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高選擇性和高靈敏度的microRNA檢測技術的研究進展

2016-06-13 10:44:36陳珍珠李蕊田飛沈彥婷葛芹玉
生物技術通報 2016年4期
關鍵詞:信號檢測方法

陳珍珠 李蕊 田飛 沈彥婷 葛芹玉

(東南大學學習科學研究中心,南京 210096)

高選擇性和高靈敏度的microRNA檢測技術的研究進展

陳珍珠 李蕊 田飛 沈彥婷 葛芹玉

(東南大學學習科學研究中心,南京 210096)

microRNA(miRNA)是一類內源性的具有調控功能的非編碼RNA,在多種細胞過程中起重要的調節作用,如細胞發育、脂肪代謝、器官生成、細胞分化及細胞凋亡等。研究表明,miRNA的表達水平變化與腫瘤、糖尿病等多種疾病的發生發展密切相關,因此對于miRNA表達水平進行準確快速的檢測是對其進行深入研究的前提。目前miRNA的檢測分析技術眾多,但是對于miRNA多態性和突變的檢測技術還不甚成熟,而且生物樣本中微量miRNA檢測技術的靈敏度亦需要進一步的發展與突破。就近年來miRNA的高選擇性和高靈敏度的檢測方法進行了綜述,旨為相關的檢測技術進一步研究提供重要幫助。

miRNA;檢測方法;高選擇性;高靈敏度;基因調控

MicroRNA(miRNA)是一類內源性的非編碼RNA,具有調控功能,廣泛存在于真核生物中,其大小長約20-25個核苷酸。多數miRNA 還具有高度保守性、時序性和組織特異性[1-3]。到目前為止,在人類基因組中已發現超過1 000種miRNAs[4],因其具有抑制靶mRNA轉錄、翻譯或者能夠剪切靶mRNA并促進其降解的功能,所以在人類多種生物過程中起著至關重要的作用,如細胞生長、分化、凋亡和增殖等過程[5]。現在許多研究表明,miRNAs的異常表達與許多癌癥相關,如肺癌、肝癌、胃癌、乳腺癌、結腸癌和卵巢癌等[6]。這些miRNAs所起的作用類似于抑癌基因和癌基因的功能[7],因此有研究人員將miRNA命名為“oncomirs”。miRNAs被用于有 價值的標志物在早期的癌癥診斷和預后中,研究miRNA的表達水平及其生物學功能,對探索生物進化及防治人類疾病具有重要意義[8]。

在過去的一段時間,由于其特殊的生物學功能,miRNAs檢測技術的研究受到了廣泛關注,同時亦有大量相關文章發表,從印跡雜交、微陣列芯片檢測到最近發展起來的一些基于信號擴增技術在內的等一系列miRNA檢測方法被大量報道。印跡雜交技術(northern blotting)是用于miRNAs檢測分析的最為經典的方法之一[9-12]。很多專家學者對其進行了發展優化,在一定程度上解決了miRNA在傳統northern blotting 時因其序列短,所引起雜交效率與檢測靈敏度的問題[13-15]。但是該方法存在一些缺點,如靈敏度較低、操作過程繁瑣、檢測時間長、檢測范圍窄、容易污染等。微陣列基因芯片技術[16,17]是20世紀90年代發展起來的高通量檢測技術,雖然具有高通量、高靈敏度、高特異性等優點,但檢測所用試劑和設備費用高,且該方法對多個miRNAs的量化存在困難。聚合酶鏈式反應(polymerase chain reaction,PCR)技術[18]是體外快速擴增特定基因最經典和最廣泛應用的方法,其中反轉錄聚合酶鏈式反應(reverse transcription PCR,RT-PCR)在miRNA的檢測中亦被廣泛的研究及應用。目前主要采用引物延伸RT-PCR、莖環引物RT-PCR[19,20]和miRNA加尾RT-PCR[21,22]等方法進行miRNA的定性和定量檢測。盡管這些傳統的檢測技術基本能夠進行miRNA的檢測,而且許多研究者從不同角度進行了這樣那樣的優化研究,以此彌補傳統檢測技術帶來的缺陷。但是考慮到miRNA檢測的特異性和靈敏度的問題,這些已有的方法仍然需要進一步優化。

