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信號肽對Bacillus subtilis表達環糊精葡萄糖基轉移酶的影響

2016-05-23 10:01:14李江華堵國成江南大學工業生物技術教育部重點實驗室江蘇無錫214122江南大學生物工程學院江蘇無錫214122
食品與生物技術學報 2016年2期

毛 婷, 李江華*, 劉 龍, 堵國成, 陳 堅(1.江南大學,工業生物技術教育部重點實驗室,江蘇無錫214122;2.江南大學生物工程學院,江蘇無錫214122)

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信號肽對Bacillus subtilis表達環糊精葡萄糖基轉移酶的影響

毛婷1,2,李江華*1,2,劉龍1,2,堵國成1,2,陳堅1,2
(1.江南大學,工業生物技術教育部重點實驗室,江蘇無錫214122;2.江南大學生物工程學院,江蘇無錫214122)

摘要:將來源于作者所在實驗室構建保存E.coli pET-20b(+)/CGT△E-CBMAmy的CGT△ECBMAmy基因插入6種含有不同信號肽(estA、bpr、vpr、yncM、yvgO和ywbN)的穿梭質粒pMA0911-SPs中,構建了6種重組表達載體并將其轉入表達宿主B. subtilis WB600中,獲得了6株重組菌。在相同的發酵條件下,estA信號肽介導的分泌效果最好,L-抗壞血酸2-葡萄苷產量達到0.81 g/L,明顯高于其他5株重組菌。選取WBpMB/CGT△E-CBMAmy作為出發菌株,進行了搖瓶發酵條件優化,實現了CGT△E-CBMAmy酶的高效表達,最終使AA-2G產量提高了2.16倍,VC轉化率達到21.9%。

關鍵詞:環糊精葡萄糖基轉移酶;信號肽;枯草芽孢桿菌;異源表達

環糊精葡萄糖基轉移酶(簡稱CGT)屬于轉移酶家族(EC 2.2.1.19),是一種能夠通過轉糖基反應轉化淀粉及相關基質合成環糊精的胞外酶[1]。它主要催化3種轉糖基反應(歧化反應、環化反應和偶合反應)和水解反應[2],CGT酶通過歧化反應,先將淀粉或環糊精轉化為單糖、雙糖或低聚糖,然后將這些糖分子作為供體轉移到各種受體分子上,從而改善受體分子的性質[3],成為近幾年研究的熱點。

L-抗壞血酸(VC)是一種人體必需但無法自身合成的水溶性維生素,穩定性差,在光照、金屬離子作用及水溶液中很容易氧化[4]。CGT通過歧化作用可使VC與低聚糖反應合成葡萄糖基-L-抗壞血酸,其產物穩定性明顯提高[3],而L-抗壞血酸2-葡萄苷(AA-2G)就是一種VC的糖基衍生物,在醫療保健和健康方面具有巨大的應用潛力。與其他的VC糖基衍生物相比,AA-2G具有以下幾個優點:1)AA-2G具有很高的耐熱性和抗氧化性,因此穩定性和安全性最佳[5];2)AA-2G易于被人體吸收,吸收后降解也非常容易,降解后釋放的VC能發揮其生理作用;3)生物酶法轉化是目前報道合成AA-2G的惟一方法[3],該方法操作簡便,污染少,易于控制。

淀粉水解酶具有用于結合淀粉顆粒的非催化區域,稱為碳水化合物物結合域(CBM),該區域通常能夠特異性結合多糖[6]。本研究E.coli pET-20b (+)/CGT△E-CBMAmy[7]是將來自于堿性Alkalimonas amylolytica淀粉酶的CBM與來自于P. macerans CGTase融合,構建了嵌合酶基因CGT△E-CBMAmy,以提高可溶性淀粉作為底物時的底物特異性,以此來為糖基供體生產AA-2G。該方法使嵌合酶失去了CGT酶的環化活力,但歧化活力有所提高(本研究以AA-2G產量的高低表征歧化活力的高低)。

