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轉(zhuǎn)基因玉米MIR604結(jié)構(gòu)特異片段實時熒光定量檢測方法的建立

2015-03-15 12:32:14常麗娟雷紹榮劉文娟張富麗
江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報 2015年5期
關(guān)鍵詞:標(biāo)準(zhǔn)檢測方法

常麗娟, 宋 君, 雷紹榮, 尹 全, 王 東, 劉文娟, 張富麗

(四川省農(nóng)業(yè)科學(xué)院分析測試中心,四川 成都 610066)

轉(zhuǎn)基因玉米MIR604是瑞士先正達(dá)公司2005年研發(fā)的抗蟲玉米,該品系采用根瘤農(nóng)桿菌介導(dǎo)法轉(zhuǎn)入來自蘇云金芽孢桿菌的Cry3A基因,該基因編碼的毒素蛋白由3個不連續(xù)的結(jié)構(gòu)域組成,對鞘翅目昆蟲具有特異毒性[1]。自2007年起,MIR604先后在美國、菲律賓、俄羅斯、韓國和日本等多個國家被批準(zhǔn)作為食品和飼料的加工原料。中國于2008年批準(zhǔn)進(jìn)口MIR604作為食品和飼料的加工原料。按照中國轉(zhuǎn)基因標(biāo)識管理辦法規(guī)定,MIR604及其加工產(chǎn)品必須進(jìn)行標(biāo)識。目前,中國轉(zhuǎn)基因生物安全檢測體系中只有MIR604及其加工產(chǎn)品的定性檢測標(biāo)準(zhǔn)[2],尚無相關(guān)的定量檢測標(biāo)準(zhǔn)。歐盟曾經(jīng)發(fā)布過基于TaqMan探針的實時熒光定量PCR檢測標(biāo)準(zhǔn)[3],但國內(nèi)尚未對該標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行驗證。為了研制適合中國實驗室的定量檢測方法,本研究擬探索建立轉(zhuǎn)基因玉米MIR604結(jié)構(gòu)特異片斷實時熒光定量PCR的檢測方法,并對該方法的特異性、準(zhǔn)確度及靈敏度進(jìn)行分析,為中國轉(zhuǎn)基因生物安全監(jiān)管提供技術(shù)支持。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 植物材料 含量為1%和10%的轉(zhuǎn)基因玉米MIR604標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(Certified reference material,CRM)及其他轉(zhuǎn)基因作物粉末材料均購自歐盟聯(lián)合研究中心測量與標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)研究所(IRRM,Institute for Reference Materials and Measurements,Joint Research Centre,Belgium);非轉(zhuǎn)基因玉米、水稻、大豆、棉花、油菜、甜菜材料由本實驗室保存。

1.1.2 試劑與儀器 植物基因組DNA純化試劑和實時聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)試劑購自TIANGEN?天根生化科技(北京)有限公司。超微量分光光度計Nanodrop?1000,由Thermo Fisher Scientific Corporation生產(chǎn)。實時熒光PCR系統(tǒng)Real Time PCR System 7500,由美國Applied Biosystem Corporation生產(chǎn)。

1.2 試驗方法

1.2.1 DNA的分離與純化 按照植物基因組DNA純化試劑盒[(TIANGEN?,天根生化科技(北京)有限公司)]說明書分離、純化轉(zhuǎn)基因玉米MIR604基因組DNA。

1.2.2 引物和探針設(shè)計 玉米內(nèi)標(biāo)基因zSSIIb采用國家標(biāo)準(zhǔn) GB19495.4-2004 中的引物序列[4];根據(jù) MIR604的載體序列(http://www.shgmo.org/welcome.html)設(shè)計引物和探針構(gòu)建MIR604特異性片斷(表1)。

表1 轉(zhuǎn)基因玉米MIR604定量檢測的引物和探針Table 1 The primers and probes used for the quantitative detection of genetically modified maize MIR604

