龐榮清,王強(qiáng),楊建勇,朱光旭,李自安,何潔,朱向情,阮光萍,潘興華
骨髓胚胎樣干細(xì)胞體內(nèi)重建dystrophin的表達(dá)
龐榮清,王強(qiáng),楊建勇,朱光旭,李自安,何潔,朱向情,阮光萍,潘興華
目的觀察骨髓胚胎樣干細(xì)胞體內(nèi)再生dystrophin的可行性。方法采用SSP-PCR方法鑒定mdx小鼠的基因型。分離擴(kuò)增人骨髓胚胎樣干細(xì)胞,采用DIR標(biāo)記后,注射細(xì)胞到mdx小鼠腹股溝三角皮下,采用活體成像法觀察植入細(xì)胞的存活情況,采用免疫熒光染色法檢測dystrophin的表達(dá)。結(jié)果雜合子鼠交配可以產(chǎn)生3個基因型的子代鼠,采用SSP-PCR可以鑒定出mdx小鼠基因型;采用無血清培養(yǎng)基可從骨髓中分離到表達(dá)SSEA-4和FZD-9的胚胎樣干細(xì)胞,可在注射細(xì)胞的mdx小鼠離體后肢肌肉檢測到明顯的熒光信號,并在肌肉組織中檢測到人dystrophin的表達(dá)。結(jié)論人骨髓胚胎樣干細(xì)胞可在mdx小鼠體內(nèi)存活并表達(dá)dystrophin。
骨髓;胚胎樣干細(xì)胞;mdx小鼠;基因型;dystrophin;Duchenne型肌營養(yǎng)不良
Duchenne型肌營養(yǎng)不良(Duchenne muscular dystrophy,DMD)是臨床上常見的神經(jīng)內(nèi)科遺傳病,目前尚無有效治療方法[1]。研究DMD治療、尤其是干細(xì)胞治療,mdx小鼠是常用的動物模型[2]。本課題前期研究[3]表明,從骨髓中可以分離獲得表達(dá)多潛能抗原標(biāo)志的胚胎樣干細(xì)胞(embryonic-like stem cells,ELSCs),這些細(xì)胞已成為目前成體干細(xì)胞生物學(xué)研究的一個亮點(diǎn)。本實(shí)驗(yàn)以mdx小鼠為研究對象,探討骨髓胚胎樣干細(xì)胞在體內(nèi)再生dystrophin的可行性。
1.1 實(shí)驗(yàn)動物及試劑器材DMD模型種鼠(牛津大學(xué)Davies教授惠贈,檢疫許可證號AD44010011),飼養(yǎng)于屏障系統(tǒng)動物實(shí)驗(yàn)室[SYXK(滇)2013-0011];無血清培養(yǎng)基和trypsin-EDTA均為invitrogen公司生產(chǎn);一抗鼠抗人dystrophin和FITC標(biāo)記的羊抗鼠IgG均為Santa Cruz公司生產(chǎn);細(xì)胞膜熒光探針DIR碘化物為北京泛博生化有限公司生產(chǎn);活體成像儀為Maestro in vivo imaging system。
1.2 mdx小鼠鑒定種鼠生產(chǎn)的子代鼠,采集其外周血提取基因組DNA。按本課題組建立的序列特異性引物(sequence specific primers,SSP)-PCR法進(jìn)行基因型鑒定[4]。上游引物:5′-GTGAAGGATGTCATGAAA G-3′,下游引物1:5′-TGAAGTCCGAAAGAGATACC-3′,下游引物2:5′-ACGAGACTAGTGAGACGTGC-3′。PCR反應(yīng)條件為:95℃5min,94℃30 s,58℃30 s,72℃30 s,進(jìn)行35個循環(huán),最后72℃延伸10 min。采用1.5%的瓊脂糖凝膠電泳檢測擴(kuò)增產(chǎn)物,溴化乙錠染色后紫外燈下觀察拍照。
1.3 ELSCs的準(zhǔn)備按照本課題組建立的方法[3]分離擴(kuò)增ELSCs,即采集人骨髓,無菌條件下分離骨髓單個核細(xì)胞,加入無血清培養(yǎng)基重懸單個核細(xì)胞后,轉(zhuǎn)移到明膠包被過的培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)。無血清培養(yǎng)基是含有20%SR、2mM glutamine、1%NEAA、0.1mM 2-mercaptoethanol和5 ng/ml bFGF的k-DMEM培養(yǎng)液。加入0.1%明膠溶液至培養(yǎng)瓶中靜置30 min,吸棄明膠溶液后自然風(fēng)干,即可包被培養(yǎng)瓶。光學(xué)顯微鏡下觀察細(xì)胞生長情況及形態(tài)特征。適時換液并及時用trypsin/EDTA消化傳代細(xì)胞。第3代ELSCs用于實(shí)驗(yàn)研究。
1.4 細(xì)胞注射及活體成像觀察參照文獻(xiàn)[5]報(bào)道方法,加入0.1%DIR溶液與生長良好的第3代細(xì)胞共培養(yǎng)8 h,收集并調(diào)整細(xì)胞密度為1×106/ml,在用于實(shí)驗(yàn)研究的mdx小鼠腹股溝三角皮下注射2 ml細(xì)胞懸液,對照mdx小鼠注射無細(xì)胞的等量基礎(chǔ)培養(yǎng)液。1個月后處死小鼠,取其后肢去除皮膚后,于活體成像儀下拍照。
