盧 晶 吳 謙 謝榮榮 仇海燕 程 呈 楊金奎*
(1.首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京同仁醫(yī)院內(nèi)分泌科 糖尿病防治研究北京市重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京100730;2.北京大學(xué)生命科學(xué)院,北京100871)
β位淀粉樣前體蛋白裂解酶1(β-site APP-cleaving enzyme 1,BACE1)在阿爾茨海默病(Alzheimer’s disease,AD)腦組織中的β-淀粉樣蛋白沉淀中起重要作用[1]。BACE2是BACE1的密切同源物,在阿爾茨海默病的發(fā)病中同樣起重要作用。已有研究[2]表明,糖尿病與阿爾茨海默病的發(fā)病密切相關(guān)。BACE1和BACE2均在人類胰腺組織中高表達(dá),BACE1在胰腺的內(nèi)分泌和外分泌腺中均有表達(dá),而BACE2僅在胰島β細(xì)胞中特異性表達(dá)[3]。BACE2在維持胰島β細(xì)胞的形態(tài)方面具有重要作用。將小鼠BACE2基因敲除后,小鼠的胰島β細(xì)胞團(tuán)增大,空腹血糖下降。葡萄糖刺激后,敲除鼠的胰島素分泌增加,血糖降低明顯[4]。BACE2特異性阻滯劑在小鼠中可刺激新的胰島β細(xì)胞生成。BACE2已經(jīng)成為2型糖尿病的藥物治療新靶點(diǎn)[5]。BACE2在胰島β細(xì)胞生成和胰腺發(fā)育中的具體作用機(jī)制尚不清楚,此外,為尋找糖尿病藥物治療新靶點(diǎn),針對(duì)BACE2基因的大規(guī)模藥物篩選亟須建立。
糖尿病動(dòng)物模型是研究糖尿病發(fā)病機(jī)制、臨床表現(xiàn)和藥物靶點(diǎn)篩選的基礎(chǔ)。糖尿病動(dòng)物模型可分為自發(fā)性和實(shí)驗(yàn)性糖尿病動(dòng)物模型兩類。前者與人類的單基因及多基因遺傳的2型糖尿病仍相差甚遠(yuǎn)。新近的實(shí)驗(yàn)性糖尿病動(dòng)物模型包括采用基因敲除技術(shù)構(gòu)建基因修飾動(dòng)物模型。傳統(tǒng)的基因敲除技術(shù)包括胚胎干細(xì)胞(embryonic stem cell,ES)細(xì)胞打靶技術(shù)、鋅指核酸酶(zinc finger nucleases,ZFNs)技術(shù)和轉(zhuǎn)錄激活因子樣效應(yīng)物核酸酶(transcription activator-like effector nucleases,TALEN)技術(shù)[6]。成簇的規(guī)律間隔的短回文重復(fù)序列(clustered regularly interspaced short palindromic repeats,CRISPR)-Cas9是細(xì)菌用來抵御病毒侵襲/躲避哺乳動(dòng)物免疫反應(yīng)的基因系統(tǒng)。2013年1月,科學(xué)家們利用RNA引導(dǎo)Cas9核酸酶技術(shù)可以在多種細(xì)胞中特定的基因組位點(diǎn)進(jìn)行切割、修飾,這一技術(shù)隨即被運(yùn)用到構(gòu)建基因敲除動(dòng)物模型中[7-9]。目前這一技術(shù)已廣泛用于斑馬魚的敲除動(dòng)物模型。
斑馬魚的內(nèi)臟器官、血液與視覺系統(tǒng),在基因水平上87%與人類同源。斑馬魚具有胚胎透明、體外發(fā)育、發(fā)育快、后代數(shù)量大等優(yōu)勢(shì),逐漸使其成為遺傳發(fā)育研究領(lǐng)域中的一種重要的模式生物[10]。斑馬魚在藥物篩選方面尤其具有極強(qiáng)應(yīng)用價(jià)值。斑馬魚胚胎可以同時(shí)提供大量互不干擾的形態(tài)學(xué)信息,在藥物篩選初期就可評(píng)估藥物的毒性,并盡早排除那些能引起毒性的化合物,因此構(gòu)建疾病基因相關(guān)的轉(zhuǎn)基因斑馬魚可以篩選治療相關(guān)疾病的潛在藥物[11]。此外,盡管人和斑馬魚的胰腺形態(tài)上存在一定的差別,但是與胰腺發(fā)育和疾病相關(guān)的分子機(jī)制相似。因此,構(gòu)建斑馬魚動(dòng)物模型可以觀察特定基因?qū)σ认侔l(fā)育的影響。
本研究擬應(yīng)用CRISPR/Cas9技術(shù)構(gòu)建BACE2大片段刪除的斑馬魚模式動(dòng)物模型。該動(dòng)物模型將被用于斑馬魚BACE2基因?qū)σ认侔l(fā)育的功能研究,為闡釋斑馬魚胰腺發(fā)育機(jī)制提供了動(dòng)物模型。本課題組將在后續(xù)研究中進(jìn)一步運(yùn)用BACE2斑馬魚模式動(dòng)物模型進(jìn)行大規(guī)模藥物篩選,篩選出針對(duì)糖尿病的新型藥物。