1.2.3 反應(yīng)體系及條件 取4.0μl DNA加入到20.0μl反應(yīng)體系[TaqMan Master mix(2×)10.0 μl,上下游引物(10 μmol/L)各 1.0 μl,探針(10 μmol/L)0.5 μl,補(bǔ)水至20.0 μl],運(yùn)行程序如下:95℃預(yù)變性10 min,1個循環(huán);95℃變性15 s,59℃退火60 s,45個循環(huán)。

1.2.4 方法的特異性、準(zhǔn)確度和靈敏度檢測

1.2.4.1 特異性 對非轉(zhuǎn)基因玉米、水稻、大豆、棉花、油菜、甜菜以及17個轉(zhuǎn)基因玉米轉(zhuǎn)化體、5個轉(zhuǎn)基因水稻轉(zhuǎn)化體、5個轉(zhuǎn)基因大豆轉(zhuǎn)化體、3個轉(zhuǎn)基因棉花轉(zhuǎn)化體、3個轉(zhuǎn)基因油菜轉(zhuǎn)化體和1個轉(zhuǎn)基因甜菜轉(zhuǎn)化體進(jìn)行了特異性檢測,確定方法的特異性。

1.2.4.2 準(zhǔn)確度 分別提取1%和10%的轉(zhuǎn)基因玉米MIR604基因組DNA,將10%MIR604基因組DNA按照 1∶5梯度稀釋成42.00 ng、8.40 ng、1.68 ng、0.34 ng、0.07 ng,作標(biāo)準(zhǔn)曲線。以 1%MIR604基因組DNA為檢測樣品進(jìn)行定量檢測,檢測樣品重復(fù)24次擴(kuò)增反應(yīng),計算1%MIR604標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的測量值。

1.2.4.3 靈敏度 將轉(zhuǎn)基因玉米 MIR604的基因組DNA模板按照 1∶2梯度稀釋成0.22 ng、0.11 ng、0.06 ng、0.03 ng、0.01 ng,每個梯度重復(fù) 8 次擴(kuò)增反應(yīng)。根據(jù)玉米基因組大小,計算出每個梯度反應(yīng)體系中MIR604分子片段的拷貝數(shù)。

2 結(jié)果與分析

2.1 方法的特異性

采用本方法設(shè)計的引物和探針對6種非轉(zhuǎn)基因作物、轉(zhuǎn)基因玉米MIR604及其他非目標(biāo)轉(zhuǎn)基因作物進(jìn)行檢測,只有MIR604檢測到擴(kuò)增信號(圖1),其他非轉(zhuǎn)基因作物和非目標(biāo)轉(zhuǎn)基因作物均未檢測到擴(kuò)增信號,顯示本研究建立的檢測方法具有很高的特異性。

圖1 轉(zhuǎn)基因玉米MIR604擴(kuò)增的特異性Fig.1 The specificity of the method for detection of genetically modified maize MIR604

2.2 方法的準(zhǔn)確度

為了驗證方法的準(zhǔn)確度,用10%轉(zhuǎn)基因玉米MIR604的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)建立標(biāo)準(zhǔn)曲線,對1%MIR604進(jìn)行定量檢測,并連續(xù)重復(fù)24個平行樣品。玉米內(nèi)源基因zSSIIb的標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為 Y=-3.40x+31.72,R2為 0.996,擴(kuò)增效率為 96.76%(圖 2A);MIR604分子片段的標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為Y=-3.29x+33.08,R2為 0.997,擴(kuò)增效率為 101.49%(圖 2B)。說明設(shè)計的引物和探針擴(kuò)增效率高,建立標(biāo)準(zhǔn)曲線方程的數(shù)據(jù)對之間的線性關(guān)系好。采用本研究建立的方法對1%MIR604標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)進(jìn)行定量檢測,測試樣品平均相對含量為1.05%,測量值與真實值的相對偏差為5%,方法具有較高的準(zhǔn)確度。

2.3 方法的靈敏度

為了確認(rèn)方法的靈敏度,分別以不同拷貝數(shù)的DNA為模板進(jìn)行實時擴(kuò)增,8次重復(fù)都有擴(kuò)增信號的最低外源片段分子拷貝數(shù)為本方法的檢測下限。試驗結(jié)果表明本方法最低能檢測到約為5個拷貝的MIR604核酸分子片段(表2)。

