長壽花葉片離體快繁技術研究

劉宇麒　張英　宗憲春

摘要 以長壽花幼嫩葉片為外植體，研究不同滅菌時間對長壽花幼嫩葉片再生能力的影響以及不同激素配比對愈傷組織誘導、不定芽誘導和生根誘導的影響。結果表明：長壽花幼嫩葉片最佳的滅菌方式為75%酒精消毒30 s，無菌水沖洗4次，再用0.1%升汞消毒7 min，無菌水沖洗5次；愈傷組織誘導的最適培養基配方為MS+6-BA 0.5 mg/L+2，4-D 0.2 mg/L；不定芽誘導分化的最適培養基配方為MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L；不定芽誘導生根的最適培養基配方為1/2 MS+IBA 0.2 mg/L。

關鍵詞 長壽花；嫩葉片；組織培養；快速繁殖

中圖分類號 S682.035.3 文獻標識碼 A 文章編號 1007-5739（2016）07-0143-02

Abstract The research using explant from seeding leaf of Kalanchoe blossfeldiana，the regeneration ability of the leaf was tested under different duration of sterilization，and the effects of different hormones combination on the induction of callus、adventitious buds and roots of Kalanchoe blossfeldiana.The results showed that the best way of sterilization was sterilizing the leaf in 75% ethanol for 30 seconds，washing 4 times with disinfection water，then in 0.1% mercury bichloride for 7 minutes and washing with disfection water for 5 times；the optimum medium for the induction of leaves was MS+6-BA 0.5 mg/L+2，4-D 0.2 mg/L；the suitable culture medium for bud differentiation and proliferation was MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L；the optimum rooting medium was 1/2 MS+IBA 0.2 mg/L.

Key words Kalanchoe blossfeldiana；seedling leaf；tissue culture；rapid propagation

長壽花（Kalanchoe blossfeldiana），又叫矮生伽藍菜、壽星花、假川蓮，是景天科（Crassulaceae）伽藍菜屬（Kalanchoe）多年生肉質草本植物[1]。長壽花原產自馬達加斯加島，其花色鮮艷，花期長，觀賞效果極佳，20世紀90年代初傳入我國，近年隨著進口花卉大量的進入中國市場，成為了一種極具發展潛力的“新品種花卉”[2]。

長壽花因其耐干旱、花期長、花色鮮艷、易栽培等特點在市場上深受消費者喜愛，是國際花卉市場發展最快的室內盆栽花卉之一。其繁殖方法一般是播種和扦插，但這2種方法都易受季節影響。筆者以長壽花葉片為外植體，以MS為基本培養基，研究不同激素配比對長壽花愈傷組織生長、不定芽誘導以及生根效果的影響，以期得到各培養階段的最佳培養基配方，為國內長壽花組培苗工廠化生產提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

健康的市售盆栽長壽花幼嫩葉片。

1.2 培養基及培養條件

1.2.1 培養基制備。基本培養基為MS或1/2 MS，各培養基蔗糖濃度為3%，瓊脂成分為0.7%，pH值為5.8，121 ℃高壓滅菌20 min[3-8]。

1.2.2 培養條件。溫度23～26 ℃，光照時間12 h/d，光照強度1 000 lx左右培養[9-13]。

1.3 試驗方法

1.3.1 外植體滅菌。取長壽花健康幼嫩的葉片，用流水沖洗10 min，移至超凈工作臺內操作，用75%乙醇對葉片進行消毒，無菌水沖洗4次，0.1%升汞消毒，無菌水沖洗5次。將滅菌后的葉片切成約0.5 cm×0.5 cm的小塊接種在誘導愈傷培養基中，每瓶放置5小塊，每個處理水平接種6瓶，即每個水平共接種30塊外植體，置于培養室中培養，每天觀測1次并記錄，對不同消毒時長的消毒效果進行比較[14-18]。葉片消毒時長設置4個不同的處理水平，分別為75%酒精25 s+0.1%升汞3 min（A1）；75%酒精30 s+0.1%升汞5 min（A2）；75%酒精35 s+0.1%升汞7 min（A3）；75%酒精40 s+0.1%升汞9 min（A4）。

