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miR-145對人角質形成細胞系HaCaT細胞增殖、凋亡和細胞周期的影響

2015-12-01 01:09:29李璟蓉王建琴方銳華曾仁山莫金雪郭云龍賈淑青
中華皮膚科雜志 2015年6期
關鍵詞:影響檢測

李璟蓉 王建琴 方銳華 曾仁山 莫金雪 郭云龍 賈淑青

miR-145對人角質形成細胞系HaCaT細胞增殖、凋亡和細胞周期的影響

李璟蓉 王建琴 方銳華 曾仁山 莫金雪 郭云龍 賈淑青

目的 研究miR-145對人角質形成細胞系HaCaT細胞增殖、細胞周期及凋亡的調控效應。方法化學合成miR-145的模擬物,采用瞬時轉染的方法過表達miR-145。采用實時PCR方法檢測miR-145的表達。MTS方法檢測過表達miR-145對HaCaT細胞增殖的影響。流式細胞儀分析過表達miR-145對細胞周期及凋亡的影響。采用熒光素酶實驗,實時PCR和Western印跡鑒定NRAS是否為miR-145的靶基因。結果 與陰性對照(NC)mimics轉染組相比,miR-145 mimics轉染組miR-145表達水平上調(85.00±1.21)倍,兩組差異有統計學意義(t=115.90,P<0.001)。轉染 miR-145 mimics有抑制 HaCaT細胞的增殖作用(F=8.76,P=0.008);轉染后的時間因素(24、48、72、96 h)對細胞有影響(F=17.85,P< 0.001),轉染 mimics和培養時間之間不存在交互作用(F=1.21,P=0.18)。與NC mimics轉染組相比,miR-145 mimics轉染組的早期凋亡、晚期凋亡細胞比例均明顯增加,差異有統計學意義(18.9%±4.1%比4.3%±1.2%,t=7.126,P<0.01;9.3%±2.3%比3.6%±1.6%,t=12.38,P<0.01)。與NC mimics轉染組相比,miR-145 mimics轉染組HaCaT細胞的G2及S期細胞比例均明顯降低,差異均有統計學意義(6.26%±1.2%比19.36%±3.45%,t=7.610,P=0.017;7.91%±1.3%比18.56%±5.23%,t=7.230,P=0.019),而處于G1期的細胞比例升高,差異也有統計學意義(85.83%±5.2%比62.08%±6.23%,t=11.78,P=0.007)。與NCmimics聯合psi-CHECK2-NRAS-wild組相比,在293T細胞中共轉染miR-145 mimics和psi-CHECK2-NRAS-wild質粒,其熒光素酶值明顯下降,miR-145可抑制含NRAS mRNA 3′UTR報告基因的熒光素酶表達(t=11.09,P=0.008);而將NRAS mRNA 3′UTR報告基因上miR-145的結合位點進行突變后,轉染miR-145 mimics對含NRAS mRNA 3′UTR報告基因的熒光素酶表達無明顯的影響(P>0.05)。實時PCR和Western印跡結果表明,過表達miR-145 mimics后,NRAS mRNA表達水平未出現明顯變化(P>0.05),對NRAS蛋白水平的表達有明顯的抑制(1.52±0.07比0.20±0.02,t=28.43,P<0.01)。結論 miR-145可能通過NRAS影響HaCaT細胞的周期從而抑制細胞的增殖,同時促進HaCaT細胞的凋亡。

角蛋白細胞;細胞增殖;細胞周期;細胞凋亡;尖銳濕疣;HaCaT細胞;miR-145;NRAS

尖銳濕疣的發生發展是一個復雜的調控過程。microRNA(miRNA)是一類長度在21~25 nt的非編碼RNA,其作用方式之一是通過結合在靶基因的3′UTR的位置抑制靶基因的翻譯過程,影響靶基因的蛋白表達[1]。研究表明,miRNA通過調節細胞周期、凋亡和增殖相關基因參與調節細胞的周期、凋亡和增殖過程[2-4]。我們的前期研究[5]表明,miR-145 在尖銳濕疣組織中顯著性低表達,提示該miRNA可能在調控尖銳濕疣的發生發展中起作用。另外,我們通過信號通路富集分析發現,miR-145可能參與調控絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)信號通路[5]。本文中,我們研究 miR-145是否調節HaCaT細胞的增殖、凋亡和周期變化,并驗證MAPK信號通路的關鍵基因NRAS(neuroblastoma RAS viral(v-ras)oncogene homolog)是否為miR-145的靶基因。

