刺糖多糖免疫活性的初步研究

趙　津，常軍民，鄭　杰，程煜鳳，李改茹(新疆醫科大學藥學院，烏魯木齊　830054)

?

·藥理·

刺糖多糖免疫活性的初步研究

趙津，常軍民，鄭杰，程煜鳳，李改茹*(新疆醫科大學藥學院，烏魯木齊830054)

摘要：目的研究刺糖多糖對免疫抑制小鼠的免疫調節作用。方法采用水提醇沉法得刺糖多糖。建立免疫抑制小鼠動物模型，小鼠灌胃刺糖多糖，利用碳粒廓清實驗測定非特異性免疫功能；血清溶血素實驗反映抗體生成水平；測定血清中細胞因子的生成水平來評價刺糖多糖的免疫活性。結果刺糖多糖可以增強免疫抑制小鼠的碳粒廓清能力和血清溶血素水平，能夠提升由環磷酰胺造成的免疫抑制小鼠血清中IL-2、IL-10的含量。結論刺糖多糖對免疫抑制小鼠免疫功能有促進作用。

關鍵詞：刺糖多糖；水提醇沉；免疫活性

刺糖(Saccharumalhagi)是豆科植物蝶形花亞科駱駝刺屬，由駱駝刺葉子中的分泌液凝結成的糖粒，黃白色，一般呈圓形或橢圓形，氣微，味甜，它的主要成分是糖類物質。一般生長于荒漠、半荒漠區，在我國主要分布在新疆、甘肅、寧夏及內蒙古地區。具有滋補強壯、益精壯陽、祛痰止咳、消腫止痛等功效，維吾爾醫常用之與其他藥材配伍使用，治療痢疾、腹瀉、胃脹等疾病[1]。

多糖(polysaccharides)是天然大分子化合物，糖類在人體內的主要作用是提供能量資源，維持生命活動的正常運轉。研究發現，植物多糖具有免疫調節作用，可作為廣譜免疫促進劑，激活巨噬細胞、淋巴細胞等多種免疫細胞，增強其分泌細胞因子的能力，從而提高細胞的活性，進一步加強免疫作用；還具有抗腫瘤、抗病毒、抗感染、降血脂、促進蛋白質生物合成的作用，同時多糖作為藥物具有天然無毒性的功效，因此廣泛受研究專家的重視[2-4]。本文研究了刺糖多糖對免疫低下型小鼠的影響，希望為刺糖的進一步研究和開發奠定基礎。

1儀器與材料

1.1儀器AB135-S型分析天平(北京賽多利斯天平有限公司)；Multifuge X3R型離心機(賽默飛世爾科技有限公司)；Szz PC型紫外分光光度計(上海棱光技術有限公司)；Model 680型酶標儀(伯樂生命醫學產品有限公司)。

1.2試藥刺糖(購于新疆民族醫院)；注射用環磷酰胺(江蘇恒瑞醫藥股份有限公司，批號14022525)；鹽酸左旋咪唑片(山東仁和堂藥業有限公司，批號130105)；墨汁稀釋液：臨用前，將墨汁用生理鹽水稀釋4倍，即得；雞紅細胞懸液(CRBC)：雞血約10 mL，用肝素抗凝，再加入等體積9 g·L-1的氯化鈉注射液，混勻并多次洗滌，以3 000 r·min-1離心15 min，棄上清液，繼續洗滌2~3次，取離心后的紅細胞4 mL，加入9 g·L-1氯化鈉注射液16 mL，現配現用；豚鼠血清稀釋液：豚鼠3只，取血，離心，冷藏保存，臨用前加生理鹽水稀釋10倍，即得。

1.3動物清潔級昆明種小鼠，體質量18±2 g，雌雄各半，由新疆醫科大學實驗動物中心提供，動物合格證號：SYXK(新)2011-0001，室溫環境下飼養，自由飲食、進水。

2實驗方法

2.1水提醇沉法提取分離刺糖多糖將藥材置于圓底燒瓶中，加入石油醚，60 ℃恒溫水浴回流2 h，脫脂，將濾渣加入乙醇，80 ℃恒溫水浴中回流2 h， 除去小分子醇溶物，揮干溶劑，將濾渣加蒸餾水回流提取，濃縮濾液，800 g·L-1乙醇醇沉，干燥，得粗多糖[1]。

2.2動物分組及給藥方法取實驗小鼠，隨機分成6組，模型組、空白對照組、陽性對照組及刺糖多糖高(800 mg·kg-1)、中(400 mg·kg-1)、低劑量(200 mg·kg-1)治療組，每組8只。空白對照組給予生理鹽水，陽性對照組給予左旋咪唑(50 mg·kg-1)，治療組分別給予不同濃度刺糖多糖提取物，每天灌胃給藥1次，連續12 d。給藥當天起，模型組、陽性對照組和治療組同時腹腔注射CTX(50 mg·kg-1)，而空白對照組用相同方法注射生理鹽水，連續3 d。

