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基于流動注射光度法的吸光度/留存時間比自動測定過氧化物酶活性方法

2015-11-03 07:48:04李永生鄭巍高秀峰
分析化學 2015年10期

李永生 鄭巍 高秀峰

摘 要 本研究給出了流動注射分光光度系統(FI-SP)測定酶活性濃度(Ec)的通用公式Ec=kΔA/Δt; Δt是在酶促反應線性響應區域內試樣塞的平均留存時間;ΔA為平均留存時間處對應的吸光度; k=nV/(εvL),V為樣品注入點到流通池入口之間的管路總容積,n為酶底物與產物的反應摩爾比,ε為產物的摩爾吸收系數,v為注入的酶液體積,L為流通池光程;FI-SP系統確定后k為常數。在此基礎上,將H2O2/過氧化物酶(POD)/愈創木酚(GA)反應體系導入FI-SP系統,建立了一種無需標準曲線的POD活性快速準確測定的新方法。此方法優化后的條件:載流磷酸鹽緩沖液濃度為0.05 mol/L(pH 5.5),進樣體積為40 μL,反應盤管長度200 cm, 1.5 mmol/L H2O2,3.5 mmol/L GA,0.4 mol/L HCl(清洗液),檢測波長470 nm,產物的摩爾吸光系數為0.0125 L(μmol ·cm)。本方法的重現性RSD<0.38%(n=11),分析速度為40樣/h,測定范圍為450~7260 U/L,檢出限為89 U/L。在優化條件及60℃下,用本方法測定了多種白蘿卜中POD活性,結果與動力學曲線法完全相同。

關鍵詞 流動注射分析;過氧化物酶;蘿卜提取液;愈創木酚;過氧化氫

1 引 言

過氧化物酶(POD, EC 1.11.1.7)是一種廣泛存在于植物和動物體內的酶,被應用在臨床檢驗[1]、環境監測[2]、有機合成[3]和食品分析[4]等領域,大多數生化試劑盒都含有POD,其最重要的指標就是酶活性。因此,POD活性的快速準確定量尤為重要。POD能催化酚類或胺類顯色試劑與H2O2的反應;常用的顯色試劑有鄰苯二胺[5]、季胺[6]、2,2-聯氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽(ABTS)[7]、鄰苯三酚[8]、愈創木酚(GA)[9]、以及胺和酚類的耦合物[1,10]。這些顯色劑在POD催化下與H2O2反應生成的產物都可通過比色法進行定量,但最常用的顯色劑是低毒性、廉價的GA。早先認為H2O2/POD/GA體系的產物是愈創木酚四聚體(4-GA)[9],但新的研究發現產物是愈創木酚二聚體(2-GA)[11~13]。我們驗證了此結果并發現該產物不穩定,會很快分解成其它物質而褪色[14], 這導致采用手工比色法定量POD活性時得到的結果重現性很差。此外,由于該產物不穩定,難以提純,所以只能通過反應物GA的濃度間接地求得反應體系中產物2-GA的摩爾吸光系數(ε)[15],并用此ε值去計算POD活性;但這又會由于ε差異導致得到的POD活性值產生較大的誤差。

測定POD活性方法除比色法外[16], 還有熒光光度法[17,18]和化學發光法[19~21]等。測定POD活性的手工熒光法和化學發光法靈敏度高、線性范圍寬;但是,由于POD催化反應的產物激發波長在紫外區,所以被測樣品中存在的雜蛋白會對熒光法產生干擾;手工化學發光法的靈敏度雖高但測定結果的重現性較差。流動注射分析(Flow injection analysis, FIA)作為一種自動化分析技術,具有操作簡便、分析速度快、精度高等優點[22],它能與各種檢測器組合用于酶活性的自動快速測定[23~25]。Holm[7]用ABTS作為供氫體,利用流動注射光度法對發酵樣品中微生物POD活性進行了測定;但此方法的不足之處是ABTS試劑的價格昂貴且穩定性也較差。本研究選擇價廉、穩定、且被廣泛應用的GA作為供氫體,基于FIA光度法建立了一種新的測定POD活性的分析流路(Flow-injection spectrophotometry for POD, FIA-SP-POD),并對蘿卜提取液中的POD含量及活性進行了測定。