由于miRNA具有序列短、低豐度及家族成員間的高度保守性等性質,致使其檢測難度增加,同時也增加了人們對于其檢測方法進行深入研究的興趣。由于miRNA的檢測對于醫學及分子生物學都有著非常重要的意義,在很多臨床研究中,需要針對一些與癌癥相關的基因進行檢測。由于miRNA在臨床研究中獲取難度很大,而且miRNA的穩定性較差,放置時間不宜過長,在一定程度上增加了其檢測難度,所以提高檢測特異性和靈敏度是miRNA檢測面臨的一大挑戰[23]。同時,miRNA的表達調控比較精細,同一基因可能受不同miRNA的調節,對應的同一miRNA也可能控制著多種基因的表達,如若想更好的將miRNA應用于臨床研究中,則需要精確地區分miRNA的結構和長度等信息,這也成為了當前miRNA檢測的另一大技術難題。

近年來已有大量的文章涉及了這方面的工作,也有學者對miRNA的檢測方法做了綜述,但是關于高選擇性和高靈敏度的miRNA檢測技術的概括還不甚全面。本文主要從基于信號放大的等溫擴增技術和電化學檢測技術用于高選擇性和高靈敏度的miRNA的檢測著手進行了系統性總結,以便于人們對于其檢測技術有更深層次的認識和了解,從而明確miRNA的研究進展及研究方向,為更加充分的研究和利用miRNA 奠定基礎。

1 高選擇性和高靈敏度的microRNA檢測技術

1.1 基于信號放大的等溫擴增技術用于高選擇性和高靈敏度的microRNA的檢測

由于miRNA檢測的傳統技術在選擇性和靈敏度上需要進一步提高,所以一些學者在提高miRNA的選擇性和靈敏度上做了大量的工作,也報道了一些相關文獻,如表1所示。這些新的檢測技術將miRNA的檢測提高到了一種新的層次,從而推動了miRNA在臨床中的應用。

一些學者在已有的miRNA檢測技術上做了改進,從而大大提高了miRNA檢測的特異性和靈敏度。Cui等[24]提出了在T7核酸外切酶協助下利用滾環-循環酶雙擴增法(RCA-CEAM)檢測miRNAs,如圖1所示。RCA-CEAM法是將RCA(滾環擴增)與CEAM(循環酶擴增)結合起來的一種高選擇性和高靈敏度的miRNA檢測方法。該方法為了減少背景信號,在CEAM環節中采用特定設計的線性分子信標(linear molecular beacon,LMB)作為報告探針。其檢測限低至12 fM,而傳統的RCA法的檢測限為10 pM。與此同時,這種方法成功的應用于肝癌細胞和正常肝細胞的let-7a的表達水平的檢測,很好地證明了其在早期癌癥診斷中的潛在應用。Ge等[25]提出基于靶細胞引發的滾環擴增-熒光原位檢測法(TPRCA-FISH)。該方法采用circular DNA作為探針與miRNA靶細胞進行原位雜交,隨后miRNA游離的3'末端引發了原位RCA反應,擴增產物可以與熒光探針進行雜交,以此來高靈敏度的指征靶 miRNA的存在。該技術中RCA反應只能由成熟miRNA的游離的3'末端引發,從而消除了miRNA前體或 mRNA的干擾作用。這種方法被用于在人類肝癌細胞SMMC-7721和肝細胞L02中的miR-222表達水平的檢測,顯示其高靈敏性和強選擇性的檢測。此外,該方法中RCA產物與熒光探針雜交,產生的信號很強,能夠很容易的從背景信號中區分出來,可利用普通的熒光顯微鏡檢測,能夠很好地檢測低豐度的miRNA。