能分泌CGT酶的微生物種類很多,但目前工業生產中所用的生產菌株一般為芽孢桿菌[8]。枯草芽孢桿菌是公認的符合食品安全標準的宿主,具有優秀的蛋白質分泌能力,含有豐富的信號肽序列且無明顯的密碼子偏好性,其作為異源蛋白的表達宿主具有明顯優勢[9]。為提高異源蛋白的表達,除了選用合適的啟動子及表達載體外,選用匹配度高的信號肽也是一種非常有效的手段[10]。不同的信號肽對不同的異源蛋白的分泌表達有著一定的影響,成成等[11]將CGT插入含有pelB信號肽質粒中并在大腸中表達,李斌等[1]將pelB信號肽換成OmpA信號肽,CGT酶的表達量明顯提高。Ismael等[12]利用天冬酰胺酶信號肽提高CGT表達,酶活提高了1.7倍。Ong等[13]利用Bacillus sp.的G1信號肽提高CGT表達,酶活提高了62.3%。

我們選取枯草作為表達宿主,將來源于E.coli pET-20b(+)/CGT△E-CBMAmy的CGT△E-CBMAmy基因插入含有6種不同信號肽的pMA0911-SPs系列載體中并在B. subtilis WB600表達,得到了一株AA-2G合成能力高的重組菌,并將其為出發菌株,考察了初始pH、溫度、碳源、氮源、金屬離子對CGT△E-CBMAmy表達的影響。最終使AA-2G產量達到1.75 g/L,VC轉化率達到21.9%。

1 材料與方法

1.1菌株與質粒

E.coli pET-20b(+)/CGT△E-CBMAmy,克隆宿主菌E. coli JM109,表達宿主菌B. subtilis WB600,表達質粒pMA0911-SPs(含有不同信號肽的pMA0911衍生質粒):均為作者所在實驗室保藏;克隆質粒pMD18-T-simple:TaKaRa(大連)生物工程有限公司;WBpMB/CGT△E -CBMAmy、WBpMCCGT△E -CBMAmy、WBpMG/CGT△E -CBMAmy、WBpMJ/CGT△E -CBMAmy、WBpML/CGT△E -CBMAmy及WBpMM/ CGT△E-CBMAmy:均為作者所在實驗室構建。

1.2試劑、酶、Marker及相關試劑盒

限制性內切酶EcoRI、BamHI,PCR用酶PrimerStar Taq、Ex Taq、SolutionI,感受態制備試劑盒、質粒提取試劑盒、片段回收和膠回收試劑盒:TaKaRa(大連)生物工程有限公司;氨芐青霉素、卡那霉素等試劑:上海生工生物工程有限公司;酵母粉和胰蛋白胨:Oxoid公司;麥芽糊精:山東西王食品有限公司;VC:中國醫藥集團上海化學試劑公司;AA-2G標準品:和光純藥工業株式會社(日本);標準相對分子質量蛋白質、緩沖液:碧云天生物技術研究所;其它各種試劑:國產分析純;引物合成和測序:由生工生物工程(上海)股份有限公司完成。

1.3培養基

1.3.1種子培養基LB培養基。

1.3.2發酵培養基LB+1 g/dL葡萄糖,TB培養基,TSB培養基。培養基配制參照文獻[20]。

1.4 CGTΔE-CBMAmy酶基因的克隆

以E.coli pET-20b(+)/CGT△E-CBMAmy為模板,利用引物P1/P2對目標基因進行擴增。PCR反應條件為:95℃3 min;98℃30 s;56℃30 s;72℃2 min,30個循環;72℃延伸5 min。PCR引物如下:P1:CGGAATTCTCACCCGATACGAGCGTGGACA,P2:CGGGATCCTTAAAAACCGCCATTGAAGGAC。P1/P2分別含EcoRI和BamHI的限制性酶切位點。將擴增得到的不含信號肽的CGT△E-CBMAmy基因片段與pMD18-T-simple連接并轉入宿主E. coli JM109。通過菌落PCR驗證篩選陽性菌株,挑選陽性菌株在含有100 μg/mL氨芐青霉素的LB培養基中37℃培養過夜,提取質粒進行酶切驗證及測序鑒定。

