宋 晶 郭家娟 李相軍崔英子 魏 巖 (長春中醫藥大學附屬醫院,吉林 長春 3002)
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不同濃度的糜酶對自發性高血壓大鼠心肌肥厚細胞的構建
宋晶郭家娟李相軍1崔英子魏巖(長春中醫藥大學附屬醫院,吉林長春130021)
〔摘要〕目的探討糜酶對自發性高血壓大鼠(SHR)心室肥厚模型的最佳誘導時間及濃度。方法將肥厚心肌細胞分為對照組(加無血清DMEM培養液)和實驗組。實驗組分別給予糜酶(chymase)7. 5、15、30和60 μg/L 4個濃度組,分別培養24、48 h,誘導小鼠心肌細胞肥大,測定培養液中AngⅡ濃度、β-actin和ANP基因表達以評價模型是否成功。結果實驗組中糜酶濃度為30 μg/L,培養48 h后培養液中AngⅡ濃度明顯高于對照組(P<0. 05);并且糜酶濃度為30 μg/L,培養48 h后培養液中細胞β-actin和ANP基因表達高于對照組(P<0. 05)。結論糜酶濃度在30 μg/L、培養48 h為誘導SHR心肌肥厚的最佳濃度及時間。
〔關鍵詞〕糜酶;自發性高血壓大鼠;心肌肥厚
1吉林大學藥學院
第一作者:宋晶(1987-),女,在讀碩士,主要從事心血管疾病研究。
左心室肥厚是原發性高血壓(EH)導致靶器官損傷中最嚴重的類型,會引發惡性心律失常、心肌梗死、心衰等連鎖反應。研究表明,抑制左心室肥厚會抑制這種連鎖反應的發生,從而減少心血管事件的發病率和死亡率〔1〕。腎素-血管緊張素系統(RAS)在調節容量超負荷或壓力超負荷導致的心肌肥厚中起重要作用〔2〕;心肌細胞肌蛋白合成,導致心肌細胞肥大,從而發生心肌肥厚。血管緊張素(Ang)Ⅱ是目前最強的促心肌細胞肌蛋白合成因子〔3〕。而在心臟組織中,糜酶(Chymase)是AngⅡ形成的主要酶類之一,β-actin和ANP基因表達為心肌肥厚的重要標志。檢測AngⅡ及相關信號分子基因、蛋白的表達,多層次、多角度系統研究糜酶AngⅡ途徑干預心室肥厚機制,可以進一步豐富以心室肥厚為重要病理環節的心血管治療研究思路。
1. 1材料純化肥大細胞糜酶(Merck公司); AngⅡ放射免疫
分析試劑盒(上海偉寰生物科技有限公司);心肌細胞株H9c2(上海艾研生物科技有限公司);血清DMEM培養液(上海杰美基因醫藥科技有限公司)
1. 2方法將大鼠心肌細胞分為對照組(加無血清DMEM培養液)和不同劑量糜酶刺激組,后者將糜酶加入到無血清DMEM培養液中致糜酶終濃度為7. 5、15、30和60 μg/L,分別培養24 h和48 h后檢測各組培養上清AngⅡ含量及細胞β-actin和ANP基因表達。
1. 2. 1 AngⅡ濃度測定用AngⅡ放射免疫分析試劑盒測定。將細胞(105個/孔)接種于24孔板,培養48 h,每孔吸取800 μl培養液,加入裝有20 μl預冷的糜酶培養液(濃度分別為7. 5、15、30和60 μg/L)的管中,離心5 min(4℃,300 r/min),取上清液,采用AngⅡ放射免疫分析試劑盒測定。
1. 2. 2采用逆轉錄Real-time PCR法檢測各組細胞β-actin、ANP基因
1. 2. 2. 1 PCR反應引物ANP基因:正向序列5'-gga gcc tgc gaa ggt caa-3',反向序列5'-tat ctt cgg tac cgg aag ctg t-3';β-actin:正向序列5'-ccc gcg agt aca acc ttc t-3',反向序列5'-cgt cat cca tgg cga act-3'。