表1 基于信號放大的等溫擴增技術用于miRNA的檢測

圖1 RCA-CEAM雙擴增技術用于miRNA的高靈敏檢測的工作原理圖[24]

恒溫指數擴增模式(IEXPAR)是利用線性擴增的寡核苷酸產物來產生更多與引物序列相同的寡核苷酸序列,從而產生指數放大效果,該方法擴增效率高。在此基礎上Yin等[26]提出了采用分子信標的方法用于miRNA的檢測,這是一種新發展起來的簡單且可一步完成的反應。這種方法是運用熒光分子信標(MB)固有的信號傳導機理,構成一個“生物回路”,包含兩個反應:由Nicking核酸內切酶協助的等溫擴增反應和用于引發MB擴增反應及信號傳導的鏈置換聚合反應。該反應的檢測動態限為1 fM-100 nM,具有較高的靈敏性和特異性。Liu等[27]提出了基于鎖式探針的恒溫指數滾環擴增技術(P-ERCA)用于miRNA的檢測,其中該鎖式探針由與miRNA的雜交序列和Nicking核酸內切酶的Nicking位點組成,大大提高了反應的特異性和靈敏度,其檢測限降至0.24 zmol。

1.2 電化學檢測技術用于高選擇性和高靈敏度的microRNA的檢測

生物傳感器利用生物物質作為識別元件,將特異性的生化反應轉換成可識別的信號,從而能夠進行生命物質和化學物質檢測和監控的器件[37]。電化學生物傳感器具有高效、靈敏快速、簡便等特點,因此基于電化學技術的miRNA生物傳感器具有獨特的優勢。電化學生物傳感器是將肽核酸固定在硅納米線(SiNWs)的表面上作為檢測miRNA的探針,當與miRNA進行雜交時,將會引起SiNWs界面電阻的變化,其變化值與miRNA濃度相關[38]。對于電化學生物傳感器,控制識別探針在表面的密度和位置是一大挑戰;信號擴增的效率和靈敏度是電化學檢測技術的另一大挑戰。表2列出了近年來研究者提出并發展的一些基于電化學技術的miRNA檢測方法。

表2 電化學檢測技術用于miRNA的檢測

1.2.1 基于納米粒子放大的電化學檢測技術 Cheng等[39]提出了一種基于CdTe納米晶體和Au納米簇(AuNCs)的電化學能量共振轉移技術,在連接酶的作用下進行miRNA的檢測,如圖2所示。其中CdTe納米晶 體作為電化學發光的供體,而AuNCs作為電化學發光的受體。其基本原理為:首先合成AuNCs功能化的發夾結構的DNA,然后在玻璃碳電極上通過酰胺反應結合到羧酸化的CdTe納米晶體上。當只有miRNA存在時,雜交作用可直接將發夾結構的DNA打開,這時由于CdTe納米晶體和A uNCs之間的距離很近,使得能量傳遞受 到影響,進而致使電化學發光信號很弱。而當miRNA和協助DNA同時存在時,連接酶能夠選擇性連接兩者到發夾結構的DNA鏈上,以形成長的DNA-RNA異源雜交雙鏈。較長的鏈抑制了CdTe納米晶體和AuNCs之間的能量傳遞,從而大大增強了電化學發光信號,很好的提高了miRNA的檢測靈敏度。該檢測方法的線性范圍達到6個數量級,檢測限低至21.7 fM,而且具有很高的特異性。

圖2 基于CdTe納米晶體和Au納米簇(AuNCs)的電化學能量共振轉移分布miRNA檢測分析原理圖[39]

