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冷凍前預處理對新西蘭兔精液超低溫保存品質的影響

2015-04-02 03:52:06徐婷婷劉運鎮紀康趙莎莎
江蘇農業科學 2014年12期

徐婷婷 劉運鎮 紀康 趙莎莎

摘要:以新西蘭兔精液為研究對象,對新鮮精液采用不同的靜置時間、離心速度、離心時間及精清留量進行處理,經過超低溫保存后,通過測定精子活率、頂體完整性、質膜完整性來選擇兔精液冷凍保存最近佳預處理方案。結果表明,精液離心前靜置60~90 min再以 1 000 r/min的速度離心,其凍后活率及復蘇率明顯優于其他靜置時間;離心 10 min 時的效果優于其他離心時間;采用1 000 r/min的速度離心時,相同離心時間均較其他離心速率冷凍-解凍后精液活率、復蘇率、精子質膜完整性和頂體完整性高;離心后,精清留量和精液的體積比為1 ∶[G-3]1的凍后活率、復蘇率、精子質膜完整性和頂體完整性優于精液與精清的體積比為0 ∶[G-3]1、2 ∶[G-3]1。

關鍵詞:兔;精液保存;活率;頂體;完整性;質膜;精清留量

中圖分類號:S82913+4 文獻標志碼: A

文章編號:1002-1302(201412-0243-02

精液超低溫冷凍保存,對動物種質資源保護有重要作用。精液冷凍保存在牛、豬上都有比較成熟的技術方案,在生產實踐上應用較廣泛。但迄今為止,關于兔精液的冷凍保存研究相對較少,尚未形成完整的技術方案和技術突破。由于夏季氣溫較高,兔的受孕率不論是自然受孕還是人工授精都比春秋季大幅降低,給養兔業帶來了較大的影響,因此研究兔精液超低溫保存、形成完整的技術準則成為當前最迫切的研究任務。

1材料與方法

11材料

111儀器設備

電子天平、熒光倒置顯微鏡、電熱恒溫水浴鍋、電熱恒溫干燥箱、CO2培養箱、離心機、液氮生物容器、冰箱、蒸汽滅菌器、雙人單面凈化工作臺、超聲波清洗儀、加熱板、025 mL細管等。

112試劑

NaCl、Cl、Na2HPO4·12H2O、H2PO4、CaCl2、MgCl2、無水葡萄糖、二水檸檬酸鈉、青霉素鉀、硫酸鏈霉素、檸檬酸、甘氨酸、甘油、牛血清白蛋白、Tris。

113試驗動物

江蘇鹽城正山兔業有限公司的1~2歲優質新西蘭種公兔,體質健康,無繁殖疾病。試驗兔單籠飼養,飼養溫度24 ℃左右,濕度50%左右,每天光照12 h,定量喂食全價配合飼料,自由飲水。

12方法

121溶液的配制

PBS液(磷酸鹽緩沖液的配制: NaCl 08 g,Cl 002 g,CaCl2 0013 2 g,Na2HPO4·12H2O 0289 8 g,H2PO4 002 g,MgCl2·6H2O 0012 1 g,加雙蒸水至100 mL,pH值調至72,022 μm濾膜過濾,4℃保存備用。

BTS液(常溫保存液的配制:葡萄搪37 g,二水檸檬酸三鈉06 g,乙二胺四乙酸二鈉0125 g,NaHCO3 0125 g,Cl 0007 5 g,青霉素鈉006 g,硫酸鏈霉素01 g,加雙蒸水至100 mL,pH值調至72,022 μm濾膜過濾,4℃保存備用。

冷凍稀釋液的配制:葡萄糖159 g,檸檬酸196 g,Tirs 352 g,青霉素鈉006 g,硫酸鏈霉素01 g,甘油4%,卵黃20%,加雙蒸水至100 mL,pH值調至621,022 μm濾膜過濾,4 ℃保存備用。

解凍液的配制:葡萄糖50 g,檸檬酸鈉05 g,10%安鈉咖5 mL,青霉素8萬IU,硫酸鏈霉素10萬IU,加雙蒸水至100 mL,022 μm濾膜過濾,4 ℃保存備用。