1. 2. 2. 2提取心肌細胞總RNA使用0. 25%胰蛋白酶-EDTA對心肌細胞進行消化后,Hank液重懸細胞并轉至10 ml離心管中;懸浮培養細胞則直接轉到離心管中; 2 000 r/min離心10 min;加入Hank液,再離心、洗滌各兩次,去除上清液,冰浴(之后各項操作均在冰浴中進行)。收獲細胞(5×106/L),并將其移入到1. 5 ml Ep管內。加入1 ml TRIzol試劑,混合均勻,放置于室溫中5 min;加入0. 2 ml氯仿,振搖時間為15 s,室溫下放置3 min; 4℃、10 000 r/min離心5 min,吸取上層水相轉移至新Ep管中,加入0. 5 ml的異丙醇,放置于室溫中10 min; 4℃條件下進行低溫離心,10 000 r/min離心10 min,加入75%的1 ml乙醇,進行搖振,再對其充分洗滌和沉淀,4℃、5 000 r/min離心5 min,棄上清液,真空干燥處理,沉淀重懸于100 μl的無RNase水中。保存于-70℃條件下備用;并用紫外分光光度計檢測RNA濃度和純度。
1. 2. 2. 3 PCR擴增依照PCR反應試劑盒說明書步驟操作,將上游引物和下游引物各1 μl,Superscript/Tag混合物1 μl,待測RNA 1 μg,純水50 μl混合均勻,再加入30 μl石蠟。反應條件: 55℃15 min,94℃12 min,1個循環; 94℃15 s,55℃30 s,72℃1 min,35個循環; 72℃10 min,1個循環。
1. 2. 2. 4 PCR產物電泳制取1. 5%瓊脂糖凝膠(含溴乙錠0. 3 mg/ml),取PCR產物10 μl進行電泳,電泳后將凝膠取出,將其放置于紫外分析儀內進行觀察并對其進行定量分析,用待測基因/GAPDH比值代表待測ANP基因和β-actin mRNA的相對水平。
1. 3統計學方法采用SPSS18. 0軟件行單因素方差分析、t檢驗。
糜酶濃度為30 μg/L,培養時間24 h、48 h時,AngⅡ濃度與對照組比較均有顯著差異(P<0. 05),同濃度糜酶培養48 h與培養24 h AngⅡ濃度比較有統計學意義(P<0. 05);糜酶濃度為30 μg/L,培養時間24 h、48 h時,細胞中β-actin、ANP的含量與對照組比較均有顯著差異(P<0. 05);相同濃度糜酶培養48 h與培養24 h,細胞中ANP含量比較有統計學意義(P<0. 05)。見表1。

表1 測得培養液中AngⅡ、β-actin、ANP的濃度(x±s)
RAS系統在調節前后負荷導致的心肌肥厚中起重要作用〔2〕,其中AngⅡ占主導地位。近年來研究證實,人類心肌局部AngⅡ主要來源于血管緊張素轉換酶(ACE)和糜酶兩條途徑,在人體心臟80%的AngⅡ通過糜酶產生。多項研究證實,糜酶在心室肥厚、心肌纖維化及心衰的發生、發展中起重要作用〔4〕。大量研究表明,β-actin作為Wnt/β-actin信號通路的關鍵成員在介導信號轉導過程中調控細胞的增殖和凋亡〔5〕。ANP基因表達為心肌肥厚的重要標志,在正常心肌組織中表達量很低,如果檢測到其表達量明顯增加,為病理性心肌肥大的可靠指標。本研究同時以β-actin和ANP基因兩種指標作為研究對象,使研究結果更加嚴謹可靠。而實驗結果說明不同濃度的糜酶刺激心肌細胞,使細胞內AngⅡ濃度增高,細胞中肥大基因(β-actin、ANP)表達,導致心肌細胞肥大。而細胞內AngⅡ濃度、β-actin與ANP的基因表達與糜酶濃度以及培養時間密切相關。通過測定實驗指標,糜酶濃度在30 μg/L、培養48 h時,為最佳誘導濃度及時間。
左心室肥厚為高血壓患者中最常見的并發癥之一,嚴重影響人類的生活質量,將血壓維持在正常水平,可有效減少并發癥;去除引起并發癥的誘因,可減少并發癥的發生,同時亦可通過此法,將血壓維持在正常水平。本實驗為臨床上治療高血壓、減少高血壓引起的心肌肥厚提供了良好的理論依據。
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〔2015-02-19修回〕
(編輯徐杰)
通訊作者:郭家娟(1978-),女,博士,副主任醫師,碩士生導師,主要從事心血管疾病研究。
基金項目:教育部科學技術研究重點項目(211041)
〔文章編號〕1005-9202(2015)20-5751-02;
doi:10. 3969/j. issn. 1005-9202. 2015. 20. 030
〔文獻標識碼〕A
〔中圖分類號〕R544