圖2 特異性定量PCR方法擴(kuò)增曲線Fig.2 The amplification curves for the construct-specific quantitative PCR method

表2 轉(zhuǎn)基因玉米MIR604結(jié)構(gòu)特異片段檢測的靈敏度Table 2 The sensitivity of the method for detection of constructspecific fragment of genetically modified maize MIR604

3 討論

熒光定量PCR技術(shù)是指在PCR反應(yīng)體系中加入熒光基團(tuán),利用熒光信號積累實時監(jiān)測整個PCR進(jìn)程,最后通過標(biāo)準(zhǔn)曲線對未知模板進(jìn)行定量分析的方法。實時熒光定量PCR可分為SYBR Green I染料法和TaqMan探針法。轉(zhuǎn)基因成分定量檢測普遍采用TaqMan探針法。與SYBR Green I染料法相比[5],TaqMan探針法由于要求引物和探針都要與DNA模板配對,在擴(kuò)增反應(yīng)過程中,通過外切核酸酶切斷與探針連接的熒光蛋白而產(chǎn)生熒光信號,排除了引物二聚體和非特異性擴(kuò)增DNA片段所產(chǎn)生的熒光信號對試驗結(jié)果的干擾,在對數(shù)擴(kuò)增期收集的熒光信號只來源于目的基因的擴(kuò)增,所以TaqMan探針法具有更高特異性和更可靠的檢測結(jié)果。

轉(zhuǎn)基因玉米MIR604投放市場后,歐盟、日本和韓國等先后建立了其實時熒光定量PCR檢測方法,歐盟還在此基礎(chǔ)上建立起了MIR604熒光定量檢測標(biāo)準(zhǔn)。日本和韓國[6-7]建立了MIR604品系特異熒光定量檢測方法,通過對方法特異性、準(zhǔn)確度、靈敏度的評估,確認(rèn)了方法的可行性。目前,中國尚無MIR604的定量檢測標(biāo)準(zhǔn)。本研究建立的方法標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率在-3.6至-3.1之間,擴(kuò)增效率在90%至110%的范圍內(nèi),決定系數(shù)大于0.99,符合TaqMan探針法要求[8];檢測的最低含量為 5個拷貝的MIR604分子片段。表明,該方法具有特異性好、準(zhǔn)確度高和靈敏度高的特點,可作為轉(zhuǎn)基因玉米MIR604的定量檢測方法。

[1] 袁美妗,鄧日強(qiáng),胡曉暉,等.蘇云金芽孢桿菌cry1Aa和cry3A結(jié)構(gòu)域編碼區(qū)的融合[J].農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報,2002,10(3):287-290.

[2] 農(nóng)業(yè)部1485號公告-16-2010.抗蟲玉米MIR604及其衍生品種定性PCR方法[S].

[3] CRLVL04/05VP.Event-specific method for the quantification of maize line MIR604 using real-time PCR[S].

[4] GB19495.5-2004.轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品檢測核酸定量PCR檢測方法[S].

[5] ROTT M E,LAWRENCE T S,WALL E M.Development of realtime PCRsystems based on SYBRGreen Iamplifluore and Taqman technologies for specific quantitative detection of the transgenic maize event GA21[J].Cereal Science,2004,39:99-107.

[6] JUNICHI M,SATOSHI F,KAORI T,et al.Development and validation of event-specific quantitative PCR method for genetically modified maize MIR604[J].Food Hyg Saf Sci,2012,53(4):166-171.

[7] KIM J H,KIM H Y.Event-specific detection methods for genetically modified maize MIR604 using real-time PCR[J].Food Science and Biotechnology,2009,18(5):1118-1123.

[8] 張廣遠(yuǎn),孫紅煒,李 凡,等.轉(zhuǎn)基因玉米 MIR162轉(zhuǎn)化事件特異性檢測方法及其標(biāo)準(zhǔn)化[J].作物學(xué)報,2013,39(7):1141-1147.

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