本研究在北京大學(xué)生命科學(xué)院張博教授斑馬魚飼養(yǎng)中心培育斑馬魚。選用AB品系的斑馬魚作為研究對(duì)象。斑馬魚的養(yǎng)殖條件是28.5℃的恒溫魚房,14 h光照/10 h黑暗交替循環(huán),飼養(yǎng)環(huán)境保持日夜循環(huán)水,每天另補(bǔ)充10%新鮮去離子水。
pMD 19-gRNA scaffold質(zhì)粒由北京大學(xué)熊敬維教授饋贈(zèng)。MirVanaTMmiRNA isolation kit(Ambion公司,美國);動(dòng)物組織總RNA提取試劑盒(貨號(hào)DP431),F(xiàn)ast Quant cDNA第一鏈合成預(yù)混試劑(貨號(hào)KR108)均購自天根生化科技有限公司。
1.2.1 設(shè)計(jì)BACE2基因敲除靶點(diǎn)
本實(shí)驗(yàn)從斑馬魚基因組網(wǎng)站(http://www.ensembl.org/Danio_rerio/Info/Index)得到斑馬魚BACE2基因的序列和結(jié)構(gòu)信息。根據(jù)CRISPR/Cas9介導(dǎo)的斑馬魚基因組定點(diǎn)突變靶點(diǎn)設(shè)計(jì)原則,對(duì)BACE2基因進(jìn)行靶向設(shè)計(jì)。Cas9基因打靶系統(tǒng)由Cas9核酸酶和guide RNA(gRNA)構(gòu)成,其中g(shù)RNA中含有主位點(diǎn)序列,負(fù)責(zé)識(shí)別靶基因;Cas9核酸酶負(fù)責(zé)切割靶點(diǎn),造成DNA雙鏈斷裂(double strand break,DSB)。Cas9靶點(diǎn)要求包含20個(gè)堿基的主位點(diǎn)和緊鄰主位點(diǎn)3’端的PAM區(qū)。PAM區(qū)的序列要求為NGG,N為任意堿基。
本研究采用大片段刪除的突變(deletion)的方法,因此需要同時(shí)設(shè)計(jì)兩個(gè)位點(diǎn)。刪除長度應(yīng)控制在0.5~3 Kb之間,兩個(gè)靶點(diǎn)的效率應(yīng)分別在30%和50%以上。根據(jù)這一原則,最終選擇BACE2的兩個(gè)靶點(diǎn)序列分別為:上游靶位點(diǎn)序列5'-GGTTGAGTAGCATGTGATGCAGG-3';下游靶位點(diǎn)序列為5'-GGTGTGCTATGTTGGAGATGGG-3'。
1.2.2 gRNA的制備
1)制備gRNA體外轉(zhuǎn)錄模板
根據(jù)BACE2靶點(diǎn)設(shè)計(jì)、合成含有SP6啟動(dòng)子序列的引物序列。上游的引物序列為:5'-ATTTAGGTGACACTATA GGTTGAGTAGCATGTGATGC GTTTTAGAGCTAGAAATAGC-3'。下游的引物序列為5'-ATTTAGGTGACACTATA GGTGTGCTATGTTGGAGAT GTTTTAGAGCTAGAAATAGC-3'(5'下劃線加粗部分為SP6啟動(dòng)子序列,中間畫框?yàn)镃as9主位點(diǎn)序列,3'下劃線部分為gRNA scaffold固定序列)。
合成Tracr rev引物,序列為5'-AAAAAAAGCACCGACTCGGTGCCAC-3'。使用 SP6引物和 Tracr rev引物對(duì),以pMD19-gRNA scaffold質(zhì)粒(質(zhì)粒圖譜詳見圖1)為模板,采用PCR擴(kuò)增得到體外轉(zhuǎn)錄gRNA模板。PCR產(chǎn)物采用DNA產(chǎn)物超薄純化試劑盒(天根生化科技有限公司,貨號(hào)DP203)回收。
2)體外轉(zhuǎn)錄和回收gRNA
按照gRNA體外轉(zhuǎn)錄體系配置方法,體外轉(zhuǎn)錄gRNA。體外轉(zhuǎn)錄體系(20 μL)如下:SP6 Enzyme 2 μL,5×TransBuffer 2 μL,100 mmol/L DTT 2 μL,RNasin 0.5 μL,NTP(10 mmol/L)2 μL,DNA 模板1 μg,補(bǔ)足DEPC H2O至20 μL。37℃ 體外轉(zhuǎn)錄1 h,加入1 μL TURBO DNase,再次放入37 ℃,15 min;取3 μL 電泳查看轉(zhuǎn)錄效果,采用mirVanaTMmiRNA isolation kit回收gRNA。

圖1 pMD19-gRNA scaffold質(zhì)粒載體示意圖Fig.1 pMD19-gRNA scaffold plasmid vectors