Dong等[40]提出了采用耦合的Hg2+介導的構象的分子信標(MB),用Ag納米簇(AgNCs)作為熒光團,在核酸內切酶輔助下進行的擴增反應用于miRNA的檢測。其中Hg2+能夠有效地淬滅AgNCs的熒光信號,在特定的溫度下,Hg2+介導的特定構象的MB不能與靶標分子雜交。在協助探針分子存在的情況下,靶標 分子和MB探針退火,形成Y型結構,隨即通過釋放Hg2+對AgNCs產生高的熒光淬滅效率。該技術的檢測限低至1 fM,同時消除了復雜的溫度控制和復雜的標記,在臨床診斷中具有重要的應用前景。

Ge等[41]提出了運用四面體Au納米結構探針與雜交鏈反應相結合的方法進行miRNA的檢測,其中三維四面體DNA納米結構作為支架用于固定DNA識別探針,檢測信號通過雜交鏈反應進行放大。因為超級三明治結構的分子雖然被廣泛用于信號擴增,但是在構建該結構的過程中,其表面修飾及目標分子消耗難以精確控制,從而影響了擴增效率。而該檢測方法通過特定的引發劑或目標分子來引發DNA雜交鏈擴增反應,其產 物為雙螺旋結構,能夠捕獲大量的信號分子,從而大大增加了擴增效率,與傳統的超級三明治擴增法相比,提高了3個數量級,使miRNA的檢測限降低至10 aM。

1.2.2 基于酶的電化學檢測技術 最近,基于酶的電化學檢測技術 用于miRNA的檢測研究越來越廣泛,由于在其催化作用下可將單個雜交分子轉化成大量的檢測分子,這也大大的提高了檢測的靈敏性和特異性,同時為電化學生物傳感器用于miRNA的檢測開辟了一條新的途徑。近年來,關于這方面的報道也日益增多。

基于此,Cai等[42]曾設計了非標記的特殊結構的分子信標用于的miRNA檢測的電化學生物傳感器。該生物傳感器所采用的非標記的功能化變構分子信標(aMBs)在目標物存在的情況下,能夠高效的與鏈霉親和素過氧化物酶聚合物結合,進而通過催化反應產生可檢測的電信號。該傳感器消除抗原抗體相互作用需要復雜的DNA修飾這一缺點。該aMB 電化學生物傳感器用于miRNA的檢測具有高選擇性和高特異性,其檢測限低至3.4 fM。另外該傳感器可成功用于10%的血清樣本的檢測。

Lin等[43]報道了第三代E-DNA傳感器用于miRNA的檢測,該設計主要采用DNA四面體來確保莖環結構能夠被很好地控制。莖環結構DNA的熱力學穩定性降低了反應的背景信號,增加了反應的特異性。隨后用生化酶進行電化學信號擴增。該E-DNA傳感器對于miRNA的檢測低至1 fM,能夠很好地區分高相似的miRNA家族成員。

Yu等[44]提出了基于拱形探針(arched probe)所介導的等溫指數擴增反應的一種簡單且非標記的電化學生物傳感器的miRNA檢測技術,如圖3所示。該探針是在電極表面的由兩條在兩端彼此部分互補的特殊的探針分子。目標miRNA可以與拱形結構的互補序列進行雜交,產生的不完整的雙鏈DNA分子可以與引物結合,通過置換反應或切割來獲得更多的miRNA分子,以實現指數循環擴增。反應過程中產生的單鏈DNA分子在鉀離子存在的情況下與血紅素結合形成G-四聯體DNA,產生的電化學信號可被高效的檢測。釋放到溶液中的另一條鏈觸發EXPAR循環和再生目標分子。該技術的檢測限低至5.36 fM,其檢測線性范圍為3個數量級。

Deng等[45]提出了一種新的miRNA檢測技術,該技術首先是靶標分子miRNA分子與固定在磁珠上的特異性探針(DZ-CPs)進行雜交,然后利用雙鏈特異性核酸酶對其進行切割,通過磁鐵去除未反應的DZ-CPs和磁珠,溶液中獲得的DNA分子能夠作為催化劑在過氧化氫存在的情況下催化3,3',5,5'-聯苯胺發生反應,可以通過比色法進行高靈敏度檢測。這種方法的檢測限低至0.8 aM。

