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真菌SF—21483產生的活性物質分離純化及初步確認

2015-10-09 21:51:22張亞妮等
湖北農業科學 2015年17期

張亞妮等

摘要:從武漢地區土壤中分離得到一株真菌菌株SF-21483,其發酵液具有較強的抑制真菌的作用。本研究以真菌SF-21483發酵提取物中的活性代謝產物為研究對象,應用高效制備液相色譜經過2次分離純化,得到了5個化合物。根據紫外吸收光譜、分子離子峰、物理性狀及活性情況等確定組分4、5、7、9、10與冬青生菌素(Ilicicolin)F、E、D、C、H較為相似,對植物病原菌生物活性測試表明,該類組分具有較強的抗菌作用。

關鍵詞:真菌菌株SF-21483;農藥活性物質;分離;純化;冬青生菌素(Ilicicolin)

中圖分類號:S482.2 文獻標識碼:A 文章編號:0439-8114(2015)17-4188-04

DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2015.17.020

從微生物中篩選天然物質始于1929年青霉素的發現,自20世紀40年代,至今已發現一萬余種抗菌素[1]。微生物在其生長過程中會產生一些初生及次生代謝產物。農用抗生素是微生物產生的次級代謝產物,可用于防治農業有害生物,是一類用途很廣泛、 產業化程度很高的生物農藥[2]。本研究在武漢某地土樣中分離得到一株真菌菌株(編號為SF-21483),對SF-21483的發酵提取物進行化學成分的分析,從中分離到5個化合物,研究包括真菌SF-21483的發酵、提取、分離純化,初步確定其結構及生物學活性。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 培養基 種子培養基:麥芽糖6.25 g,麥芽提取物6.25 g,酵母提取物1.00 g,磷酸二氫鉀1.25 g,硫酸鎂 0.625 g,蛋白胨 0.625 g,瓊脂粉15.00 g,去離子水1 000 mL。

搖瓶發酵培養基:葡萄糖 72.00 g,蛋白胨8.00 g,酵母提取物4.00 g,磷酸二氫鉀2.00 g,硫酸鎂1.00 g,鹽酸硫胺0.10 g,pH 6.0,去離子水1 000 mL。

1.1.2 主要儀器 Water 2695高效液相色譜儀(Waters 996二級管陣列檢測器,色譜工作站MasslynxV4.0),高效制備液相色譜儀(Waters2525泵,帶2767自動收集系統,2996二級管陣列檢測器,色譜工作站MasslynxV4.0);高效液相色譜-質譜聯用儀:Waters 2695高效液相色譜系統,美國Micromass Quattro micro?誖質譜儀(電噴霧離子源(ESI)),Masslynx V4.1液質聯用分析軟件。

1.1.3 主要試劑 甲醇(色譜純,德國CNW),乙腈(色譜純,德國CNW),去離子水(Millipore)。液質聯用分析所用的高純氮氣購自武漢和遠漢盛氣體有限公司,純度為99.999%。

1.1.4 菌株來源 真菌菌種SF-21483由湖北省農業科學院生物農藥工程研究中心分離、保存。黃色鐮刀菌(Fusarium culmorum)、立枯絲核菌(Rhizoctonia solani)、葡萄灰霉(Botrytis cinema)、小麥穎枯病菌(Septoria nodorum)、番茄早疫菌(Alternaria solani),由湖北省農業科學院生物農藥工程研究中心提供。

1.2 色譜條件

1.2.1 分析條件 色譜柱:美國Sunfire?誖 C18 柱,150 mm×2.1 mm(i.d),粒徑3.5 μm。柱溫40 ℃。流動相:A.去離子水;B.乙腈(梯度洗脫)。進樣量3 μL。流速0.3 mL/min。檢測條件:PDA全波長掃描。