2 實驗部分

2.1 儀器與試劑

安裝10 mm光程流通池的UV-1800PC型紫外/可見分光光度計(上海美譜達);AUW120D型電子天平(日本島津公司);800-1型離心機(常州普天儀器制造有限公司);JYZ-E6型原汁機(九陽股份有限公司);FIA-3100流動注射處理儀(北京吉天儀器有限公司);ASB-200恒溫控制器(日本分光株式會社);CP224S分析天平(德國賽多利斯集團);pXJ-1C+離子活度計(成都世紀方舟科技有限公司);SHZ-D循環水式真空泵(鄭州金育科貿有限公司);800B臺式離心機(上海安亭科學儀器廠)。

GA (國藥集團化學試劑有限公司)、HRP(≥250 U/mg, Sigma公司);實驗用水為超純水(電導率0.065 μS/cm);其余試劑均為分析純。新鮮白蘿卜購于本地超市。

2.2 蘿卜粗酶液制備

稱取50 g新鮮白蘿卜,切成小塊(約1 cm3),置于榨汁機中榨汁,用真空泵將濾渣進行抽濾,合并兩次收集的濾液,然后在4000 r/min下離心10 min;最后用針式過濾器(13 mm/0.45 μm)將離心上清液進行過濾;濾液即為粗酶液, 置于冰箱4℃下保存。

2.3 測定原理

2.4 FIA系統及測定過程

FIA-SP-POD系統見圖1。測定過程為:當雙通道注入閥(V)轉至“采樣”位置時,酶試樣在P1的抽吸作用下充滿樣品定量環(SL),多余的樣品從W2排出,采用P1抽吸采樣,可縮短試樣流經途徑,達到節省試樣目的;當此閥轉至“注入”位置時,PBS緩沖液載流(C)推動SL中“酶樣品塞”進入反應盤管,與反應試劑(R1)匯合,樣品塞中的POD催化H2O2/GA反應生成2-GA,流經流通式檢測器,給出吸光度信號(A);試樣從注入到產物出現最大吸收峰之間的留存時間為Δt;與此同時,HCl清洗液被P2吸入清洗液定量環(RL),多余的清洗液從W1排出。當此閥再轉至“采樣”位置時,PBS緩沖液載流(C)推動RL中的HCl清洗液塞,依次進入反應盤管和流通池進行自動清洗,檢測器給出基線信號(Ao),兩者之差為ΔA(A-Ao)。將此ΔA/Δt代入公式(3)可求得Ec。

3 結果與討論

3.1 FIA系統參數的優化

基于前期手工法[27]將FIA-SP-POD系統的初始條件設定如下:1.5 mmol/L GA,0.5 mmol/L H2O2,兩者等體積混合作為R1; POD樣品的注入體積60 μL;0.05 mol/L的磷酸鹽緩沖液(pH 5.5)作為載流;0.4 mol/L HCl作為清洗液;P1轉速20 r/min (1.73 mL/min),P2轉速20 r/min;反應盤管(Φ 0.8 mm)長度為200 cm;背壓管(Φ 0.3 mm)長度為50 cm。采用單因素優選法考察了FIA法測定POD活性時的影響因素。

3.1.1 反應盤管最適長度的考察 在FIA-SP-POD系統中,反應盤管長度影響反應進程和分析速度。因此,用白蘿卜提取液作為測試樣品,考察了RC長度(150, 200, 250, 300和350 cm)對反應產物吸光度的影響。得到的結果表明,RC長度增加,產物吸光度先增大后逐漸減小,RC長度在200 cm 時ΔA最大。其原因是:RC長度較短時反應時間短,導致反應不充分;RC太長時,反應產物的生成速率小于其在管路中被稀釋的速率,導致吸光度值緩慢下降。所以本系統的RC選定為200 cm。

3.1.2 試樣環最適體積的考察 FIA-SP-POD系統中采樣環(SL)的體積即為POD溶液的體積,系統中加入的POD量不同導致酶催化速率不同,進而影響FIA系統的靈敏度,因此,在RC為200 cm的前體下,考察了SL(30, 40, 50, 60和70 μL)對反應產物吸光度的影響。結果表明,SL增加基本上不影響產物吸光度值;