圖3 基于聚合酶和Nicking核酸內切酶的由拱形探針所介導的EXPAR技術用于miRNA檢測的原理圖[44]

2 結語

miRNA 的檢測對疾病的分子診斷和新型生物醫藥制劑的研發具有重要意義,近年來,有研究表明miRNA可作為一些癌癥治療的潛在靶向藥物用于臨床治療[62]。盡管目前為止,只有一部分miRNA的生物學功能得到了解釋,但是人們對于miRNA的研究仍在不斷努力。 miRNA的研究方法正在不斷發展,越來越多的報道闡明了檢測miRNA 在不同組織、不同時期、不同疾病狀態下的表達水平。miRNA檢測技術也越來越受到人們的關注,與此同時各種各樣的新發展起來的檢測技術已被運用到miRNA的檢測之中,基于以前一些傳統方法的基礎上,miRNA的檢測選擇性和靈敏度有了很大的提高。隨著新技術新方法的迅速發展,科研人員在定量檢測 miRNA 方面有了更多的選擇,但仍需要專家學者不斷努力,爭取提出更完善的技術方法。

[1]Bentwich I, Avniel A, Karov Y, et al. Identification of hundreds of conserved and nonconserved human microRNAs[J]. Nat Genet, 2005, 37(7):766-770.

[2]Drummond MJ, McCarthy JJ, Sinha M, et al. Aging and microRNA expression in human skeletal mussscle:a microarray andbioinformatics analysis[J]. Physiol Genomics, 2011, 43(10):595-603.

[3]Liang Y, Ridzon D, Wong L, et al. Characterization of microRNA expression profiles in normal human tissues[J]. BMC Genomics, 2007, 8:166-186.

[4]Li R, Li X, Ning S, et al. Identification of a core miRNA-pathway regulatory network in glioma by therapeutically targeting miR-181d, miR-23b, β-Catenin, BP and STAT[J]. PLoS One, 2014, 9(7):e101903.

[5]Bartel DP. MicroRNAs:genomics, biogenesis, mechanism, and function[J]. Cell, 2004, 116(2):281-297.

[6]Yanaihara N, Caplen N, Bowman E, et al. Unique microRNA molecular profiles in lung cancer diagnosis and prognosis[J]. Cancer Cell, 2006, 9(3):189-198.

[7]Tong F, Cao P, Yin Y, et al. MicroRNAs in gastric cancer:from benchtop to bedside[J]. Dig Dis Sci, 2014, 59(1):24-30.

[8]Lukiw WJ, Zhao Y, Cui JG. An NF-kappaB-sensitive microRNA-146a-mediated inflammatory circuit in Alzheimer disease and stressed human brain cells[J]. J Biol Chem, 2008, 283(46):31315-31322.

[9]Reinhart BJ, Slack FJ, Basson M, et al. The 21-nucleotide let-7 RNA regulates developmental timing in Caenorhabditis elegans[J]. Nature, 2000, 403(6772):901-906.

[10]Lee RC, Ambros V. An extensive class of small RNAs in Caenorhabditis elegans[J]. Science, 2001, 294(5543):862-864.

[11]Lagos-Quintana M, Rauhut R, Lendeckel W, et al. Identification of novel genes coding for small expressed RNAs[J]. Science, 2001, 294(5543):853-858.

[12]Lim LP, Lau NC, Weinstein EG. The microRNAs of Caenorhabditis elegans[J]. Genes Dev, 2003, 17(8):991-1008.

[13]Válóczi A, Hornyik C, Varga N, et al. Sensiti- ve and specific detection of microRNAs by northern blot analysis using LNA-modified oligonucleotide probes[J]. Nucleic Acids Res, 2004, 32(22):e175.

[14]Pall GS, Codony-Servat C, Byrne J, et al. Carbodiimide-media- ted cross-linking of RNA to nylon membranes improves the detection of siRNA, miRNA and piRNA by northern blot[J]. Nucleic Acids Research, 2007, 35(8):e60.