1.2.3 制備F0斑馬魚和靶點(diǎn)突變效率篩選
將Cas9 mRNA和gRNA混合注射到一細(xì)胞期的斑馬魚魚卵中,注射量為:Cas9 mRNA 300 pg,gRNA 150 pg;取注射后受精后2~4 d(2~4 days post fertilization,2~4 dpf)的斑馬魚胚胎,提取基因組DNA,進(jìn)行PCR。PCR上游引物為5'-TGTTCCGCGGATGCATTAAG-3';下游引物為5'-TACCACACGACACCCAATGC-3'。反應(yīng)條件為:95℃ 5 min;95℃ 30 s,59℃ 30 s,72 ℃ 60 s,33 cycles;72 ℃ 5 min,自然冷卻至室溫。將Deletion的條帶回收、連接、轉(zhuǎn)化,構(gòu)建到pGEM-T-easy載體后測序。
將突變成功的F0胚胎飼養(yǎng)直至性成熟(90 dpf),與野生型(wild type,WT)成魚交配,收集1 dpf胚胎,4個(gè)為一組,針對(duì)每一條F0分組提取基因組DNA,進(jìn)行PCR。
1.2.4 篩選BACE2基因刪除的F1成魚
將含有BACE2基因大片段刪除的F0斑馬魚與WT交配,產(chǎn)生大量F1,至少需要60條成魚,篩選F1(雜合子)。將F1飼養(yǎng)至兩個(gè)月左右剪尾鰭,提基因組,進(jìn)行PCR,PCR反應(yīng)條件同1.2.3。將Deletion的條帶回收、連接、轉(zhuǎn)化,構(gòu)建到pGEM-T-easy載體后測序確定基因型。帶有同一突變的雜合子的魚可以混合飼養(yǎng)。以篩選出的F1作為親本,建立突變?nèi)后w。
1.2.5 RT-PCR檢測不同時(shí)間BACE2表達(dá)
為了研究BACE2基因在斑馬魚胰腺發(fā)育過程中的表達(dá)情況,本研究采用RT-PCR的方法對(duì)不同時(shí)間點(diǎn)的斑馬魚胚胎進(jìn)行分析。采用動(dòng)物組織總RNA提取試劑盒提取成魚的RNA,采用FastQuant cDNA第一鏈合成預(yù)混試劑合成cDNA。β-actin基因作為內(nèi)參。采用DragonPCR儀器檢測BACE2基因在不同時(shí)間的斑馬魚胚胎中的表達(dá)情況。β-actin基因上游引物:5'-TGTTTTCCCCTCCATTGTTGG-3';下游引物:5'-TTCTCCTTGATGTCACGGAC-3'。BACE2基因上游引物:5'-TATTTGCGGGGAAATTCAAC-3';下游引物:5'-TGATGTAGGGATGTGCTGCT-3'。PCR反應(yīng)體系為20 μL,2×Enzyme mix 10 μL;正向引物 0.4 μL;反向引物0.4 μL;cDNA 1.5 μL,DEPC H2O 7.7 μL。擴(kuò)增條件為94 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,60 ℃ 30 s,72 ℃ 20 s,35 cycles;72℃ 5 min,自然冷卻至室溫。
將Cas9 mRNA和gRNA混合注射到一細(xì)胞期的斑馬魚魚卵中,取注射后2~4 dpf的斑馬魚胚胎,提取基因組DNA,進(jìn)行PCR。PCR結(jié)果見圖2。結(jié)果顯示,WT為一條帶,大小為1 025 bp,含有BACE2基因刪除的斑馬魚除了WT條帶,還有一條477 bp的條帶。將477 bp條帶切膠回收構(gòu)建到pGEM-T-easy載體,測序結(jié)果顯示該條帶為BACE2基因刪除548 bp后的序列(圖3,測序圖為反向互補(bǔ)序列)。

圖2 PCR擴(kuò)增BACE2刪除序列附近PCR產(chǎn)物Fig.2 PCR amplification of BACE2,delete PCR product near the sequence

圖3 BACE2基因刪除548bp測序圖及序列示意圖Fig.3 Sequencing graph of BACE2 gene after deleting 548 bp using reversed complementary sequence
本研究將篩選后得到的BACE2基因大片段刪除F1經(jīng)內(nèi)交后得到F2代斑馬魚。F2代斑馬魚繼續(xù)飼養(yǎng)至12~16 d時(shí),有部分幼魚死亡。收集死亡幼魚尸體,提取基因組,經(jīng) PCR檢測鑒定死魚大部分為BACE2純合突變體。為深入研究這一現(xiàn)象,本研究收集100條幼魚進(jìn)行常規(guī)飼養(yǎng),飼養(yǎng)至12~16 d時(shí)共收集到24條死亡幼魚的尸體,經(jīng)PCR擴(kuò)增后鑒定結(jié)果顯示,24條死魚中有14條為BACE2純合突變體。這一數(shù)據(jù)表明,缺失BACE2基因的幼魚在發(fā)育早期部分無法存活。