其原因可能是H2O2與GA反應已達到平衡,再增加SL僅僅是酶過量而沒有增加反應產物的生成量。考慮到方法靈敏度及節省試樣的因素,選定SL為40 μL。

3.1.3 FIA系統基線漂移的消除 研究發現,在FIA-SP-POD系統中H2O2與GA反應所生成的褐色2-GA,容易吸附在流通池中,導致FIA系統的基線漂移。所以,為了減小由于2-GA導致的基線漂移,在FIA系統導入清洗液。即在FIA流路中設計了一個異步注入閥,利用此閥將清洗液在“酶試樣塞”之后注入FIA系統(60 μL),以達到對FIA系統自動清洗,減小基線漂移的效果。

為了考察此效果,在FIA系統中分別用HCl和NaOH作為清洗液,蘿卜提取液作為測試樣品,得到了圖2中的兩條實測曲線。隨著清洗液濃度(HCl和NaOH)增加,基線漂移值減小;在相同濃度下,HCl的清洗效果(基線漂移值)優于NaOH。所以,最后選取0.4 mol/L HCl溶液作為清洗劑。

3.2 反應體系影響因素的考察

3.2.1 POD最適溫度 溫度是影響POD活性的因素之一。低溫使酶活性不能完全顯現,高溫又會使酶蛋白變性,喪失活性。將FIA-SP-POD系統的RC置于恒溫控制器內,先用熱電偶對RC出口液的溫度進行校正,然后用白蘿卜提取液作為測試樣品,在不同溫度下(25℃~70℃)考察了溫度與白蘿卜POD活性的相關性。結果見圖3a。在60℃時, 酶催化反應產物的ΔA最大(此時FIA系統的平均留存時間Δt都相同,所以ΔA與反應速率ΔA/Δt及Ec成正比關系),當溫度大于60℃時, ΔA開始降低,即高溫導致POD失活,POD的催化活力下降。由此可知白蘿卜POD最適溫度為60℃,此結果與文獻\[28\]一致。

3.2.2 POD最適pH值 酸度對酶活性的影響,不是酸、堿對酶分子解離狀態的影響,而是對酶活性中心或相關基團解離狀態的影響。因此本實驗用白蘿卜提取液作為測試樣品,考察了磷酸鹽緩沖液(0.05 mol/L)的酸度(pH 3.0~9.0)對反應體系中POD活性的影響。除溫度控制在60℃外,其它條件同上。由圖3b所示的結果可知,當pH 在3~5.5范圍時,pH 增加,ΔA增大,即POD催化生成的產物增多;在pH 5.5~9.0范圍時,pH 增加,ΔA反而降低,即POD催化生成的產物減少;在pH 5.5時產物最多即POD活性最強。由此可知蘿卜中所含的POD的最適pH 為5.5。

3.2.3 H2O2濃度的考察 在上述優選條件下,考察反應體系中H2O2濃度(0~2.0 mmol/L)對POD催化反應的影響。得到的結果見圖3c。可以看出:在給定的Δt值下,H2O2濃度增加,產物ΔA逐漸增大,當此濃度大于1.5 mmol/L時,產物ΔA不再變化,即POD催化產物的生成速率趨于穩定。因此, 將H2O2濃度設定為1.5 mmol/L。在此基礎上,以H2O2為底物作Lineweaver-Burk雙倒數圖,根據雙倒數圖的截距,計算得到以H2O2為底物的米氏常數(Km)為0.21 mmol/L,酶促反應最大速度(Vmax)為1.155 mmol/(L·min)。

3.2.4 GA濃度的考察 在上述優選條件下,也考察了GA濃度(0~4.0 mmol/L)對POD酶催化反應的影響。得到的結果見圖3d。在給定的Δt值下,曲線的變化趨勢與H2O2底物相似,即隨著GA/POD/H2O2反應體系中GA濃度增大,ΔA先迅速增大后不再變化;當濃度大于3.5 mmol/L時,反應速率(ΔA/Δt)趨于穩定。故本系統選定GA濃度為3.5 mmol/L。同樣以GA為底物作Lineweaver-Burk雙倒數圖,再根據此圖計算出以GA為底物的Km′和Vmax′值分別為0.20 mmol/L和0.539 mmol L1·min1。結果表明:白蘿卜POD與GA之間的親和力與H2O2相差不大。

