張曈 劉曉燕 許家興 李登超 羊燕燕
(江蘇省生物質(zhì)能與酶技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 江蘇省區(qū)域現(xiàn)代農(nóng)業(yè)與環(huán)境保護(hù)協(xié)同創(chuàng)新中心 淮陰師范學(xué)院 江蘇淮安 223300)
黑曲霉產(chǎn)纖維素酶發(fā)酵條件的優(yōu)化及酶學(xué)性質(zhì)研究
張曈 劉曉燕 許家興 李登超 羊燕燕
(江蘇省生物質(zhì)能與酶技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 江蘇省區(qū)域現(xiàn)代農(nóng)業(yè)與環(huán)境保護(hù)協(xié)同創(chuàng)新中心 淮陰師范學(xué)院 江蘇淮安 223300)
本文用單因素實(shí)驗(yàn)和響應(yīng)面法對(duì)黑曲霉B3菌株產(chǎn)纖維素酶培養(yǎng)條件進(jìn)行了優(yōu)化,確定了黑曲霉B3產(chǎn)纖維素酶的最優(yōu)條件:小麥秸稈2.5%,酵母膏2.0%,MgSO40.1%,KH2PO40.1%,pH 6.3,31.58℃,發(fā)酵時(shí)間73.08h,接種量為8.004%,150 r/m in振蕩培養(yǎng),此條件下黑曲霉B3發(fā)酵液的FPA酶活力為153.4 U/m L。將粗酶液初步純化后,對(duì)純化纖維素酶的酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行了初步研究,確定了其最適溫度為60℃,最適pH值為6.0,Ca2+、Li+、K+等金屬離子對(duì)其有激活作用,苯甲基磺酰氟(PMSF)對(duì)該酶強(qiáng)烈抑制,該酶對(duì)底物CMC的Km值和Vmax分別是24.0mg/m L和0.09mg/min。
黑曲霉;纖維素酶;液體發(fā)酵;優(yōu)化;響應(yīng)面法
纖維素酶是降解纖維素生成葡萄糖的一種復(fù)合酶,主要包括內(nèi)切葡聚糖酶、外切β-1,4-葡聚糖酶和纖維二糖水解酶。利用纖維素酶可開發(fā)豐富的纖維素資源,纖維素酶在生物質(zhì)能源、秸稈綜合利用、可再生資源、食品、飼料、釀造等領(lǐng)域都有廣泛的應(yīng)用前景[1~3]。然而,就目前而言,纖維素資源的利用率低,同時(shí)還會(huì)對(duì)環(huán)境會(huì)造成一定污染。因此,如何成功的開發(fā)這一資源,對(duì)解決人類面臨的能源問題、環(huán)境問題、可持續(xù)發(fā)展都具有非常重要的意義[4]。
通過纖維素酶降解纖維素的研究和應(yīng)用進(jìn)展快速,商業(yè)化程度較高[5]。纖維素酶的工業(yè)化生產(chǎn)可分為固體發(fā)酵法和液體深層發(fā)酵法,液體深層發(fā)酵法的培養(yǎng)條件不易污染雜菌,容易控制,生產(chǎn)效率也較高,被國(guó)內(nèi)外重要的研究和生產(chǎn)工藝廣泛應(yīng)用[6-7]。黑曲霉作為一種自然界中常見的絲狀真菌,是公認(rèn)安全的真核微生物。用其生產(chǎn)酶制劑安全、高效、無毒素產(chǎn)生,而且黑曲霉生長(zhǎng)期短,產(chǎn)酶速度快,生產(chǎn)的纖維素酶主要分泌到細(xì)胞外,便與純化[8]。發(fā)酵條件的優(yōu)化是當(dāng)前增加纖維素酶活力、提高產(chǎn)酶量的主要途徑之一[9]。對(duì)發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化一般采用單因素優(yōu)化和正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)化,但它們都有一定的局限性,無法直接找到區(qū)域中各個(gè)因素的最佳組合和響應(yīng)值的最優(yōu)值[10]。借助design expert統(tǒng)計(jì)軟件能迅速、可靠、簡(jiǎn)易地進(jìn)行優(yōu)化試驗(yàn)的安排和數(shù)據(jù)分析,從而找出微生物培養(yǎng)條件的最佳組成[11]。本文利用design expert8.06軟件對(duì)黑曲霉產(chǎn)纖維素酶的液體發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化,并將最優(yōu)條件下生產(chǎn)得到的纖維素酶進(jìn)行初步純化,研究其酶學(xué)性質(zhì),為黑曲霉大規(guī)模發(fā)酵生產(chǎn)纖維素酶和纖維素酶在生產(chǎn)中的應(yīng)用打下理論基礎(chǔ)。