本研究繼續(xù)飼養(yǎng)F2斑馬魚至其成熟后剪尾鰭,做PCR檢測鑒定其基因型發(fā)現(xiàn)只有極少的純合突變體可以長至成魚。BACE2純合突變斑馬魚的體質(zhì)量、體長與野生對(duì)照組無明顯差異。
為研究BACE2基因在斑馬魚胰腺發(fā)育過程中的表達(dá)情況,本實(shí)驗(yàn)采用RT-PCR對(duì)不同時(shí)間點(diǎn)的斑馬魚胚胎的BACE2基因表達(dá)進(jìn)行檢測。選用β-actin作為內(nèi)參。結(jié)果顯示BACE2基因在斑馬魚發(fā)育早期(從受精后18 h到3 d)持續(xù)表達(dá),這說明BACE2基因在斑馬魚胚胎胰腺發(fā)育中起重要作用。詳見圖4。

圖4 RT-PCR擴(kuò)增BACE2在斑馬魚發(fā)育早期的表達(dá)Fig.4 Expression of RT-PCR amplification of BACE2 in the early development of zebrafish
本研究利用CRISPR/Cas9基因打靶技術(shù),成功構(gòu)建了BACE2基因大片段刪除的斑馬魚動(dòng)物模型。篩選F1代成魚后結(jié)果顯示,BACE2純合突變體在發(fā)育早期部分死亡,僅有部分能存活至成魚。通過RTPCR檢測發(fā)現(xiàn),BACE2基因在斑馬魚發(fā)育早期從5 hpf到6 d持續(xù)表達(dá),這說明說明BACE2在斑馬魚胚胎的胰腺發(fā)育中起重要作用。
本研究采用新型的基因敲除技術(shù),即CRISPR/Cas9基因打靶技術(shù)。這一技術(shù)具有以下幾點(diǎn)優(yōu)勢(shì)。首先,CRISPR/Cas9基因打靶技術(shù)無物種限制,可以用于小鼠[12-13]、大鼠、酵母[14]、線蟲、斑馬魚[15]等多種生物。其次,與其他基因敲除技術(shù),如傳統(tǒng)的ES細(xì)胞打靶技術(shù)、鋅指核酸酶技術(shù)和TALEN相比,CRISPR/Cas9敲除技術(shù)具有時(shí)間周期短的優(yōu)點(diǎn)。傳統(tǒng)的ES細(xì)胞打靶技術(shù)周期約為12個(gè)月,采用TALEN技術(shù)構(gòu)建基因敲除動(dòng)物模型周期約為9個(gè)月,而CRISPR/Cas9敲除技術(shù)僅需要6個(gè)月即可得到F1代基因敲除斑馬魚。第三,與鋅指核酸酶技術(shù)和TALEN技術(shù)相比,CRISPR/Cas9技術(shù)具有敲除效率更高,脫靶率更低的優(yōu)點(diǎn)。第四,CRISPR/Cas9基因打靶技術(shù)操作簡單,需要的儀器較少。根據(jù)靶點(diǎn)選擇原則設(shè)計(jì)合適的CRISPR/Cas9靶點(diǎn),構(gòu)建gRNA后與Cas9共同注射斑馬魚卵,檢測敲除效率即可。本研究利用最新的CRISPR/Cas9基因打靶技術(shù),3個(gè)月內(nèi)即成功構(gòu)建了BACE2基因大片段刪除的斑馬魚動(dòng)物模型。
本研究的后續(xù)工作將圍繞胰島發(fā)育機(jī)制和藥物篩選兩方面進(jìn)行。首先,本課題組將檢測BACE2雜合或純合突變體和WT斑馬魚的血糖和胰島素分泌情況。為進(jìn)一步研究BACE2基因在斑馬魚胰腺發(fā)育中的作用機(jī)制,本課題組將利用原位雜交技術(shù)和實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)探究胰腺主要表達(dá)基因,如標(biāo)記內(nèi)分泌腺的胰島素、胰高血糖素、生長抑素以及標(biāo)記外分泌腺的胰蛋白酶等,在BACE2雜合或純合突變體中的表達(dá)情況。此外,運(yùn)用斑馬魚作為整體動(dòng)物模型進(jìn)行高通量的篩選并跟蹤考察藥物在斑馬魚模型體內(nèi)的吸收、代謝及分布等情況,將為糖尿病研究提供更多的具有臨床應(yīng)用價(jià)值的有效信息。本課題組將運(yùn)用本研究構(gòu)建的BACE2敲除斑馬魚動(dòng)物模型進(jìn)行糖尿病的藥物篩選,尋找糖尿病的藥物治療新靶點(diǎn)。
[1] Vassar R,Bennett B D,Babu-Khan S,et al.Beta-secretase cleavage of Alzheimer’s amyloid precursor protein by the transmembraneaspartic protease BACE[J].Science,1999,286(5440):735-741.