3.3 干擾離子對POD活性測定影響

金屬離子可能與POD形成絡合物進而影響POD活性,本實驗考察了4種鹽溶液(FeCl3, CuSO4, ZnSO4, CoSO4)對POD活性測定的影響。實驗時,白蘿卜POD作為測試樣品,在0~0.8 mmol/L范圍內改變FIA-SP-POD系統載流中的金屬離子濃度,得到的結果見圖4。從圖4a可知,隨著Fe3+, Cu2+, Zn2+, Co2+濃度的增加,在給定的Δt值下,相關的ΔA都有增大的趨勢,即Fe3+, Cu2+, Zn2+, Co2+對POD均有一定程度的激活作用;POD激活順序為Fe3+ > Cu2+ > Zn2+ > Co2+。所以,在提取白蘿卜POD時,要避免接觸這些金屬離子,防止發生酶促褐變。

此外,在載流中分別添加檸檬酸(0~20 mmol/L)、抗壞血酸(0~0.2 mmol/L)和L-半胱氨酸(0~2.0 mmol/L),考察了這些有機酸類對POD活性的影響。從得到的圖4b~d 3條曲線可以看出:添加的有機酸濃度增大,在給定的Δt值下吸光度都逐漸降低。這表明這3種有機酸對POD活性有明顯的抑制作用,其抑制作用順序為抗壞血酸>L-半胱氨酸>檸檬酸。由于L-半胱氨酸和檸檬酸都與POD活性中心的Fe3+發生螯合反應,使酶活性中心失去催化功能,因而抑制了POD的活性或減弱了POD與底物的親和力。

3.4 摩爾吸收系數測定

常規比色法測定POD活性時,是利用H2O2/POD/GA體系反應產物在470 nm處的ΔA值,帶入公式(2)計算得到。但本研究發現:ε值是準確定量POD酶活性的最關鍵因素;當所用儀器(波長分辨率、靈敏度)及方法的測試條件(溫度、pH 及溶劑)不同時得到的ε不同。所以,計算POD活性時不能直接將文獻或商家給出的ε值代入公式(2)進行計算,須在選定條件下用所選儀器進行測定。

因此,本實驗對準確測定ε2-GA方法進行了研究。由于2-GA不穩定、無法提純,不能通過直接測定其吸光度值得到ε2-GA值,只能利用GA濃度間接求出2-GA的濃度(2H2O+2GA(POD)2-GA+4H2O)。理論上,當H2O2/POD/GA體系中POD過量, 且H2O2濃度遠大于GA時,可認為GA完全轉化為2-GA。所以, 對所需的POD活性濃度、H2O2/GA濃度比進行了考察。

3.4.1 GA完全轉化為產物所需的HRP活性濃度 用商品化的HRP作為測試樣品,分別取20 μL的50, 100, 250, 500, 1000和2500 U/L HRP,加入0.5 mmol/L H2O2+1.5 mmol/L GA混合液中[26]測定2-GA的吸光度,結果見圖5a。當HRP濃度小于1.0 kU/L時,2-GA的吸光度隨HRP活性濃度增加而增大,當HRP濃度大于1.0 kU/L時,2-GA的吸光度不再變化,即此時HRP活性濃度能使GA完全轉化為產物。

3.4.2 GA完全轉化為產物所需的H2O2的濃度 選定HRP為1.0 kU/L、GA濃度為0.2 mmol/L,使其與不同濃度的H2O2(0.2, 0.4, 0.6, 0.8, 1.0和2.0 mmol/L)按1+1混合,測定其產物2-GA的吸光度,結果見圖5b,產物吸光度隨H2O2濃度增加呈線性增加趨勢,當H2O2濃度大于GA濃度的5倍時,產物吸光度不再隨H2O2濃度而變化。由此得出結論:當HRP為1.0 kU/L、H2O2/GA濃度比大于5時,GA能完全轉化為產物2-GA。因此,此時可根據已知的GA濃度換算出反應系統中的2-GA濃度,再將其帶入朗伯-比爾定律,就求得ε2-GA。在室溫(~20℃)下,用手工比色和5點平均數據得到的ε2-GA值為0.0122±0.0031 L/(μmol·cm)。