材料與方法

一、材料與試劑

HaCaT和293T細胞(武漢典藏培養物保藏中心)培養基為含10%胎牛血清的RPMI-1640培養液(美國Hyclone公司),并添加100 U/ml青霉素和100 mg/ml鏈霉素(美國Sigma公司)。psi-CHECK2報告基因載體、熒光素酶檢測系統(美國Promega公司)、脂質體(LipofectamineTM2000)及 TRIzol(美國Life technologies公司);NRAS抗體及二抗(美國Cell Signaling Technology公司);SYBR Green PCR Master Mix(日本 TaKaRa公司);miR-145及內參照U6 PCR引物(廣州銳博生物科技有限公司);熒光定量PCR儀(PRISM?7500 Sequence Detection System,美國ABI公司)。

二、方法

1.細胞培養及轉染:HaCaT細胞用含10%胎牛血清的RPMI-1640培養液在37℃、5%CO2條件下進行常規培養。轉染當天,細胞匯合度約為50%~60%,轉染過程根據Lipofectamine 2000說明書進行。

2.內鹽法(MTS)檢測細胞增殖:培養HaCaT細胞,分別轉染miR-145 mimics及陰性對照(NC)mimics,每組設置 5 個平行樣。分別于 0、24、48、72 h各時間點的細胞中加入MTS,比例為1∶10,即100 μl培養液加入10 μl檢測液。在孵育4 h后,酶標儀讀板,MTS檢測法讀取A490數據。

3.流式細胞儀檢測細胞凋亡及細胞周期:培養HaCaT細胞,分別轉染miR-145 mimics及NC mimics,然后用胰酶消化細胞,再用預冷的磷酸鹽緩沖液(PBS)清洗細胞,離心沉淀細胞,棄上清液。

細胞凋亡的檢測:將細胞輕輕重懸于預冷的1×結合緩沖液中,使其密度約為1×106/ml。加入1.25μl Annexin V-FITC,室溫(18~24℃)避光反應15 min。室溫1 000×g離心5 min,去除上清液。將細胞用0.5 ml預冷的1×結合緩沖液輕輕重懸,加入10 μl碘化丙錠,將樣本放于冰上避光保存,并立即用流式細胞儀檢測分析。

細胞周期檢測:以0.5 ml PBS重懸細胞,迅速打入3.5 ml 70%預冷的乙醇中,吹打混勻。300×g離心10 min,棄上清液,PBS洗滌細胞3次以去除殘留的乙醇。用含有0.2 mg RNase A的1 ml碘化丙錠/Triton X-100染色液(20 μg碘化丙錠/0.1%Triton X-100)重懸細胞,37℃染色15 min。立即用流式細胞儀檢測分析。

4.熒光素酶活性檢測:采用Targetscan(www.targetscan.org/)和 miRanda(www.microrna.org)在 線預測軟件預測miR-145與NRAS結合位點。常規PCR 方法擴增 NRAS 3′UTR(NM_002524.4)的全長序列,成功構建熒光素酶報告基因載體,并命名為psi-CHECK2-NRAS-wild。利用PCR點突變的方法構建miR-145結合位點突變的熒光素酶報告基因載體,并命名為psi-CHECK2-NRAS-mut。實驗分組:miR-145 mimics聯合 psi-CHECK2-NRAS wild組、NC mimics聯合 psi-CHECK2-NRAS wild組、miR-145 mimics聯合psi-CHECK2-NRAS mut組、NC mimics聯合psi-CHECK2-NRAS mut組。轉染293T細胞48 h后,按照熒光素酶檢測試劑盒的步驟檢測各組的熒光值。