[15]Nilsen TW. An alternative method for processing northern blots after capillary transfer[J]. Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2015, 3:314-318.

[16]Thomson JM, Parker J, Perou CM, et al. A custom microarray platform for analysis of microRNA gene expression[J]. Nat Methods, 2004, 1(1):47-53.

[17]Miska EA, Alvarez-Saavedra E, Townsend M, et al. Microarray analysis of microRNA expression in the developing mammalian brain[J]. Genome Biology, 2004, 5(9):R68.

[18]朱玉賢, 李毅, 鄭曉峰. 現代分子生物學[M]. 第3版. 北京:高等教育出版社, 2007, 11:165-166.

[19]Mestdagh P, Feys T, Bernard N, et al. High-throughput stem-loop RT-qPCR miRNA expression profiling using minute amounts of input RNA[J]. Nucleic Acids Research, 2008, 36(21):e143.

[20]Kramer MF. Stem-loop RT-qPCR for miRNAS[J]. Curr Protoc Mol Biol, 2011, Chapter 15:Unit 15. 10. DOI:10. 1002/0471142727. mb1510s95.

[21]Shi R, Chiang VL. Facile means for quantifying microRNA expression by realtime PCR[J]. Biotechniques, 2005, 39(4):519-525.

[22]Zhang J, Du YY, Lin YF, et al. The cell growth suppressor, mir-126, targets IRS[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2008, 377(1):136-140.

[23]Koshiol J, Wang E, Zhao Y, et al. Strengths and limitations of laboratory procedures for microRNA detection Cancer Epidemiol[J]. Biomarkers Prev, 2010, 19(4):907-911.

[24]Cui L, Zhu Z, Lin N, et al. A T7 exonuclease-assisted cyclic enzymatic amplification method coupled with rolling circleamplification:a dual-ampliction strategy forsensitive and selective microRNA detection[J]. Chem Commun, 2014, 50(13):1576-1578.

[25]Ge J, Zhang LL, Liu SJ, et al. A highly sensitive target-primed rolling circle amplificationTPRCA method for fluorescent in situ hybridization detection of microRNA in tumor cells[J]. Anal Chem, 2014, 86(3):1808-1814.

[26]Yin BC, Liu YQ, Ye BC. Sensitive detection of microRNA in complex biological samples via enzymatic signal amplification using DNA polyme- rase coupled with nicking endonuclease[J]. Anal Chem, 2013, 85(23):11487-11492.

[27]Liu HY, Li L, Duan LL, et al. High specific and ultrasensitive isothermal detection of microRNA by Padlock probe-basedexponential rolling circle amplification[J]. Anal Chem, 2013, 85(16):7941-7947.

[28]Oishi M. Enzyme-free and isothermal detection of microRNA based on click-chemical ligation-assisted hybridization coupled with hybridization chain reaction signal amplification[J]. Anal Bioanal Chem, 2015, 407(14):4165-4172.

[29]Zhang Q, Chen F, Xu F, et al. Target-triggered three-way junction structure and polymerase/nicking enzyme synergetic isothermal quadratic DNA machine for highly specific, one-step, and rapid microRNA detection at attomolar level[J]. Anal Chem, 2014, 86(16):8098-8105.

[30]Zhou DM, Du WF, Xi Q, et al. Isothermal nucleic acid amplification strategy by cyclic enzymatic repairing for highly sensitive microRNA detection[J]. Anal Chem, 2014, 86(14):6763-6767.

[31]Ma C, Liu S, Shi C. Ultrasensitive detection of microRNAs based on hairpin fluorescence probe assisted isothermal amplification[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2014, 58:57-60.

[32]Ma CP, Han D, Shi C. A new isothermal nucleic acid detection strategy mediated by a double-nicked beacon[J]. Chem Commun, 2014, 50(29):3799-3801.