1.5表達載體的構建與轉化

將測序正確的質粒pMD18-T-simple/CGT△ECBMAmy經EcoRI和BamHI雙酶切后回收目的片段,與以同樣的方法獲得含有不同信號肽的E.coli-B.subtilis穿梭載體pMA0911-SPs采用Solution I連接酶連接。將重組載體采用化學轉化法[14]轉入B. subtilis WB600中,在含有50 μg/mL卡那霉素平板上篩選獲得陽性克隆,菌落PCR并酶切驗證。

1.6分析方法

1.6.1 DNA瓊脂糖凝膠電泳按文獻[14]方法進行。

1.6.2 AA-2G合成反應條件酶液1 mL,25 g/L麥芽糊精0.5 mL,25 g/L VC 0.5 mL,28℃,pH 6.5,200 r/min避光避氧24 h[15]。

1.6.3 AA-2G檢測高效液相色譜法[16]。色譜柱:Amethyst C18-H(5 μm,4.6 mm×250 mm);檢測器:Variable Wavelength Detector(UV);柱溫:25℃;檢測波長:238 nm;進樣量:10 μL;流動相:KH2PO4(0.025 mol/L)∶甲醇=99.5∶0.5,用磷酸調pH至2.0。

1.7培養方法

1.7.1種子培養條件挑取WBpMB/CGT△ECBMAmy接入含有50 μg/mL Kan的LB培養基中,在37℃、200 r/min的搖床上培養12 h。

1.7.2發酵條件按4%接種體積分數接種至TB發酵培養基中,36 h后離心收集上清液。

2 結果與討論

2.1重組菌的構建與表達

參照1.4及1.5步驟,構建得到了分別攜帶重組載體pMB/CGT△E -CBMAmy、pMC/CGT△E -CBMAmy、pMG/CGT△E -CBMAmy、pMJ/CGT△E -CBMAmy、pML/CGT△E-CBMAmy、pMM/CGT△E-CBMAmy的重組菌WBpMB/CGT△E -CBMAmy、WBpMC/ CGT△E -CBMAmy、WBpMG/CGT△E -CBMAmy、WBpMJ/ CGT△E-CBMAmy、WBpML/CGT△E-CBMAmy、WBpMM/ CGT△E-CBMAmy。分別取提質粒,用EcoRI和BamHI雙酶切重組質粒得到20 kb的目的基因CGT△ECBMAmy片段與71 kb的目的基因pMA0911-SPs片段,與預期結果一致,表明重組菌構建成功,見圖1 (a)。將6株重組菌按1.7步驟的發酵條件發酵,并用12 g/dL SDS-PAGE對重組菌WBpMB/CGT△ECBMAmy發酵上清液檢測,發現與CGT△E-CBMAmy酶相對分子質量相對應的74 000處有條帶,陰性對照中沒有相應條帶。證明CGT△E -CBMAmy在B. subtilis WB600中成功表達。按1.6步驟測AA-2G產量,結果見圖1(b)。可見重組菌WBpMB/CGT△ECBMAmy中CGT△E-CBMAmy酶的表達效果最佳,因此我們選取重組菌WBpMB/CGT△E-CBMAmy進行發酵條件優化。

圖1 不同重組菌質粒酶切驗證及AA-2G產量比較Fig. 1  Restriction enzyme analysis of recombinants plasmid and comparion of AA-2G production

2.2重組菌WBpMB/CGTΔE-CBMAmy發酵條件優化

2.2.1不同初始培養基對CGT△E-CBMAmy表達的影響為了獲得適合重組枯菌的初始培養基,選取了4種枯草芽孢桿菌常用培養基(TSB、LB、LB+1 g/dL葡萄糖、TB)進行重組菌發酵。結果見圖2(a)所示,TB培養基作為發酵培養基時,AA-2G產量達到0.9 g/L,表明在所選的4種培養基中,TB最有利于CGT△E-CBMAmy酶的表達。