1.3.2 愈傷組織的誘導。取相同條件下消毒后的葉片進行切塊，切成約0.5 cm×0.5 cm的小塊，接種在不同激素配比的誘導愈傷培養基中，每瓶放置5小塊，每個處理水平接種6瓶，即每個水平共接種30塊外植體，置于培養室中培養，定期觀測愈傷組織生長及增殖的情況并進行記錄[19-20]。對激素配比設置5個不同處理水平，分別為MS+6-BA 0.2 mg/L+2，4-D 0.1 mg/L（B1），MS+6-BA 0.2 mg/L+2，4-D 0.2 mg/L（B2），MS+6-BA 0.5 mg/L+2，4-D 0.2 mg/L（B3），MS+6-BA 0.5 mg/L+2，4-D 0.3 mg/L（B4），MS+6-BA 0.5 mg/L+2，4-D 0.4 mg/L（B5）。

1.3.3 愈傷組織的芽誘導。把愈傷組織切成小塊轉接至分化培養基，每瓶放置5小塊，每個處理水平接種6瓶，即每個水平共接種30塊愈傷組織，置于培養室中培養，定期觀測芽的分化情況，接種后30 d進行芽增殖數統計。對激素配比設置4個不同處理水平，分別為MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L（C1），MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L（C2），MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L（C3），MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L（C4）。

1.3.4 根的誘導。待不定芽生長至2～3 cm高時，將健壯的單株芽苗切下轉接至生根培養基中，每瓶放置5株，每個處理水平接種6瓶，即每個水平共接種30株芽苗，置于培養室中培養，觀測不定根的生長情況并記錄。對激素配比設置4個不同處理水平，分別為MS（D1），MS+IBA 0.2 mg/L（D2），1/2 MS（D3），1/2 MS+IBA 0.2 mg/L（D4）。

2 結果與分析

2.1 不同滅菌時長對長壽花葉片滅菌效果的影響

接種15 d后對葉片的污染率、死亡率、成活率進行統計。處理A3、A4等2個處理污染率最低，分別為20%和30%；處理A1、A3等2個處理死亡率最低，分別為5%和10%；處理A2、A3等2個處理成活率較高，分別為45%和70%。因此，處理A3的處理方式為最佳，即先用75%酒精消毒30 s，再用0.1%升汞消毒7 min，消毒后外植體的污染率為20%，死亡率為10%，成活率為70%。

2.2 不同激素配比對長壽花葉片愈傷組織誘導的影響

以MS為基本培養基添加不同濃度的6-BA及2，4-D，接種30 d后觀察各激素配比對愈傷組織生長情況的影響，并進行統計。

處理B1、B2、B3、B4、B5的誘導率分別為47%、87%、97%、53%、47%，其中處理B3的愈傷組織誘導率是最高的。因此，處理B3的激素配比為最佳，培養基配方為MS+6-BA 0.5 mg/L+2，4-D 0.2 mg/L，愈傷組織的誘導率達97%。

2.3 不同激素配比對長壽花不定芽誘導的影響

以MS為基本培養基，附加不同濃度的6-BA及NAA，將愈傷組織接種到繼代分化培養基上，轉接40 d后對不定芽的分化情況進行統計。處理C1、C2、C3、C4分化率分別為73%、80%、93%及73%，其中處理C3的不定芽分化率明顯高于其他組。因此，處理C3的激素配比為最佳（圖1），培養基配方為MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L，不定芽的分化率達93%。

2.4 不同激素配比對長壽花芽苗根誘導的影響

轉接7 d后對不定根的生長情況進行統計。處理D1、D2、D3、D4的生根率分別為80%、93%、70%、100%，其中處理D4的生根率明顯高于其他組，基部長出白色不定根（圖2）。因此，處理D4的激素配比為最佳，培養基配方為1/2 MS+IBA 0.2 mg/L，芽苗的生根率可達到100%。

3 結論與討論

通過對不同消毒時長影響長壽花葉片再生能力以及不同激素配比影響長壽花愈傷組織生長、不定芽誘導和生根效果的試驗，長壽花嫩葉片最佳的消毒處理方式為：先用75%酒精消毒30 s，無菌水沖洗4次，再用0.1%升汞消毒7 min，無菌水沖洗5次。消毒后外植體的污染率為20%，死亡率為10%，成活率為70%，這種外植體滅菌方法大大提高了無菌外植體建立的成功率。愈傷組織誘導效果及生長狀況最佳的培養基配方為MS+6-BA 0.5 mg/L+2，4-D 0.2 mg/L；誘導不定芽分化的最適培養基配方為MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L，其芽分化的效果最好；誘導不定芽生根的最適培養基配方為1/2 MS+IBA 0.2 mg/L，基部長出粗壯白色的不定根。

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