[33]Zhu X, Zhou X, Xing D. Label-free detection of microRNA:twostep signal enhancement with a hairpin-probe-based graphene fluorescence switch and isothermal amplification[J]. Chemistry, 2013, 19(17):5487-5494.

[34]Wang XP, Yin BC, Wang P, et al. Highly sensitive detection of microRNAs based on isothermal exponential amplification-assisted generation of catalytic G-quadruplex DNAzyme[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2013, 42:131-135.

[35]Bi S, Cui Y, Li L. Dumbbell probe-mediated cascade isothermal amplification:A novel strategy for label-free detection of microRNAs and its application to real sample assay[J]. Analytica Chimica Acta, 2013, 760:69-74.

[36]Ogawa A. Isothermal sensitive detection of microRNA using an autonomous DNA machine recycling output as input[J]. Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters, 2010, 20(20):6056-6060.

[37]Thévenot DR, Toth K, Durst RA, et al. Electrochemical biosensors:recommended definitions and classification Biosens[J]. Bioelectron, 2011, 16(1-2):121-131.

[38]Zhang GJ, Chua JH, Chee RE, et al. Label-free direct detection of MiRNAs with silicon nanowire biosensors[J]. Biosens Bioelectron, 2009, 24(8):2504-2508.

[39]Cheng Y, Lei J, Chen Y, et al. Highly selective detection of microRNA based on distance-dependent electrochemiluminescence resonance energy transfer between CdTe nanocrystals and Au nanoclusters[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2014, 51:431-436.

[40]Dong H, Hao K, Tian Y, et al. Label-free and ultrasensitive microRNA detection based on novel molecular beacon binding readout and target recycling amplification[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2014, 53:377-383.

[41]Ge Z, Lin M, Wang P, et al. Hybridization chain reaction amplification of microRNA detection with a tetrahedral DNA nanostructure-based electrochemical biosensor[J]. Anal Chem, 2014, 86(4):2124-2130.

[42]Cai Z, Song Y, Wu Y, et al. An electrochemical sens or based on label-free functional allosteric molecular beacons for detection target DNA/miRNA[J]. Biosens Bioelectron, 2013, 41:783-788.

[43]Lin M, Wen Y, Li L, et al. Target-Responsive, DNA Nanostructure-Based E?DNA Sensor for microRNA Analysis[J]. Anal Chem, 2014, 86(5):2285-2288.

[44]Yu Y, Chen Z, Shi L, et al. Ultrasensitive electrochemical detection of microRNA based on an arched probe mediated isothermal exponential amplification[J]. Anal Chem, 2014, 86(16):8200-8205.

[45]Deng H, Shen W, Ren Y, et al. A highly sensitive and selective homogenous assay for profiling microRNA expression[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2014, 54:650-655.

[46]Cai Z, Song Y, Wu Y, et al. An electrochemical sensor based on label-free functional allosteric molecular beacons for detection target DNA/miRNA[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2013, 41:783-788.

[47]Yang J, Strickler JR, Gunasekaran S. Indium tin oxide-coated glass modified with reduced graphene oxide sheets and gold nanoparticles as disposable working electrodes for dopamine sensing in meat samples[J]. Nanoscale, 2012, 4(15):4594-4602.

[48]Gao Z, Deng H, Shen W, et al. A label-free biosensor for electrochemical detection of femtomolar microRNAs[J]. AnalChem, 2013, 85(30):1624-1630.

[49]Shen W, Deng H, Ren Y, et al. A label-free microRNA biosensor based on DNAzyme-catalyzed and microRNA-guided formation of a thin insulating polymer film[J]. Biosensors Bioelectronics, 2013, 44:171-176.

[50]Wang Z, Zhang J, Guo Y, et al. A novel electrically magneticcontrollable electrochemical biosensor for the ultra sensitive and specific detection of attomolar level oral cancer-related microRNA[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2013, 45:108-113.