2.2.2不同溫度對CGT△E-CBMAmy表達的影響溫度對菌體的生長和產酶都有著重要的影響,作者考察了4種不同的溫度條件對CGT△E-CBMAmy表達的影響。從圖2(b)中可以看出,隨著發酵溫度的升高,CGT△E-CBMAmy表達量增高,AA-2G產量增高。37℃時,AA-2G的產量最高,但溫度達到42℃后,AA-2G產量下降,原因可能為溫度過高,菌體生產合成速率過快,質粒的穩定性降低,限制了酶的表達。

2.2.3初始pH對CGT△E-CBMAmy表達的影響pH對于菌體的發酵產酶有重要的作用,pH過高或過低都會抑制菌體的生長和產酶。作者選擇初始pH值依次為5、6、7、8、9的TB培養基培養重組菌,考察了初始pH對CGT△E-CBMAmy表達的影響。從圖2(c)中可以看出,初始pH 7時,AA-2G產量最高。

2.2.4種齡對CGT△E-CBMAmy表達的影響種齡對菌體發酵合成產物的影響很大,當菌體處于對數生長期時活力最強,會很快適應新的環境,并進入生物合成期。作者選擇了處于不同種齡的菌體進行發酵,從圖2(d)中可以看出,種齡為7 h的種子液最有利于CGT△E-CBMAmy的表達,AA-2G產量也明顯高于其余4組。

圖2 重組菌發酵條件對AA-2G產量的影響Fig. 2 Comparison of AA-2G production during process optimization

2.2.5不同碳源對CGT△E-CBMAmy表達的影響以TB為初始培養基,按照碳質量分數相等原則,選擇了葡萄糖、蔗糖、麥芽糖、玉米淀粉、可溶性淀粉、甘油6種碳源,研究了不同碳源對CGT△E-CBMAmy表達的影響,結果見圖3(a)。當以葡萄糖和甘油為碳源時,CGT△E-CBMAmy表達量高,AA-2G產量分別達到1.41 g和1.43 g左右。但葡萄糖成本較低,因此選擇葡萄糖作為碳源并對其添加濃度進行了優化,結果見圖3(b)。當葡萄糖質量濃度為5 g/L時,AA-2G產量達到1.52 g,可見此質量濃度更有利于CGT△E-CBMAmy表達。隨著葡萄糖質量濃度的升高反而抑制了CGT△E-CBMAmy的表達,AA-2G產量降低。

圖3 不同碳源及葡萄糖質量濃度對AA-2G產量的影響Fig. 3  Effect of difficult carbon source and glucose concentration on AA-2G production

2.2.6不同氮源對CGT△E-CBMAmy表達的影響氮源種類對菌體生長和產酶都會產生很大影響。根據氮質量分數相等的原則,選取9種不同氮源(魚粉、牛肉浸膏、大豆蛋白胨、尿素、玉米漿、酪蛋白、硫酸銨、氯化銨、胰蛋白胨)代替原有培養基中的氮源蛋白胨,酵母粉質量濃度不變(24 g/L),考察了不同氮源對CGT△E-CBMAmy表達的影響。結果見圖4 (a)所示,可以看出以牛肉浸膏為氮源時,AA-2G產量最高,達到1.75 g/L。培養基中碳/氮比對菌體的代謝也會產生很大的影響,因此進一步對牛肉浸膏的濃度進行了優化,確定最優質量濃度后又對酵母粉質量濃度進行優化。從圖4(b)中可以看出當牛肉浸膏質量濃度為10 g/L,酵母粉質量濃度為25 g/L條件下,AA-2G產量可達到1.62 g/L。

