檢測結果 2組大鼠腦組織中均有MBP、NG2表達,相對分子質量MBP為18500、NG2為300000。MBP、NG2在對照組中正常表達,染毒組染毒1d后MBP及NG2表達均減少,3d時進一步減少,與對照組比較差異有統計學意義(P<0.05)。見圖4,5。

a.染毒組1d b.染毒組3d

c.對照組1d d.對照組3d

圖1a~d 大鼠腦組織MBP免疫組織化學染色結果(×40)

a.染毒組1d b.染毒組3d

c.對照組1d d.對照組3d

圖2a~d 大鼠腦組織NG2免疫組織化學染色結果(×40)

a.染毒后3d b.正常對照

圖3a~b 3d大鼠腦組織NG2免疫組織化學染色局部放大(×60)

組別nMBP1d3dNG21d3d對照組317.74±0.8318.24±1.0314.95±0.7514.56±0.83染毒組316.24±0.8915.15±0.75a13.22±0.6610.85±0.93a

與對照組比較,aP<0.05

對照組 中毒1d 中毒3d

圖4 大鼠腦組織MBP表達的Western Blot電泳圖

對照組 中毒1d 中毒3d

圖5 大鼠腦組織NG2表達的Western Blot電泳圖

3 討論

建立合適的動物染毒模型是進行相關中毒研究的基礎,目前常用ACOP模型的造模方法有吸入染毒法和腹腔注射染毒法。溫韜等[6]在Fechter基礎上改良的分次腹腔注射染毒法,具有操作簡單、染毒程度容易控制等優點,注射后血碳氧血紅蛋白可迅速升高至所需水平,并引起明顯中毒癥狀,神經系統損傷及生化指標改變均與臨床所及CO中毒表現一致。因此本研究選用此方法進行造模。但此方法在染毒過程中有一定的死亡率,死亡率隨注射劑量增加而增大,且死亡大都發生于首次注射后。王耀宏等[5]研究發現,對體質量240~280g的大鼠,腹腔注射CO半數致死劑量為146ml/kg,95%可信范圍129~165ml/kg。在保證大鼠出現明顯中毒效應,且死亡率可接受的前提下,我們選用首次注射劑量為120ml/kg。王耀宏等[5]報道此劑量大鼠死亡率約30%,而我們在前期預實驗中發現死亡率約50%,此差異推測與本研究所選用大鼠體質量較小(200~250g),耐受性相對較差有關。實驗中對24只大鼠進行染毒,死亡10只,實際死亡率41.67%。

ACOP后腦白質脫髓鞘的機制尚不明確,在其它腦白質脫髓鞘疾病,如缺血缺氧性腦病、多發性硬化癥的研究中發現,缺血缺氧后星形細胞、小膠質細胞、巨噬細胞和中性白細胞被激活后釋放大量的炎性細胞因子、蛋白酶、NO 和氧自由基,這些物質均可直接或間接地造成OLs損傷,最終導致腦白質缺血性脫髓鞘病理改變[7-10];多發性硬化癥盡管機制不明,但其主要病理進程基本取得共識[11],包括原發性脫髓鞘,此時很少有OLs的損傷;脫髓鞘過程中OLs的廣泛丟失;原發性OLs損傷并導致繼發性脫髓鞘;大量的巨噬細胞被激活,引起非選擇性的組織損傷,不僅累及髓鞘還涉及軸突和星形膠質細胞。ACOP對人體的損傷機制非常復雜,既往研究已證明存在與上述腦缺血缺氧、多發性硬化等疾病類似的缺氧損害、免疫損傷、氧化應激、炎癥損傷等損傷機制[12-13]。除此以外,CO還特有細胞毒性作用,能直接作用于線粒體造成細胞損傷[14]。ACOP后中樞神經系統脫髓鞘是否與OLs受損有關,目前尚無研究報道。從本實驗結果看,中毒后1d即可看到MBP表達較正常對照組減少,3d時進一步減少,證明ACOP后大鼠中樞神經系統發生脫髓鞘改變。

在中樞神經系統中,OPCs向OLs的分化是髓鞘形成的關鍵步驟,也是髓鞘損傷后再生修復的主要來源[15]。大量研究表明在各種損傷因素導致脫髓鞘病變后,OPCs開始增殖并遷移至脫髓鞘區域,分化為OLs包裹脫髓鞘軸突形成新的髓鞘。另外有研究發現在缺血損傷區域存活下來的OLs不能進行分化和髓鞘再生,有高度遷移和分化潛能的OPCs形成的新生少突膠質細胞是髓鞘再生的來源[16]。作為髓鞘脫失后修復的主要來源,OPCs受損會對髓鞘修復造成影響,導致修復不良或不能修復。近年來研究發現,OPCs對缺血缺氧等刺激同樣敏感,腦缺血引起的能量耗竭、氧化應激同樣會損傷OPCs[17-18]。另外,OPCs膜上分布有豐富的非N-甲基-D-天冬氨酸(non-N-methyl-D-aspartic acid,non-NMDA)受體,腦缺血后細胞間隙積聚的大量興奮性氨基酸將激活non-NMDA受體,損傷OPCs[19]。在慢性多發性硬化患者中,OPCs很少分化,這與患者后期髓鞘修復失敗相吻合[20]。從本實驗結果來看,ACOP后1d 即可看到NG2表達減少,3d時進一步減少;與正常對照組比較,中毒后3d時OPCs數量明顯減少,殘存細胞形態異常,胞體縮小,突起減少,表明ACOP對OPCs造成損傷。此外有研究顯示,老年大鼠腦內的OPCs移動能力較弱,細胞形態與成年大鼠不同[21],而臨床上觀察到在ACOP患者中高齡患者髓鞘脫失持續時間長,恢復慢,遲發腦病的發生率明顯高于年輕患者[22]。

綜上,ACOP在造成中樞神經系統脫髓鞘的同時,也對OPCs細胞造成損傷。推測OPCs受損后不能及時分化成OLs修復脫失的髓鞘,是后續發生遲發腦病的可能機制之一,有待進一步研究證實。

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