1.1 材料
1.1.1 菌種
黑曲霉B3菌株,實(shí)驗(yàn)室保藏
1.1.2 培養(yǎng)基
固體培養(yǎng)基(平板、斜面):馬鈴薯20g,葡萄糖2g,瓊脂2g,PH自然種子培養(yǎng)基:PDA液體培養(yǎng)基發(fā)酵培養(yǎng)基[13]:液體發(fā)酵培養(yǎng)基(質(zhì)量分?jǐn)?shù)):碳源5%、氮源1%、KH2PO40.05%、Mg SO47H2O 0.05%。
將上述所有培養(yǎng)基均在1.0×10Pa、121℃滅菌30min。
1.2 方法
1.2.1 培養(yǎng)
種子活化:在平板上劃線,挑取單菌落接種到斜面培養(yǎng)基中,置于30℃培養(yǎng)4~5 d。種子液培養(yǎng):250mL三角瓶裝入種子培養(yǎng)基50mL,接入菌種三環(huán),轉(zhuǎn)速150r/min,30℃下振蕩培養(yǎng)72h~168h。
發(fā)酵培養(yǎng):5%~10%接種量,28℃~32℃,150r/min振蕩培養(yǎng)60h~96h,制備粗酶液。
1.2.2 粗酶液制備
發(fā)酵液先初步過濾,再經(jīng)5000r/min離心10min,上清液即為粗酶液。酶活測(cè)定時(shí)需用磷酸緩沖液做適當(dāng)稀釋。
1.2.3 酶活測(cè)定
1.2.3.1 羧甲基纖維素酶活(CMC)測(cè)定
實(shí)驗(yàn)組加入適當(dāng)稀釋的粗酶液0.5mL和0.5%CMC溶液1.5mL,空白對(duì)照管中加入2.0mL 0.5%CMC溶液。60℃水浴保溫30min。向試管中加入3.0mLDNS試劑,沸水浴10min,540 nm測(cè)吸光值。酶活力單位規(guī)定:每mL酶液1min水解底物產(chǎn)生1m g葡萄糖的酶活力為1個(gè)活力單位(U/mL)。
1.2.3.2 濾紙酶活(FPA)測(cè)定
實(shí)驗(yàn)組取適當(dāng)稀釋的粗酶液0.5m l,加入PH 4.0的檸檬酸緩沖液1m l,空白對(duì)照組加入PH 4.0的檸檬酸緩沖液1.5ml,將實(shí)驗(yàn)組和空白對(duì)照組中在60℃水浴中預(yù)熱2~3min,再在每個(gè)管子內(nèi)加入50mg的濾紙條30min后加入3mlDNS試劑,立即轉(zhuǎn)入沸水浴5min后,浸入冷水快速冷卻,在540 nm測(cè)定吸光值。每mL酶液1min水解底物產(chǎn)生1m g葡萄糖的酶活力為1個(gè)活力單位(U/mL)。
1.2.4 黑曲霉B3產(chǎn)纖維素酶條件優(yōu)化
前期通過單因素實(shí)驗(yàn)來確定發(fā)酵培養(yǎng)基的最佳的碳源、氮源、培養(yǎng)溫度和最佳產(chǎn)酶時(shí)間,以便得到最有利于產(chǎn)酶的培養(yǎng)條件。
后期在初步優(yōu)化的產(chǎn)酶培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上,通過design expert8. 06軟件來進(jìn)行設(shè)計(jì),利用Plackett-Burman設(shè)計(jì)從經(jīng)初步優(yōu)化的培養(yǎng)基成分、培養(yǎng)條件中篩選出對(duì)酶活具有顯著影響的3個(gè)因素,之后針對(duì)這3個(gè)顯著影響因素以及它們的正負(fù)效應(yīng)進(jìn)行設(shè)計(jì),利用最陡爬坡實(shí)驗(yàn)逼近響應(yīng)值(最大酶活力區(qū)域),最后用響應(yīng)面法設(shè)計(jì)進(jìn)行試驗(yàn)。通過實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)擬合響應(yīng)面模型,最終確定最優(yōu)產(chǎn)酶條件,并進(jìn)行驗(yàn)證。
1.2.5 纖維素酶的分離純化
發(fā)酵液使用硫酸銨分級(jí)沉淀,將40%-50%濃度沉淀部分(含有纖維素酶活部分)使用14kD的透析袋進(jìn)行透析;透析液在濃縮儀上濃縮后采用SephadexG75進(jìn)行凝膠過濾,活性部分使用陽離子交換柱進(jìn)一步純化。脫鹽后能夠得到純度較高的纖維素酶組分。