PI染色溶液的配制: PI 005 g溶解于20 mL PBS液中,4℃保存備用。

DABCO防熒光淬滅劑的配制:甘油/PBS(9 ∶[G-3]110 mL、DABCO 0024 6 g,1 mL分裝,4 ℃保存備用。

122精液采集

在采精器中注入溫水并裝上預熱至35~37 ℃的集精管,將發情成年母兔放入公兔籠內,誘導公兔爬跨母兔,將陰莖導入母兔陰門處的采精器內,公兔射精后側倒時迅速將采精器豎立拿出兔籠,棄去夾層中的溫水,使精液全部流入集精管中。于 37 ℃下進行精液常規質量檢查,選擇無異味、乳白色、精子形態正常、活率在07以上、密度適中的精液用于試驗。精子活率的檢測方法:20 μL精液充入37 ℃預熱的血細胞計數板上,顯微鏡下觀察向前運動精子所占的比值即為精子活率。

123精液的預處理

1231離心前靜置時間將采集的合格精液保存在37℃的保溫瓶中,分別靜置15、30、60、90 min。

1232離心速率分別以500、1 000、1 500、2 000 r/min的速度分別離心5、10、15 min。

1233精清留存量將離心后的精液分別按照精清與精子的體積比為0 ∶[G-3]1、1 ∶[G-3]1和1 ∶[G-3]2的量留取,然后用等溫稀釋液進行稀釋。

1234稀釋與平衡將符合要求并且經過預處理的精液按1 ∶[G-3]2的體積比與等溫的稀釋液混合,搖勻,放入5 ℃冰箱中平衡2 h。

1235冷凍精液的制備與解凍采用025 mL細管法進行冷凍,將裝有精液的細管置于充分預冷廣口冷凍容器內的管架上,距離液氮面3 cm,熏蒸10 min,然后投入液氮罐提桶內保存。解凍時,將細管取出后直接投入37 ℃溫水中解凍45 s,用等溫解凍液按體積比為1 ∶[G-3]10稀釋,37℃水浴10 min。

1236精液品質檢測指標及方法(1精子活率。取 10 μL 精液PI熒光染色法進行判斷(死精子PI染色后呈陽性,活精子PI染色后呈陰性,置于載玻片上,蓋上蓋玻片,在 400×顯微鏡下評定精子活率。每次至少檢查 200 個精子。計算公式:活率=未著色精子數/總精子數。(2質膜完整率。將解凍后的精液用果糖-檸檬酸鈉低滲液(0675 6 g 果糖、0367 6 g二水檸檬酸鈉溶于50 mL雙蒸水中稀釋,調整精子密度為 100萬~200萬spz/mL,37 ℃孵育 30 min,取 20 μL 精子懸液于血細胞計數板上,400×倒置顯微鏡觀察,每次至少計數 200 個精子,計算彎尾精子的比率,計算公式:質膜完整率=彎尾精子數/總精子數×100%。(3精子頂體完整率。采用姬姆薩染色法測定,計算公式:精子頂體完整率=頂體完整精子數/總精子數×100%。

13數據統計

所有處理均至少重復5次,每次計數精子數不少于200個。采用t檢驗和方差分析法對試驗數據進行統計分析,P<005為差異顯著。

2結果與分析

3結論與討論

試驗結果表明,在稀釋前將精液靜置60~90 min可有效地使精子和精清接觸,精子獲得了對冷休克及冷凍損傷更強的抵抗力,靜置時間太長可引起精清變質,從而對精子質量產生影響。同時,精子不運動也容易形成假死狀態,靜置時間過短,精子不能和精清充分接觸,對冷休克和冷損失的抵抗能力較差。

以1 000 r/min的離心速度離心10 min,解凍后活率、復蘇率、質膜完整率和頂體完整率分別達到038、5429%、5326%、7438%。不離心或者離心速率太小、時間太短,精液體積過大稀釋效果不佳,而如果離心速度過快、時間過長則會使精子在離心管底部凝結,從而導致形態異常,活率下降。endprint

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