1.5 人dystrophin的檢測參照本課題組建立的技術(shù)方法[4],處死小鼠取少許股直肌肌肉制作冰凍切片,室溫條件下加入10%正常羊血清封閉1 h,滴加一抗mouse anti-human dystrophin 4℃孵育過夜,漂洗后加入二抗FITC-goat anti-mouse IgG于室溫反應(yīng)1 h,漂洗后,熒光顯微鏡下觀察拍照。
2.1 mdx小鼠的鑒定采用SSP-PCR方法可以準(zhǔn)確地將子代小鼠鑒定為3種基因型,其中只擴(kuò)增出一個340 bp條帶的小鼠(圖1),即為表達(dá)utrophin基因而不表達(dá)dystrophin基因的mdx小鼠,適于干細(xì)胞治療實(shí)驗(yàn)研究。

圖1 3種基因型小鼠的SSP-PCR電泳圖
2.2 ELSCs的分離培養(yǎng)采用無血清培養(yǎng)基在明膠包被過的培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)骨髓單個核細(xì)胞,可分離到貼壁生長、體積較小、形態(tài)纖細(xì)的細(xì)胞,即ELSCs(圖2A),細(xì)胞傳代后在瓶中均勻分布生長(圖2B)。流式分析顯示ELSCs表達(dá)SSEA-4和FZD-9。

圖2 ELSCs的形態(tài)特征及流式分析
2.3 活體成像觀察注射DIR標(biāo)記細(xì)胞的mdx小鼠,在去除皮膚的后肢股直肌和腓腸肌等部位可以檢測到明顯的熒光信號,而沒有注射細(xì)胞的對照鼠后肢肌肉則檢測不到熒光信號的存在(圖3)。

圖3 離體mdx小鼠后肢熒光成像分析
2.4 熒光免疫染色分析皮下注射ELSCs的mdx小鼠,1個月后檢測到了人dystrophin的表達(dá),而沒有注射細(xì)胞的對照小鼠只觀察到極其微弱的熒光背景,檢測不到dystrophin的表達(dá)(圖4)。
由于位于X染色體上的dystrophin基因突變或缺失,導(dǎo)致dystrophin蛋白表達(dá)障礙,是DMD發(fā)病的主要原因。位于肌細(xì)胞膜上的dystrophin蛋白與肌纖維膜糖蛋白結(jié)合為抗肌萎縮蛋白復(fù)合體,這些蛋白與肌細(xì)胞的黏附蛋白聯(lián)結(jié),共同構(gòu)成細(xì)胞支架,共同維持著肌纖維的穩(wěn)定[6]。表達(dá)utrophin基因而不表達(dá)dystrophin基因的mdx小鼠,雖然基因代償?shù)木壒势渑R床癥狀不如臨床上DMD患者那樣嚴(yán)重,但這種小鼠能夠長期存活,仍然成為DMD研究最常用的動物模型。

圖4 人dystrophin熒光免疫染色分析
干細(xì)胞移植治療DMD的原理,就是通過輸入健康供體來源的干細(xì)胞到DMD體內(nèi),以重建dystrophin蛋白的表達(dá)。我們已經(jīng)從骨髓中可以分離獲得表達(dá)多潛能抗原標(biāo)志的ELSCs,并證明ELSCs具有較強(qiáng)的成肌分化能力[3]。本研究采用前期研究建立的無血清培養(yǎng)方法分離獲得ELSCs,將其用DIR標(biāo)記后注射到mdx小鼠腹股溝三角皮下,可以在mdx小鼠后肢肌肉豐富的區(qū)域檢測到明顯的熒光信號,表明注入皮下的細(xì)胞可以就近分布到肌肉豐富的區(qū)域定植;免疫熒光檢測分析可以檢測到人dystrophin的表達(dá),表明人骨髓來源的ELSCs可在mdx小鼠體內(nèi)再生dystrophin,這與研究報(bào)道一致[7]。
ELSCs之所以引人關(guān)注,主要原因就是它們能表達(dá)多潛能的抗原標(biāo)志,如VSEL被認(rèn)為是成體組織中真正意義上的干細(xì)胞,是再生醫(yī)學(xué)研究中真正的種子細(xì)胞[8]。流式分析顯示:ELSCs表達(dá)SSEA-4和FZD-9,前者是胚胎干細(xì)胞的抗原標(biāo)志[9],后者雖不是多潛能抗原標(biāo)志,但FZD-9陽性的細(xì)胞表達(dá)了更多的多潛能抗原標(biāo)志[10],說明FZD-9與多潛能抗原標(biāo)志的表達(dá)有關(guān)。本研究檢測到人源dystrophin在mdx的表達(dá),說明ELSCs有可能被用于DMD的治療,而前期研究表明,ELSCs擁有更強(qiáng)的成肌分化能力,說明ELSCs可能是DMD治療更好的種子細(xì)胞。
[1]劉焯霖,梁秀齡,張成.神經(jīng)遺傳病[M].2版.北京:人民衛(wèi)生出版社,2002:27-216.