1.2.6纖維素酶酶學(xué)性質(zhì)研究
對(duì)纖維素酶進(jìn)行酶學(xué)的理化性質(zhì)研究,測(cè)算纖維素酶的酶活力、最適酶活溫度、pH值、酶失活的溫度范圍,以及酶的米氏常數(shù)和最大反應(yīng)速度等具體生化指標(biāo)。
2.1 黑曲霉B3產(chǎn)纖維素酶條件的優(yōu)化
通過單因素實(shí)驗(yàn)和響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)(圖1)分析結(jié)果表明,優(yōu)化后的產(chǎn)纖維素酶液體發(fā)酵條件為:小麥秸稈2.5%,酵母膏2.0%,MgSO40.1%,KH2PO40.1%,pH 6.3,31.58℃,發(fā)酵時(shí)間73.08h,接種量為8.004%,150r/min振蕩培養(yǎng)。在此條件下,做3組驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),得到濾紙酶活力的平均值為153.4U/m l,比初始酶活力73.5U/m l提高了108%。
2.2 纖維素酶的初步純化
在利用Sephadex G75凝膠柱純化纖維素酶的過程中,每一步都測(cè)定洗脫液的纖維素酶活力和總蛋白含量,確定純化過程中纖維素酶回收率和純化程度,結(jié)果見表1。純化后的纖維素酶與粗酶液對(duì)比,純化倍數(shù)2.4倍,回收率43.2%。

表1 纖維素酶的純化步驟
2.3 純化的纖維素酶酶學(xué)性質(zhì)的研究
2.3.1 純化纖維素酶的最適反應(yīng)溫度
將純化的纖維素酶樣品分別在30.0、35.0、40.0、45.0、50.0、55.0、60.0、65.0、70.0、75.0、80.0℃下測(cè)定其酶活,結(jié)果如圖2所示,從圖中可以看出,純化纖維素酶在60℃時(shí)酶活力最高,具有一定的熱穩(wěn)定性。

圖2 純化纖維素酶的最適溫度(■)和溫度穩(wěn)定性(◆)
2.3.2 純化纖維素酶的最適反應(yīng)pH值
將純化的纖維素酶在不同pH(4.0~9.0)下測(cè)定其酶活,結(jié)果如圖3所示,從圖中可以看出此菊粉酶在pH值為6.0時(shí)酶活達(dá)到最高,酶活力在pH5.5~7.0之間保持穩(wěn)定。

圖3 pH值對(duì)純化的纖維素酶活力(◆)與穩(wěn)定性(■)的影響

圖4 不同金屬離子對(duì)纖維素酶活性的影響
2.3.4 蛋白抑制劑對(duì)純化纖維素酶酶活的影響
將純化的纖維素酶加入碘乙酸、EDTA(乙二胺四乙酸)、EGTA(乙二醇雙(2-氨基乙基醚)四乙酸)、SDS(十二烷基磺酸鈉)和PMSF(苯甲基磺酰氟)等蛋白抑制劑后在4℃下放置30min,測(cè)定酶活,結(jié)果如圖5所示。從圖中可以看出,當(dāng)存在EDTA時(shí),由于EDTA將金屬離子螯合,對(duì)纖維素酶活力有一定影響,但不會(huì)被完全抑制。而纖維素酶在PMSF存在時(shí)酶活力大幅下降,抑制效果非常明顯。PMSF能專一性作用于絲氨酸,這表明我們純化纖維素酶的活性中心可能含有絲氨酸殘基。

圖5 不同酶抑制劑對(duì)纖維素酶活性的影響
2.3.5 米氏常數(shù)Km和最大反應(yīng)速度Vmax
通過在不同濃度底物CMC溶液中測(cè)定纖維素酶的反應(yīng)速度來確定纖維素酶的動(dòng)力學(xué)常數(shù)Km和Vmax,利用雙倒數(shù)作圖法以1/[S]為橫坐標(biāo),1/V為縱坐標(biāo)作圖6,利用圖6計(jì)算纖維素酶對(duì)底物CMC的

圖6 雙倒數(shù)法作圖求Km和Vmax
米氏常數(shù)Km為24.0mg/mL,最大反應(yīng)速度Vmax是0.09mg/min。
本文用單因素實(shí)驗(yàn)和響應(yīng)面法對(duì)黑曲霉B3菌株產(chǎn)纖維素酶培養(yǎng)條件進(jìn)行了優(yōu)化,確定了黑曲霉B3產(chǎn)纖維素酶的最優(yōu)條件:小麥秸稈2.5%,酵母膏2.0%,MgSO40.1%,KH2PO40.1%,pH 6.3,31.58℃,發(fā)酵時(shí)間73.08h,接種量為8.004%,150 r/min振蕩培養(yǎng),此條件下黑曲霉B3發(fā)酵液的FPA酶活力為153.4U/mL,比初始酶活力73.5U/ml提高了108%。