2.3對碳粒廓清功能的影響小鼠在第12天給藥后禁食不禁水12 h，分別稱定小鼠質量，并在每只鼠的尾靜脈注射0.2 mL墨汁稀釋液。分別在注射后2和10 min，用提前經肝素處理的定量毛細管從小鼠眼眶取血40 μL，溶于4 mL 1 g·L-1的碳酸鈉溶液，將溶液與所取血液混勻。在680 nm 處用紫外分光光度計測定吸光度Al和A2，以碳酸鈉溶液為空白對照。脫臼處死小鼠，摘取胸腺、脾臟，稱定小鼠質量，根據公式計算臟器指數，并用吞噬指數表示小鼠碳粒廓清能力[5-7]。

臟器指數=臟器質量(mg)/小鼠體質量(g)；碳粒廓清率K=(lgA1-lgA2)/ (T2-T1)；吞噬指數=K1/3×體質量/(肝質量+脾質量)。

2.4對血清溶血素含量的影響在給藥第5天時，各組小鼠每只均腹腔注射雞紅細胞懸液0.2 mL。第12天給藥后禁食不禁水12 h，摘眼球取血，并離心收集血清，加生理鹽水稀釋100倍，取經生理鹽水稀釋的血清l mL，與雞紅細胞懸液、豚鼠血清稀釋液各0.5 mL混合，在37 ℃恒溫箱中孵育30 min后，放入0 ℃冰箱終止反應。然后離心，吸取上清液，在540 nm 處比色，將不加小鼠血清的空白對照管調零，測定吸光度，以吸光度讀數作為判定血清溶血素的指標，比較各組的差異[8-10]。

2.5指標檢測小鼠在末次給藥后禁食不禁水12 h，分別稱定小鼠體質量，脫臼處死小鼠，摘眼球取血，按組別裝入EP管，靜置后，4 ℃ 以3 000 r·min-1離心15 min，取血清，分裝，-20 ℃保存，測定細胞因子[11-12]。采用ELISA法，按照試劑盒說明書進行操作，分別將小鼠血清以及不同濃度的對照品加入96孔微孔板的相應待測孔中，每孔50 μL，加樣時盡量不觸及孔壁，輕輕晃動混勻，用封板膜封板后置于37 ℃中溫育30 min；棄去液體，甩干，每孔加洗滌液300 μL，靜置30 s后棄去，如此重復5次，拍干；每孔加入酶標試劑50 μL，空白孔除外；37 ℃溫育30 min；棄去液體，甩干，每孔加洗滌液300 μL，靜置30 s后棄去，如此重復5次，拍干；每孔先加入顯色劑A 50 μL，再加入顯色劑B 50 μL，37 ℃避光顯示15 min；每孔再加入終止液50 μL；以空白孔調零，450 nm波長測量各孔的A值[13]。以標準物的濃度為橫坐標、A值為縱坐標，分別得出IL-2、IFN-γ、IL-10、IL-6的線性回歸方程為Y=0.001 3X-0.212 4(r=0.998 1)，Y=0.002 2X+0.032 4(r=0.995 5)，Y=0.004X-0.100 3(r=0.997 4)，Y=0.036 9X+0.130 5(r=0.995 0)。

3結果

3.1對小鼠巨噬細胞吞噬功能的影響見表1。由表1可見，經環磷酰胺構建的模型組，其碳粒廓清率和吞噬指數均低于空白對照組(P<0.05，P<0.01)，說明環磷酰胺能顯著降低小鼠的碳粒廓清能力和巨噬細胞的吞噬功能；陽性藥組的碳粒廓清能力和吞噬指數均明顯高于模型組(P<0.05，P<0.01)，說明所選用的陽性藥左旋咪唑能明顯增強小鼠的碳粒廓清能力和吞噬功能，并能使其恢復到正常水平；高劑量組刺糖多糖與模型組比較，碳粒廓清率和吞噬指數均有統計學意義(P<0.01)，說明刺糖多糖能夠增強小鼠碳粒廓清功能和吞噬功能，并與劑量呈正比。

表1刺糖多糖對小鼠碳粒廓清能力和吞噬功能的影響

Tab.1 Effects of polysaccharides fromSaccharumalhagion carbon granular clearance function and phagocytic function in mice

±s，n=8)