5.熒光定量PCR檢測NRAS及miR-145的表達:轉染24 h收集細胞樣品,TRizol提取細胞總RNA。頸環法和oligo dT法反轉錄得到cDNA分別用于miR-145和NRAS檢測;SYBR Green法進行PCR檢測。NRAS的上游引物為:5′-TCTGGAGCAG TGCTACTCTGT-3′,下游引物為:5′-TCACTGCCAG TCACAGACAT-3′。PCR擴增條件為:94℃預變性5 min,然后94℃30 s變性、55℃30 s退火、72℃30 s延伸進行40個循環。每個樣本重復3次。

6.Western印跡檢測NRAS表達:轉染48 h收集細胞樣品,RIPA裂解液裂解細胞。BCA法測定蛋白濃度,按照總蛋白一致的原則上樣,10%分離膠進行SDS-PAGE電泳;100 V濕轉50 min,5%脫脂奶粉37℃封閉1 h;TBST洗10 min 3次,NRAS一抗(1∶1 000)室溫孵育 1 h;TBST洗 10 min 3次,兔抗鼠(1∶4 000)室溫孵育1 h;TBST洗10 min 3次;暗室曝光。

7.數據統計:采用SPSS 17.0統計軟件分析數據,計量資料采用±s,細胞增殖實驗采用重復測量方差分析,其余檢測采用t檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。

結 果

一、miR-145對 HaCaT細胞增殖的影響

細胞轉染后,采用熒光定量PCR檢測miR-145的表達水平,與NC mimics轉染組相比,miR-145 mimics轉染組miR-145的表達水平上調(85±1.21)倍,兩組差異有統計學意義(t=115.90,P< 0.0001)。采用 MTS 檢測轉染后 24、48、72、96 h miR-145對HaCaT細胞增殖能力的影響,結果見表1。重復測量方差分析結果顯示,轉染miR-145 mimics對抑制HaCaT細胞的增殖作用有統計學意義(F=8.76,P=0.008)。轉染后的時間因素有統計學意義(F=17.85,P<0.001),且這種抑制作用隨時間的延長而愈加明顯。轉染mimics和培養時間之間不存在交互作用(F=1.21,P=0.18),說明時間因素的作用不隨分組而改變。

二、miR-145對HaCaT細胞凋亡的影響

采用流式細胞儀對miR-145 mimics轉染組和NC mimics轉染組細胞凋亡情況分別進行檢測。結果見圖1。NC mimics轉染組的早期凋亡、晚期凋亡細胞比例分別為4.3%±1.2%和3.6%±1.6%;miR-145 mimics轉染組分別為18.9%±4.1%和9.3%±2.3%。與NC mimics轉染組相比,miR-145 mimics轉染組晚期凋亡細胞的比例明顯增加(t=12.38,P=0.0065),尤其是早期凋亡的細胞比例差異有統計學意義(t=7.13,P=0.0021),細胞總凋亡比例明顯增加(t=20.50,P=0.0024)。

三、miR-145對HaCaT細胞周期的影響

流式細胞儀檢測結果見圖2。miR-145 mimics轉染組細胞G1、G2及S期細胞比例與NC mimics轉染組比較(85.83%±5.20%比62.08%±6.23%,t=11.78,P=0.007;6.26% ±1.20%比 19.36% ±3.45%,t=7.61,P=0.017;7.91% ± 1.30% 比 18.56% ±5.23%,t=7.23,P=0.019),HaCaT 細胞處于 G2、S期的細胞比例均明顯降低,而G1期細胞比例升高,差異均有統計學意義。

四、miR-145靶基因的分析

表1 MTS檢測轉染miR-145 mimics后對HaCaT細胞增殖的影響(A490,±s)

表1 MTS檢測轉染miR-145 mimics后對HaCaT細胞增殖的影響(A490,±s)

注:n=5。a:重復測量方差分析

組別 0 24 h 48 h 72 h 96 h NC mimics轉染組 0.21±0.02 0.46±0.03 0.86±0.04 1.01±0.06 1.21±0.08 miR-145 mimics轉染組 0.22±0.03 0.34±0.05 0.51±0.08 0.66±0.08 0.80±0.09 P值a >0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05