[2] Carlsson C M.Type 2 diabetes mellitus,dyslipidemia,and Alzheimer’s disease”[J].J Alzheimers Dis,2010,20(3):711-722.
[3] Casas S,Casini P,Piquer S,et al.BACE2 plays a role in the insulin receptor trafficking in pancreatic β-cells[J].Am J Physiol Endocrinol Metab,2010,299(6):E1087-E1095.
[4] Esterházy D,Stutzer I,Wang H Y,et al.Bace2 is a β cell-enriched protease that regulates pancreatic β cell function and mass[J].Cell Metab,2011,14(3):365-377.
[5] Southan C.BACE2 as a new diabetes target:a patent review 2010-2012[J].Exerp Opin Ther Pat,2013,25(3):649-663.
[6] Huang P,Xiao A,Zhou M,et al.Heritable gene targeting in zebrafish using customized TALENs[J].Nature Biotechnol,2011,29(8):699-700.
[7] Cong L,Ran F A,Cox D,et al.Multiplex genome engineering using CRISPR/Cas systems[J].Science,2013,339(6121):819-823.
[8] Mali P,Yang L,Esvelt K M,et al.RNA-guided human genome engineering via Cas9[J].Science,2013,339(612):823-826.
[9] Wang H,Yang H,Shivalila C S,et al.One-step generation of mice carrying mutations in multiple genes by CRISPR/Cas-mediated genomeengineering [J].Cell,2013,153(4):910-918.
[10] Spagnoli F M.From endoderm to pancreas:a multistep journey[J].Cell Mol Life Sci,2007,64(16):2378-2390.
[11]Zorn A M,Wells J M.Molecular basis of vertebrate endoderm development[J].Int Rev Cytol,2007,259:49-111.
[12] Osiak A,Radecke F,Guhl E,et al.Selection-independent generation of gene knockout mouse embryonic stem cells using zinc-finger nucleases[J].PloS One,2011,6(12):e28911.
[13]Doyon Y,McCammon J M,Miller J C,et al.Heritable targeted gene disruption in zebrafish using designed zinc-finger nucleases[J].Nat Biotechnol,2008,26(6):702-708.
[14] Li T,Huang S,Zhao X,et al.Modularly assembled designer TAL effector nucleases for targeted gene knockout and gene replacement in eukaryotes[J].Nucleic Acids Res,2011,39(14):6315-6325.
[15]Xiao A,Wang Z X,Hu Y Y,et al.Chromosomal deletions and inversions mediated by TALENs and CRISPR/Cas in zebrafish[J].Nucleic Acids Res,2013,41(14):e141.