注：與空白對照組比較*P<0.05，**P<0.01；與模型組比較△P<0.05，△△P<0.01。

3.2 對小鼠免疫器官的影響 見表2。由表2可見，模型組的胸腺指數和脾指數明顯低于空白對照組(P<0.01)，說明環磷酰胺能夠造成小鼠免疫器官的萎縮；陽性藥組的胸腺指數和脾指數均高于模型組(P<0.01)，基本恢復到正常水平，說明陽性藥左旋咪唑能對抗環磷酰胺引起的小鼠免疫器官萎縮；低劑量組刺糖多糖與模型組比較，無統計學差異，但是中、高劑量組刺糖多糖與模型組比較差異均有統計學意義(P<0.05，P<0.01)，說明刺糖多糖能夠對抗由環磷酰胺引起的小鼠胸腺萎縮和脾萎縮。

表2刺糖多糖對小鼠免疫器官的影響

Tab.2 Effects of polysaccharides fromSaccharumalhagion the immune organ in mice

±s，n=8)

注：與空白對照組比較*P<0.05，**P<0.01；與模型組比較△P<0.05，△△P<0.01。

3.3對小鼠溶血素水平的影響見表3。由表3可見，模型組與空白對照組比較，其溶血素水平顯著降低(P<0.01)，說明環磷酰胺能夠影響小鼠的血清溶血素水平，對小鼠的體液免疫功能有抑制作用；陽性藥組的溶血素水平比模型組高(P<0.05)，說明所選用的陽性藥左旋咪唑能夠明顯提升小鼠的血清溶血素水平，將其恢復到正常水平；低、中劑量組的刺糖多糖與模型組和空白對照組比較，無統計學差異，但是高劑量組和模型組比較(P<0.01)，有統計學差異，能夠增強小鼠血清溶血素水平；隨著劑量的增加，血清溶血素水平也逐漸增高，具有一定的量效關系。

表3刺糖多糖對小鼠溶血素水平的影響

Tab.3 Effects of polysaccharides fromSaccharumalhagion hemolysin level in mice

±s, n=8)

注：與空白對照組比較*P<0.05，**P<0.01；與模型組比較△P<0.05，△△P<0.01。

3.4對小鼠血清中細胞因子含量的影響見表4。由表4可見，環磷酰胺構建的模型組，其IL-2、IFN-γ、IL-10和 IL-6均低于空白對照組，差異有統計學意義(P<0.05，P<0.01)；陽性藥組與模型組比較，A值也明顯升高，差異有統計學意義(P<0.05，P<0.01)，說明所選用陽性藥左旋咪唑能增加免疫抑制小鼠血清中細胞因子的含量；刺糖多糖低、中劑量組與模型組比較，差異較小，無統計學意義；而刺糖多糖高劑量組與模型組比較，IL-2和IL-10明顯升高，差異有統計學意義(P<0.01)，IFN-γ和IL-6則僅有較小的提升。綜上所述，刺糖多糖對環磷酰胺引起的免疫抑制小鼠血清細胞因子的含量有提升作用。

表4刺糖多糖對小鼠細胞因子的影響

Tab.4 Effects of polysaccharides fromSaccharumalhagion hemolysin level in mice

±s, n=8)

注：與空白對照組比較*P<0.05，**P<0.01；與模型組比較△P<0.05，△△P<0.01。

4討論

本實驗采用經典的免疫學研究方法，用環磷酰胺造免疫抑制小鼠動物模型，灌胃給藥，觀察灌服不同劑量多糖的免疫抑制小鼠的碳粒廓清功能和吞噬指數。實驗結果表明，刺糖多糖能對抗免疫器官萎縮，增強免疫抑制小鼠的吞噬指數(P<0.05)。

溶血素是一種抗紅細胞抗體，動物血清與雞血紅細胞一起可以產生溶血現象，通過這個過程中釋放的血紅蛋白量可以確定溶血素的含量，進而反映小鼠合成抗體的能力，可以依此評價小鼠的體液免疫。研究結果表明，刺糖多糖可以增強體液免疫，提升免疫抑制小鼠的血清溶血素水平(P<0.05)。

多糖可以通過激活免疫細胞，誘生多種細胞因子作用于免疫系統，IL-2是輔助性T細胞分泌的一種調節免疫應答的重要介質，通過對IL-2的含量測定，也從分子水平反映了機體免疫功能的狀態[14-15]；IFN-γ主要是由活化的Th1細胞產生的重要的細胞因子之一，可以有效地促進細胞免疫功能，IL-10是免疫和炎癥抑制因子，IL-6主要是由巨噬細胞、T細胞等多種細胞產生，可以調節免疫應答功能[16-17]。本實驗研究結果表明，刺糖多糖能夠增強由環磷酰胺造成的免疫抑制小鼠血清中IL-2和IL-10的含量，而對IFN-γ和IL-6的含量沒有顯著的提升。

機體免疫力低下是由多種因素引起的，多糖作為一種植物性中藥，可以增強細胞免疫和體液免疫，作為免疫調節劑。刺糖在新疆維吾爾醫院中常作為一味增強機體免疫力的維藥。本研究表明，刺糖多糖對非特異性免疫、體液免疫和細胞免疫均有促進作用，具有良好的開發前景。

參考文獻：

[1]吳晶，李改茹，常軍民.刺糖中多糖的提取工藝研究[J].中成藥，2011，33(5):902-904.