1.2.2 制備條件 色譜柱:美國Sunfire?誖 OBD C18 Prep柱,250 mm×19 mm(i.d),粒徑10 μm。柱溫室溫。流動相:A.去離子水;B.乙腈(梯度洗脫)。進樣量3 000 μL。流速27 mL/min。檢測條件:PDA全波長掃描。

1.2.3 質譜檢測條件 MS條件:電噴霧電離(ESI),毛細管電壓為3.5 kV,錐孔電壓為45 V,離子源溫度為100 ℃,脫溶劑溫度為300 ℃,脫溶劑氣體流速500 L/h,錐孔氣體流速為50 L/h。

1.3 方法

1.3.1 種子培養 用無菌接種環從斜面中取少量孢子或菌絲轉入種子培養基中,在旋轉式搖床上28 ℃、130~140 r/min培養96 h。每次每菌株準備10瓶。移種前,對每瓶種子進行取樣鏡檢,以排除有污染的搖瓶。

1.3.2 搖瓶發酵 待種子培養好時,轉入500 mL錐形瓶中裝樣100 mL,接種后的錐形瓶置于旋轉式搖床上28 ℃、130~140 r/min培養7 d。

1.3.3 活性物質的提取 將真菌SF-21483發酵液離心,分別將菌絲體和上清用乙酸乙酯進行提取2次,合并提取液,真空減壓濃縮至干,加入適量甲醇,離心,備用。

1.3.4 活性成分分布 取少量備用液進行半制備,所用色譜柱為美國Sunfire?誖C18反相柱(10 μm,250 mm×10 mm), 進樣體積800 μL,柱溫為室溫,流速為7.5 mL/min,流動相為乙腈和去離子水,采用梯度洗脫,乙腈的濃度在25 min內由5%變至100%。每分鐘收集一個組分,用干凈空氣吹干后進行生物活性測定,確定活性成分分布位置。

1.3.5 純品的制備 根據1.3.4活性分布結果,確定活性部位的保留時間。先采用分析液相摸索出適合活性化合物分離的流動相梯度。然后將此梯度直接放大到制備液相中,分離純化出活性物質單組分,制備時所用色譜柱為美國Sunfire?誖prep-C18反相柱(5 μm,19 mm×250 mm), 進樣體積2 000 μL,柱溫為室溫,流速為27 mL/min。

1.3.6 組分純度及分子量的測定 將1.3.5分離純化的單組分化合物干燥,溶于色譜級甲醇中,取1 mL于LC-MS檢測,確定化合物的純度及分子離子峰,根據紫外吸收光譜、分子離子峰及碎片離子判斷化合物的歸屬。

2 結果與分析

2.1 真菌SF-21483發酵提取物中活性組分的測定

半制備活性跟蹤試驗顯示,主要活性組分出現在20~26 min內。結果表明,此段組分具有較強的抗真菌活性,其余保留時間均無活性(圖1)。通過圖1可知,20~26 min的組分主要有peak19.90、peak23.42、peak24.77和peak25.82。

2.2 真菌SF-21483活性化合物的分離純化

根據2.1活性分布結果,明確活性部位的保留時間分布在20~26 min。由此,先采用分析液相考察在1.2.1色譜條件梯度下保留此時間段的分離度。檢測結果表明,20~26 min時段內組分較為集中,分離度較小。雖然半制備結果表明主要含有5個活性組分,但是LC-MS檢測結果表明20~26 min時段內含有較多的化合物(圖2),這可能和分析柱的柱效較高有關。本試驗半制備的色譜柱粒徑10 μm,而分析液相色譜柱的粒徑為3.5 μm,柱效(理論塔板數)遠高于半制備色譜柱[3]。因而在分析條件下,更能清晰的檢測出相同時間段所有組分。這些化合物的紫外最大吸收值較為接近,均在230、290、345 nm左右,由此判斷,可能是同系物或者類似物。因為這些化合物均集中在20~26 min時段內,此段化合物屬于中等偏弱極性化合物。對此較為集中且組分較多的樣品分離純化,先采用梯度1條件,每個峰均收集。然后根據梯度1的保留時間段流動相配比,設計出梯度2[4],將這些收集到的組分再進一步分離純化,得到了5個純度較高的化合物,這些化合物的理化性質見表2。