圖1 流式細胞儀檢測miR-145對HaCaT細胞凋亡的影響 miR-145 mimics轉染組細胞總凋亡比例較NC mimics轉染組明顯增加

通過miRanda和Targetscan在線預測軟件預測分析出miR-145 mimics和NRAS的3′UTR存在結合位點,結合信息及突變質粒的信息見圖3。雙熒光報告基因結果顯示,與NC mimics聯合psi-CHECK2-NRAS-wild組相比,在293T細胞中共轉染miR-145 mimics和psi-CHECK2-NRAS-wild質粒,其熒光素酶值明顯下降,差異有統計學意義(t=11.09,P=0.008)。而將 NRAS mRNA 3′UTR 報告基因上miR-145的結合位點進行突變后,轉染miR-145 mimics對含NRAS mRNA 3′UTR報告基因的熒光素酶表達無明顯影響(t=0.53,P=0.647),見圖4。以上結果說明,miRNA靶基因預測軟件預測的NRAS mRNA 3′UTR上的miR-145結合位點可以和miR-145結合,從而影響熒光素酶的表達。

圖3 miR-145與NRAS的結合信息及NRAS 3′UTR的突變信息

圖4 轉染miR-145 mimics對含NRAS mRNA 3′UTR報告基因

采用熒光定量PCR和Western印跡法檢測過表達miR-145 mimics對NRAS表達的影響:過表達miR-145 mimics后,NRAS mRNA 的表達水平未出現明顯變化(P>0.05)。圖 5示,通過內參GAPDH校正后,NC mimics轉染組NRAS的相對表達量是1.52 ± 0.07,miR-145 mimics轉染組NRAS的相對表達量是0.20±0.02。過表達miR-145 mimics對NRAS的蛋白水平的表達有明顯的抑制,差異有統計學意義(t=28.43,P=0.0012)。

討 論

研究表明[5],miR-145在尖銳濕疣組織樣本中呈顯著低表達,提示miR-145可能參與尖銳濕疣的發生發展過程。為進一步研究miR-145在尖銳濕疣的作用,我們選擇HaCaT細胞作為研究對象[6]。

目前研究認為,引起尖銳濕疣的HPV感染與宮頸癌、鱗狀細胞癌、陰莖癌、女性外陰癌等惡性腫瘤的發生密切相關[7-8]。Nambaru 等[9]對 121 例宮頸癌患者的標本進行研究,在HPV整合位點附近發現了53個miRNA,其中39個miRNA與腫瘤相關,25個miRNA在宮頸癌中被報道。miR-145在宮頸癌組織中顯著性低表達[10]。在Hela細胞中過表達miR-145可以顯著性抑制細胞的增殖[11]。Sachdeva 等[12]的研究表明,miR-145在體內和體外環境下均可抑制宮頸癌細胞的增殖。

圖5 Western印跡檢測NRAS蛋白水平的表達 miR-145 mimics轉染組相對于NC mimics轉染組,其NRAS蛋白水平下降

本研究中,我們發現,miR-145不僅可以抑制HaCaT細胞增殖,而且可以影響HaCaT細胞的細胞周期。結果顯示,過表達miR-145可以明顯抑制細胞從G1到S期的過渡,使處于S期的細胞數量明顯減少。另一研究結果顯示,在黑素瘤細胞中,過表達miR-145可以阻礙細胞從G1期到S期的過渡,從而抑制細胞的增殖[13]。提示,miR-145可能通過影響細胞周期的方式影響HaCaT細胞的增殖。另外,我們發現,miR-145還可以促進細胞凋亡。由于細胞周期和細胞增殖、凋亡屬于不同的信號通路調控,我們可以認為,miR-145的靶基因應該不止一個。通過miRNA靶基因預測軟件分析,我們發現miR-145的潛在靶基因多達幾百個。