3.4.3 產物摩爾吸收系數的平均值 為了得到FIA法測定白蘿卜POD的ε2-GA,用稀釋一倍后的白蘿卜粗酶液作為樣品(Ec>1.0 kU/L),FIA系統中載流為PBS緩沖液(pH 5.5),R1(H2O2/GA)按1+1混合、且濃度比大于5 (H2O2/GA: 1.5/0.01, 1.5/0.04, 1.5/0.08, 1.5/0.12, 1.5/0.16, 1.5/0.20和1.5/0.24 mmol/L),在60℃下測定了FIA-SP-POD系統中H2O2/POD/GA反應體系形成的產物吸光度,并將換算出的2-GA濃度(1.25, 5, 10, 15, 20, 25和30 μmol/L,c2-GA= 1000×(cGA/4)/2)與其吸光度值進行數學回歸,最后得到相關的線性方程:ΔA=0.0125c2-GA+0.050 (r=0.9995);此斜率值0.0125 L (μmol cm)1即為本系統的ε2-GA平均值。

3.5 蘿卜POD活性測定

考察了POD的線性響應范圍和精密度以及檢出限。在優選條件下,一系列HRP標液作為樣品,用FIA-SP-POD系統檢出它們在Δt下的ΔA值,然后代入公式3,求出對應的POD活性值。結果表明:在給定的Δt(0.53 min)下,在450~7260 U/L范圍內HRP活性濃度與ΔA值呈現良好的線性相關(ΔA=0.00013Ec+ 0.0012,r=0.9985)。隨后,分別用500 U/L、2500 U/L HRP標液進行11次測定,得到兩組標液的RSD分別為0.62%(c=501±3 U/L)、0.31%(c=2530±8 U/L);此結果表明本方法測定POD活性濃度的精度很好;用 500 U/L HRP為樣品,計算得到本方法的檢出限為7.0 U/L (cL=3SD/K, SD=0.000326, K=0.00013)。

用pH 5.5磷酸鹽緩沖液將蘿卜提取液按10%, 15%, 20%, 25%, 30%和35%比例稀釋成6個樣品(Ec10~Ec35),分別注入FIA-SP-POD系統,在給定的Δt下,檢測其催化產物的ΔA(0.067, 0.105, 0.135, 0.170, 0.193, 0.220),得到了一條蘿卜提取液與ΔA呈良好線性關系的相關曲線(ΔA=0.638c+0.004, r=0.9965), 表明本方法基于平均留存時間(Δt)處的ΔA能快速準確地定量POD活性濃度。

另外,模擬手工酶動力學曲線法在本系統上采用流動注射停留法,對上述稀釋的蘿卜POD活性進行了測定。操作過程是:注入酶樣品32s后停泵(在響應峰的最大值之后停泵),連續記錄H2O2/POD/GA體系在后30s期間內的催化反應動力學曲線(ΔA vs Δt),根據此區間曲線的斜率,求得POD活性濃度。得到的數據表明,停留法的結果(Ec10:777±3 U/L,Ec15:1211±13 U/L,Ec20:1470±14 U/L,Ec25:1760±30 U/L, Ec30:2075±20 U/L,Ec35:2268±23 U/L)與上述FIA-SP-POD系統的結果(Ec10:706±8 U/L,Ec15:1105±6 U/L,Ec20:1425±22 U/L,Ec25:1802±6 U/L,Ec30:2034±27 U/L,Ec35:2323±32 U/L)是一致的。

選取4種蘿卜的提取液作為酶樣品,用FIA-SP-POD系統測定其產物的吸光度,然后代入公式3,得到POD活性值。得到結果為:紅皮蘿卜(14673 U/L)>青蘿卜(14365 U/L)>圓蘿卜(13076 U/L)>白蘿卜(8309 U/L)。為了考察本方法的可靠性,用HRP標準進行了加標回收率實驗(表1)。考慮到HRP自然失活的影響,每次加標實驗前先對HRP活性進行了校正。本方法的回收率在95.2%~107.1%之間,結果滿意。

4 結 論

本研究基于H2O2/POD/GA反應體系,利用流動注射吸光度/留存時間比值法,建立了一種無需標準曲線的POD活性快速準確測定新方法,分析速度可達40樣/h。用本方法測定POD活性,不但減少了手工操作帶來的誤差,而且具有準確度高、重現性好、分析速度快、自動化程度高的優點。

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