2.3 真菌SF-21483發酵提取物中的各活性組分LC-MS歸屬

將得到的5個化合物分別稱量1 mg溶于1 mL甲醇中,于LC-MS上進樣5 μL,測定各個組分的分子離子峰(表3)。由表3可知,這5個活性組分的分子離子峰分別為4(462.2)、5(402.2)、7(404.2)、9(406.2)、10(433.3)。紫外吸收光譜也較為接近,最大吸收值分別在230、290、345左右。對比這些化合物紫外吸收光譜、相對分子質量、物理性狀、來源及生物活性,經過查詢天然產物化合物詞典(DNP)和文獻,初步推斷4、5、7、9、10這5個組分與冬青生菌素較為接近[5-7]。冬青生菌素是由真菌Cylinddrocladium ilicicola MFC-870產生的抗生素[8,9],含有A、B、C、D、E、F、G和H等8個組分。相對分子質量分別為A 390、B 356、C 406、 D 404、E 402、F 462、G 404、H 433,最大紫外吸收值分別為A :230、296、344,B: 233、 296、 340,C: 230、295、347, D: 240、250、292、346,E: 240、 290、346,F: 240、294、348,G:230、295、349, H: 248、349。而4、5、7、9、10這5個活性組分是由真菌菌株SF-21483產生,分子離子峰分別為4(462.2)、5(402.2)、7(404.2)、9(406.2)、10(433.3)。紫外吸收值也較為接近:4(242、292、337)、5(236、291、337)、7(237、298、338)、9(230、292、348)、10(245、347)。物理性狀分別為4(淡黃色結晶)、5(淡黃色結晶)、7(淡黃色結晶)、9(黃色針狀結晶)、10(黃色針狀結晶)。結果表明,5個組分均具有一定的抗真菌活性。由此判斷,活性組分4為冬青生菌素F(Ilicicolin F)、活性組分5為冬青生菌素E(Ilicicolin E)、活性組分7為冬青生菌素D(Ilicicolin D)、活性組分9為冬青生菌素C(Ilicicolin C)、活性組分10為冬青生菌素H(Ilicicolin H)。

2.4 SF-21483發酵提取物中各活性組分的抑菌活性

將SF-21483發酵提取物分離純化得到的這5個活性組分分別在5個真菌病原菌靶標下的1.0、0.3、0.1 mg/mL濃度下進行生物活性測試,結果表明,這些活性組分均具有一定的抑制植物病原真菌的作用(表4)。由表4可知,活性組分4僅在1.0 mg/mL濃度下有活性;活性組分4在3個濃度下均對小麥穎枯、立枯絲核菌均有較強的抑制作用;活性組分5的活性最強,在3個濃度下對其中的3個靶標均具有較強的活性;活性組分9對小麥穎枯、番茄早疫在3個濃度下有較強的活性;活性組分10對葡萄灰霉、番茄早疫、立枯絲核具有一定的抑制作用。

3 小結與討論

本試驗從SF-21483的發酵提取物中分離得到的組分4、5、7、9、10與化合物冬青生菌素(Ilicicolins)相似,具有較強抗真菌作用。文獻研究多集中在Ilicicolin H,它是2-吡啶酮類化合物。體外抗菌活性研究表明,該化合物抑制炭疽桿菌(Bacillus anthracis)的劑量為6 mg/mL[8]。其作用機制在最近才被闡明,在酵母中作用于線粒體, 抑制呼吸鏈中泛醌位點[10]。目前該類化合物的研究主要集中在抗菌機理上,在農藥應用方面的研究很少報道。本試驗主要是從真菌SF-21483的次生代謝產物應用于植物病原菌的防治上進行了研究,為真菌SF-21483在農業上的應用做了初步的探討。

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