[51]Ren Y, Deng H, Shen W, et al. A highly sensitive and selective electrochemical biosensor for direct detection of microRNAs in serum[J]. Anal Chem, 2013, 85(9):4784-4789.

[52]Meng X, Zhou Y, Liang Q, et al. Electrochemical determination of microRNA-21 based on bio bar code and hemin/G-quadruplet DNAenzyme[J]. Analyst, 2013, 138(12):3409-3415.

[53]Tran HV, Piro B, Reisberg S, et al. Label-free and reagentless electrochemical detection of microRNAs using a conducting polymer nanostructured by carbon nanotubes:application to prostate cancer biomarker miR-141[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2013, 49:164-169.

[54]Hong CY, Chen X, Liu T, et al. Ultrasensitive electrochemical detection of cancer-associated circulating microRNA in serum samples based on DNA concatamers[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2013, 50:132-136.

[55]Ramnani P, Gao Y, Ozsoz M, et al. Electronic detection of microRNA at ettomolar level with high specificity[J]. Anal Chem, 2013, 85(17):8061-8064.

[56]Labib M, Ghobadloo SM, Khan N, et al. Four-way junction formation promoting ultrasensitive electrochemical detection of microRNA[J]. Anal Chem, 2013, 85(20):9422-9427.

[57]Zhu W, Su X, Gao X, et al. A label-free and PCR-free electrochemical assay for multiplexed microRNA profiles by ligase chain reaction coupling with quantum dots barcodes[J]. Biosensors and Bioel ectronics, 2014, 53:414-419.

[58]Liu L, Xia N, Liu H, et al. Highly sensitive and label-free electrochemical detection of microRNAs based on triple signal amplification of multifunctional gold nanoparticles, enzymes and redox-cycling reaction[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2014, 53:399-405.

[59]Zhou Y, Wang M, Xu Z, et al. Investigation of the effect of phytohormone on the expression of microRNA-159a in Arabidopsis thaliana seedlings based on mimic enzyme catalysis systematic electrochemical biosensor[J]. Biosensors Bioelectronics, 2014, 54:244-250.

[60]Bartosik M, Hrstkaa R, Palecek E, et al. Magnetic beadbased hybridization assay for electrochemical detection of microRNA[J]. Analytica Chim Acta, 2014, 813:35-40.

[61]Deng H, Shen W, Ren Y, et al. A highly sensitive microRNA biosensor based on hybridized microRNA-guided deposition of polyaniline[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2014, 60:195-200.

[62]Jafri MA, Zaidi SK, Ansari SA, et al. MicroRNAs as potential drug targets for therapeutic intervention in colorectal cancer[J]. Expert Opin Ther Targets, 2015, 18:1-19.

(責任編輯 狄艷紅)

Research Progress on miRNA Detection Techniques with High Sensitivity and High Selectivity

CHEN Zhen-zhu LI Rui TIAN Fei SHEN Yan-ting GE Qin-yu
(Research Center for Learning Science,Southeast University,Nanjing 210096)

microRNAs(miRNAs),a class of small,endogenous and non-coding RNAs,play critical regulatory functions in many cell processes such as cell development,fat metabolism,organs generation,cell differentiation and apoptosis,etc. Researchers have discovered that the dysregulation of miRNA expression is closely associated with various diseases including human cancers and diabetes. Therefore,the prompt and accurate detection of miRNA expression is the prerequisite for the further researches on it. Many assays for miRNA detection have recently been developed,but the detection techniques for polymorphism and mutation of miRNA are not so mature. Furthermore,the sensitivity for detection technology of microscale miRNA in biological samples also needs further development and breakthroughs. The new developed miRNA detection techniques with high selectivity and high sensitivity are reviewed in this paper,and then this may provide important assistance for further study on the related detection technologies.

miRNA;detection method;high selectivity;high sensitivity;gene regulation

10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2016.04.005

2015-07-08

陳珍珠,女,碩士,研究方向:生物醫學工程;E-mail:zzchen_seu@163.com

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