2.2.7金屬離子及濃度對CGT△E-CBMAmy表達的影響金屬離子也是CGT酶生產的關鍵因素,Gawande等[17]和Jing-Bong等[18]發現在CGT酶生產中必須添加鎂離子;Rosso等人[19]發現鐵離子是提高B. circulans DF 9Rβ-CGT酶產量的最有效金屬離子,鎂離子則對細胞生長起到促進作用。在培養基中分別添加Fe3+、Ca2+、Zn2+、Cu2+、Mg2+、Fe2+、Mn2+,考察了它們對CGT△E-CBMAmy表達的影響。從圖5(a)中可以看出,添加Zn2+和Mg2+時,AA-2G產量可以達到1.75 g/L,可見添加Zn2+和Mg2+有利于產酶。隨后考察了不同Zn2+質量濃度和不同Mg2+質量濃度對產酶的影響,從圖5(b)中看出Zn2+質量濃度為0.1 g/L,Mg2+質量濃度為0.6 g/L時有利于產酶。

圖4 不同氮源及氮源質量濃度對AA-2G產量的影響Fig. 4  Effect of difficult nitrogen source and nitrogen concentrations on AA-2G production

圖5 不同金屬離子(a)及金屬離子質量濃度(b)對AA-2G產量的影響Fig. 5 Effect of difficult metal ions source and metal ions concentration on AA-2G production

3 結語

將CGT△E-CBMAmy酶基因克隆到含有6種不同信號肽的穿梭質粒pMA0911-SPs上,構建得到了能胞外生產CGT△E-CBMAmy的6種重組菌。其中estA信號肽最有利于CGT△E-CBMAmy胞外表達,攜帶estA信號肽的重組菌WBpMB/CGT△E-CBMAmy的AA-2G產量達到0.81 g/L,通過對培養基及發酵條件的研究,獲得了重組菌WBpMB/CGT△ECBMAmy的最佳發酵條件:葡萄糖5 g/L,酵母粉10 g/ L,牛肉浸膏25 g/L,氯化鋅0.1 g/L,硫酸鎂0.6 g/L,K2HPO472 mmol/L,KH2PO4 17 mmol/L,初始pH為7.0,培養溫度為37℃。在該條件下AA-2G產量達到1.75 g/L,與優化前相比提高了1.16倍,使VC轉化率達到21.9%。

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Effects of Signal Peptides on Extracellular Expression of Cyclodextrin Glycosyltransferase in Bacillus subtilis

MAO Ting1,2,LI Jianghua*1,2,LIU Long1,2,DU Guocheng1,2,CHEN Jian1,2
(1. Key Laboratory of Industrial Biotechnology,Ministry of Education,Jiangnan University,Wuxi 214122,China;2. School of Biotechnology,Jiangnan University,Wuxi 214122,China)

Abstract:CGT△E-CBMAmygene from E. coli pET-20b(+)/CGT△E-CBMAmywas cloned and inserted into the expression plasmid pMA0911-SPs containing six different signal peptides(estA,bpr,vpr,yncM,yvgO and ywbN),which were further transformed into B. subtilis WB600 for overexpression to obtain six recombinant strains. The results showed that estA was the optimal signal peptide among all the signal peptides under the same culture conditions,the yields of AA-2G was up to 0.81 g/L,obvious higher than that of the other five strains. Therefore,WBpMB/CGT△E-CBMAmywas chosen as the starting strain and the optimum conditions for extracellular expression of CGT△E-CBMAmywere investigated in shaking flask. Finally,the high expression of CGT△E-CBMAmyenzyme was achieved,and the yields of AA-2G was about 2.16 times higher than that before optimization and the conversion rate of VC reached 21.9%.

Keywords:cyclodextringlucosetransferase,signalpeptide,Bacillus subtilis,heterologousexpression

*通信作者:李江華(1966—),男,江西九江人,工學博士,教授,博士研究生導師,主要從事酶工程與生物催化方面的研究。E-mail:lijianghua@jiangnan.edu.cn

基金項目:江蘇省科技支撐計劃項目(BE2011624)。

收稿日期:2014-08-22

中圖分類號:Q 555

文獻標志碼:A

文章編號:1673—1689(2016)02—0173—07

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