[2]秦潔華，李雪華，肖慶，等.龍眼殼多糖含量的測定及其免疫活性研究[J].西北藥學雜志，2010，25(2):110-112.

[3]Wang Yuefei，Wang Jie，Wu Jing，et al.In vitro antioxidant activity and potential inhibitory action against α-glucosidase of polysaccharides from fruit peel of tea(CamelliasinensisL.)[J].J Zhejiang Univ Sci B，2014，15(2):173-180.

[4]Yi Ran，Liu Xiaomin，Dong Qi.A study of lycium barbarum polysaccharides(LBP) extraction technology and its anti-aging effect[J].Tradit Complement Altern Med，2013，10(4):171-174.

[5]張梅，雨田，蘇筱琳，等.川明參多糖的理化性質和免疫活性研究[J].華西藥學雜志，2007，22(4):396-398.

[6]買爾旦·馬合木提，古麗仙·胡加，米克熱帕·阿布都買買提.新疆紫草免疫活性有效部位的初篩[J].新疆醫科大學學報，2013，36(12):1724-1727.

[7]盛玉青，尹鴻萍.螺旋藻多糖硫酸酯抗腫瘤及免疫活性的研究[J].中國醫院藥學雜志，2008，28(9):724-727.

[8]張庭廷，聶劉旺，劉愛民，等.金櫻子多糖的免疫活性研究[J].中國實驗方劑學雜志，2005，11(4):55-58.

[9]仰榴青，茆廣華，吳向陽，等.銀杏外種皮多糖的免疫活性研究[J].時珍國醫國藥，2009，20(4):872-873.

[10]張振凌，吳筱菁，王磊，等.中藥貓爪草有效部位的免疫活性研究[J].中華中醫藥雜志，2007，22(2):120-122.

[11]李珂珂，欒希英，劉現兵.拳參水提物對小鼠免疫功能的影響[J].中藥材，2010，33(8):1302-1306.

[12]Razali F N，Ismail A，Abidin N Z，et al.Stimulatory effects of polysaccharide fraction fromSolanumnigrumon RAW 264.7 murine macrophage cells[J].PLoS One，2014，9(10):e108988.

[13]Sun S，Zheng K S，Zhao H，et al.Regulatory effect of astragalus polysaccharides on intestinal intraepithelial γδ T cells of tumor bearing mice[J].Molecules，2014，19(9):15224-15236.

[14]湯偉.丹參多糖的分離純化及免疫活性研究[D].廣州:南方醫科大學，2011:45-48.

[15]晏繼紅，王仕寶，劉文虎.中藥免疫增強劑研究進展[J].西北藥學雜志，2013， 28(5):549-552.

[16]朱銀玲.楊桃多糖的提取及免疫活性研究[D].廣州:廣東工業大學，2008:29-32.

[17]況煒，陳慧玲，章皓，等.羊棲菜多糖免疫調節活性的實驗研究[J].實用醫學雜志，2012，28(23):3872-3873.

Preliminary study on the immune activity of polysaccharides fromSaccharumalhagi

ZHAO Jin, CHANG Junmin, ZHENG Jie, CHENG Yufeng, LI Gairu*(Xinjiang Medical University, Urumqi 830054, China)

Abstract：ObjectiveTo assess the immunomodulation effects of polysaccharides from Saccharum alhagi in immunosuppression mice. Methods The polysaccharides were extracted with water，and precipitated with ethanol from Saccharum alhagi. Immunosuppression mice model was induced by cyclophosphamide，and intragastrically administered with polysaccharides from Saccharum alhagi. Nonspecific immune function was evaluated by the carbon granular clearance test, antibody level by hemolysin test and cell factor determination，including IL-2，IL-6，and IL-10. Results Polysaccharides from Saccharum alhagi could enhance carbon granular clearance and hemolysin levels in immunosuppression mice，and also increase the content of IL-2 and IL-10. Conclusion The polysaccharides from Saccharum alhagi showed strong immune activities to immunosuppression mice.

Key words：polysaccharides from Saccharum alhagi；water extraction and alcohol precipitation；immune activities

(收稿日期：2015-07-17)

*通信作者：李改茹，女，副教授

作者簡介：趙津， 女， 碩士研究生

基金項目：國家自然科學基金項目(編號：81460633)

中圖分類號：R965

文獻標志碼：A

文章編號：1004-2407(2016)02-0158-04

doi:10.3969/j.issn.1004-2407.2016.02.014