將粗酶液初步純化后,對(duì)純化纖維素酶的酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行了初步研究,確定了其最適溫度為60℃,最適pH值為6.0;Ca2+、Co2+、Zn2+、Mn2+、Fe2+、Fe3+、Li+、Na+、Cu2+和K+(1.0mM)對(duì)纖維素酶酶活有一定的促進(jìn)作用,而Mg2+、Ag+、Hg2+(1.0mM)則對(duì)纖維素酶有抑制作用;蛋白抑制劑苯甲基磺酰氟(PMSF)對(duì)纖維素酶具有強(qiáng)烈抑制作用;利用雙倒數(shù)做圖法法計(jì)算纖維素酶對(duì)底物CMC的米氏常數(shù)為24.0mg/mL,最大反應(yīng)速度為0.09mg/min。
本文通過對(duì)黑曲霉產(chǎn)纖維素酶條件的優(yōu)化以及對(duì)纖維素酶的酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行研究,為黑曲霉纖維素酶的發(fā)酵生產(chǎn)提供了理論基礎(chǔ),為秸稈的預(yù)處理和秸稈纖維素乙醇的生產(chǎn)提供了一條新的纖維素酶來源,具有一定的應(yīng)用前景。
[1]張樹政,孟廣震,等.酶學(xué)研究技術(shù)[M].北京:科學(xué)出版社,1987: 132-133.
[2]湘尺孝亮.酶應(yīng)用手冊(cè)[M].上海:上海科學(xué)技術(shù)出版社,1989: 215-265,267-270.
[3]田中三男.纖維素酶資源的再利用[J].應(yīng)用微生物,1981,2(1):1-7.
[4]Vega-EstradaJ,etal.Montes-HorcasitasC.Draw-fillbatchculturemodeforproductionofxylanasesbyCellulomonasflavigenaonsugarcanebagasse. ,ApplMicrobiolBiotechnol.2002Mar:58(4):435-438.學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版, 2006,23(4):48-51.
[5]郝月,楊翔華,洪新.纖維素酶的應(yīng)用研究[J].青海科技,2005,(3): 31-35.
[6]SILVERSTEIN J,MINESR,SHERRARD JH.Actevared sludge[J]. Research JournalWPCF,1990,62:398-410.
[7]姚冬梅,趙杉林,商麗燕,等.天然高分子吸收劑吸水中的Cu和2+Ni[J].遼寧石油化工大學(xué)學(xué)報(bào),2006,26(1):42-44.
[8]謝宇,王平宇,汪月華.一株高活力纖維素酶產(chǎn)生菌-黑曲霉NO. 5.1產(chǎn)酶條件研究[J].南昌航空大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2007,21(2): 55-58.
[9]王曉芳,徐旭士,吳敏,等.不同碳源對(duì)兩株真菌纖維素酶合成的誘導(dǎo)與調(diào)控[J].應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報(bào),2002,8(6):653-657.
[10]褚以文.微生物培養(yǎng)基優(yōu)化方法及其OPTI優(yōu)化軟件[J].國(guó)外醫(yī)藥抗生素分冊(cè),1999,20(2):58-61.
[11]歐宏宇,賈士儒.SAS軟件在微生物培養(yǎng)條件優(yōu)化重的應(yīng)用[J].天津輕工業(yè)學(xué)院報(bào),2001,36(1):14-17.
[12]白曉娟,王曉聞.響應(yīng)面法優(yōu)化Bacillus subtilis AS35產(chǎn)β-葡聚糖酶發(fā)酵培養(yǎng)基的研究[J].農(nóng)產(chǎn)品加工,2011(8):76-80.
[13]王戰(zhàn)勇,蘇婷婷.產(chǎn)纖維素酶黑曲霉LN0401液體發(fā)酵條件的分析[J].遼寧石油化工大學(xué)學(xué)報(bào),2006,26(2):27-30.
張曈(1981—),男,山東泰安,博士,講師,主要研究方向?yàn)樯镔|(zhì)能源。
國(guó)家自然科學(xué)青年基金(21406083);江蘇省自然科學(xué)青年基金(BK20130416);淮安市科技支撐計(jì)劃(HAG2011015)。