我們通過hsa-mir-145靶基因信號通路富集分析發現,miR-145可能參與MAPK信號通路的調節,而MAPK信號通路在調節細胞增殖和細胞凋亡方面都發揮重要的作用,其中,NRAS是MAPK信號通路的關鍵基因[5]。本研究證明,NRAS是miR-145的靶基因,且miR-145可以通過影響NRAS翻譯的方式影響NRAS蛋白水平的表達。提示我們miR-145可能通過影響NRAS的表達從而影響MAPK信號。

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2014-10-13)

(本文編輯:周良佳 顏艷)

Effects of miR-145 on the proliferation,apoptosis and cell cycle of a human keratinocyte cell line HaCaT

Li Jingrong*,Wang Jianqin,Fang Ruihua,Zeng Renshan,Mo Jinxue,Guo Yunlong,Jia Shuqing.*Department of Dermatology,Nansha Central Hospital of Guangzhou,Guangzhou 511457,China

Wang Jianqin,Email:jianqinwang@tom.com

ObjectiveToinvestigatetheregulatoryeffectsofmiR-145ontheproliferation,cellcycle andapoptosis of a human keratinocyte cell line HaCaT.MethodsmiR-145 mimics and negative control(NC)mimics were chemically synthesized and then transiently transfected into HaCaT cells respectively.After additional culture for different durations,real-time PCR was performed to determine the expression level of miR-145,MTS assay to estimate cell proliferation,and flow cytometry to detect cell apoptosis and cycle.Luciferase assay,real-time PCR and Western blot were conducted to determine whether NRAS was the target gene of miR-145.ResultsThe miR-145 expression level in miR-145 mimictransfected cells increased by 85.00±1.21 folds compared with NC mimic-transfected cells(t=115.90,P<0.0001).The transfection with miR-145 mimics significantly inhibited the proliferation of HaCaT cells(F=8.76,P=0.008),and the inhibitory effect significantly varied with the duration(24 - 96 hours)of culture after transfection,with no interaction effect between the transfection with miR-145 mimics and culture duation (F=1.21,P=0.18).Compared with NC mimic-transfected cells,those transfected with miR-145 mimics showed a significant increase in the proportion of early apoptotic cells(18.9%±4.1%vs.4.3%±1.2%,t=7.126,P<0.01),late apoptotic cells(9.3% ±2.3%vs.3.6% ±1.6%,t=12.38,P<0.01),G1-phase cells(85.83% ±5.2%vs.62.08% ±6.23%,t=11.78,P=0.007),but a significant decrease in the percentage of G2-phase cells(6.26%±1.2%vs.19.36%±3.45%,t=7.610,P=0.017)and S-phase cells(7.91%±1.3%vs.18.56%±5.23%,t=7.230,P=0.019).As luciferase assay showed,luciferase activity was significantly lower in HaCaT cells cotransfected with miR-145 mimics and a recombinant luciferase reporter vector psi-CHECK2-NRAS-wild carrying the wild-type 3′UTR of NRAS than in those cotransfected with NC mimics and the vector psi-CHECK2-NRAS-wild (t=11.09,P=0.008),but similar between cells cotransfected with miR-145 mimics and a recombinant luciferase reporter vector psi-CHECK2-NRAS-mut carrying the mutant-type 3′UTR of NRAS and those cotransfected with NC mimics and the vector psi-CHECK2-NRAS-mut(P> 0.05).Real-time PCR and Western blot revealed that the overexpression of miR-145 mimics had no significant effect on NRAS mRNA expression(P> 0.05),but significantly inhibited NRAS protein expression(1.52±0.07 vs.0.20±0.02,t=28.43,P<0.01).ConclusionmiR-145 might inhibit proliferation and promote apoptosis of HaCaT cells by influencing cell cycle via NRAS.

Keratinocytes;Cell proliferation;Cell cycle;Apoptosis;Condylomata acuminata;HaCaT cells;miR-145;NRAS

10.3760/cma.j.issn.0412-4030.2015.06.014

廣東省醫學科研基金(B2013339)

511457廣州市南沙中心醫院皮膚科(李璟蓉、王建琴、莫金雪、郭云龍、賈淑青);廣州市第一人民醫院皮膚科(方銳華、曾仁山)

王建琴,Email:jianqinwang@tom.com

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