[2]Deconinck AE,Rafael JA,Skinner JA,et al.Utrophindystrophin-dificient mouse as a model for Duchenne muscular dystrophy[J].Cell,1997,90(4):717-727.
[3]Pang RQ,Zhang YY,Pan XH,et al.Embryonic-like stem cell derived from adult bone marrow:immature morphology,cell surface markers,ultramicrostructure and differentiation into multinucleated fibers in vitro[J].Cell Mol Biol,2010,56:1276-1285.
[4]Li Z,Liu HY,Lei QF,et al.Improved motor function in dko mice by intravenous transplantation of bone marrow-derived mesenchymal stromal cells[J].Cytotherapy,2011,13(1):69-77.
[5]張佳琳,熊曄蓉,涂家生.精氨酸水溶液復(fù)溶的多西他賽聚合物膠束的體外藥效學(xué)及體內(nèi)分布[J].藥學(xué)與臨床研究, 2013,21(3):224-226.
[6]Hoffman EP,Brown RH,Kunkel LM.Dystrophin:the protein product of the Duchennemuscular dystrophy locus[J].Cell,1987, 51:919-928.
[7]Secco M,Bueno CJ,Vieira NM,et al.Systemic delivery of human mesenchymal stromal cells combined with IGF-1 enhancesmuscle functional recovery in LAMA2dy/2j dystrophic mice[J].Stem Cell Rev,2013,9(1):93-109.
[8]Bhartiya D,Shaikh A,Nagvenkar P,et al.Very small embryonic-like stem cells with maximum regenerative potential get discarded during cord blood banking and bone marrow processing for autologous stem cell therapy[J].Stem Cells Dev, 2012,21(1):1-6.
[9]Watts AE,Yeager AE,Kopyov OV,et al.Fetal derived embryonic-like stem cells improve healing in a large animal flexor tendonitismodel[J].Stem Cell Res Ther,2011,2(1):4-14.
[10]Battula VL,Treml S,Abele H,et al.Prospective isolation and characterization ofmesenchymal stem cells from human placenta using a frizzled-9-specificmonoclonal antibody[J].Differentiation, 2008,76(4):326-336.
Expression of dystrophin reconstructed by bonemarrow embryonic-like stem cells in vivo
Pang Rongqing,Wang Qiang,Yang Jianyong,Zhu Guangxu,Li Zian,He Jie,Zhu Xiangqing,Ruan Guangping,Pan Xinghua Cell Biological Therapy Center of Kunming General Hospital of Chengdu Military Command/The Nation and Region Integrated Engineering Laboratory of Stem Cell and Immunocyte Biological Technology/Key Laboratory of Cell Therapeutic Transforming Medicine of Yunnan Province/Stem Cell Engineering Laboratory of Yunnan Province,Kunming,Yunnan,650032,China
Objective To observe the feasibility of the dystrophin regeneration by bone marrow embryonic-like stem cells (ELSCs)in vivo.Methods SSP-PCR was used to identify the mdx mice's genotype.Human bone marrow embryonic-like stem cells were separated,isolated,and then after the marking by DIR,subcutaneously injected into the mdx mice's inguinal triangle.The survival of implanted cells was observed by living-imagingmethod,and the dystrophin expression was detected by immunofluorescent staining method.Results The copulation of heterozygousmice could breed offspring with three kinds of genotype.The genotype of mdx mice could be identified by SSP-PCR.ELSCs expressing SSEA-4 and FZD-9 could be isolated from the bone marrow through serum-free medium.Significant fluorescence signal was detected in the ex vivo posterior limb muscle of the mdx mice that were injected with the cells,and the expression of dystrophin was detected in the muscle tissues.Conclusion Human bone marrow embryonic-like stem cells can survivewithinmdxmice and express dystrophin.
bonemarrow;serum-freemedium;mdxmouse;genotype;dystrophin;Duchennemuscular dystrophy
R 318.1
A
1004-0188(2015)08-0823-03
10.3969/j.issn.1004-0188.2015.08.004
2015-04-10)
云南省基金項(xiàng)目(2011HB050,2013DA004,2013CA005);成都軍區(qū)基金項(xiàng)目(2012WJ003);國家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(31172170)
650032昆明,成都軍區(qū)昆明總醫(yī)院細(xì)胞生物治療中心,干細(xì)胞與免疫細(xì)胞生物醫(yī)藥技術(shù)國家地方聯(lián)合工程實(shí)驗(yàn)室,云南省細(xì)胞治療技術(shù)轉(zhuǎn)化醫(yī)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,云南省干細(xì)胞工程實(shí)驗(yàn)室
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