基于人CD105分子的酵母展示系統的構建

高海霞，劉紅芹，石琳，屈浩

·論著·

基于人CD105分子的酵母展示系統的構建

高海霞，劉紅芹，石琳，屈浩

目的構建基于人 CD105 分子的酵母表面展示系統。

方法以人 CD105 cDNA 為模板，擴增 CD105 基因片段，轉化到酵母表面展示載體 pYDs，構建 pYDs-CD105 重組質粒；將重組質粒轉化酵母細胞，測序鑒定，并通過流式細胞儀分析 CD105 的表達。

結果測序表明 CD105 基因片段轉入 pYDs 質粒，流式細胞儀檢測到酵母細胞表面有 CD105 分子的表達。

結論成功構建了基于人 CD105 分子的酵母表面展示系統，為本實驗室獲得 CD105 單克隆抗體雜交瘤細胞株提供了新的篩選平臺。

聚合酶鏈反應；膜糖蛋白類；CD105；誘導；酵母表面展示

www.cmbp.net.cn中國醫藥生物技術， 2016， 11（4）：329-332

表面展示技術（surface display techniques，SDT）是一種基因表達產物和親和選擇相結合的技術，不僅可以展示小肽，還可以展示較大的蛋白［1］。展示文庫常用于確定單克隆抗體的抗原表位，其中大腸桿菌表達系統的噬菌體展示系統應用最為廣泛，但受其自身加工能力的限制，缺乏對表達產物的翻譯后修飾功能，從而降低了獲得高親和力單克隆抗體的可能性。酵母表面展示系統是繼噬菌體展示技術創立后發展起來的真核展示系統，酵母的蛋白質折疊和分泌機制與哺乳動物細胞非常相似，對人的蛋白質表達和展示更具優越性［2］。

CD105 是一種分子量為 180 kD 的存在于細胞表面的同源二聚體跨膜糖蛋白，其胞膜外部分含有 561 個氨基酸殘基，跨膜區域含有 25 個氨基酸殘基，胞膜內部分含有 47 個氨基酸殘基。CD105 主要表達在血管內皮細胞及相關組織上，在造血細胞、基質細胞、成纖維細胞、血管平滑肌細胞弱表達。CD105 參與血管生成，與腫瘤的轉移及預后相關，在惡性腫瘤的診斷、預后、治療中發揮重要作用［3］。將 CD105 分子展示在酵母表面，是利用流式細胞儀快速、準確篩選 CD105 單克隆抗體的有效方法。

1　材料與方法

1.1材料

1.1.1菌株釀酒酵母 EBY100 和大腸桿菌DH5α 由本實驗室保存。

1.1.2主要試劑pYDs-CD105-ring 引物和 pYDs引物由美國 Invitrogen 公司合成；M-MLV 逆轉錄酶購自美國 Invitrogen 公司；DNA 純化試劑盒、高保真 Pyrobest DNA 聚合酶購自大連 Takara 公司；酵母轉化及誘導試劑盒購自北京偉侖欣創生物公司；酵母質粒提取試劑盒和 anti-V5 抗體購自天根生物公司；anti-CD105-PE 單克隆抗體購自美國Beckman Coulter 公司；goat anti-mouse-IgG-FITC購自美國 Biotech 公司。

1.2方法

1.2.1引物根據已知 human CD105 cDNA 序列，設計并合成一對引物，上游引物：pYDs-CD105-ring-1：5' CCAGGATCCAGTGTGGT GGAATTCGAAACAGTCCATTGTGACCTTCAGC CT 3'，下游引物：pYDs-CD105-ring-2：5' GCCCTC TAGACTCGAGGGCGGCCGCATCGAGATCCCCG GGTGCGCA 3'；此外，合成另一對酵母轉化同源區引物，上游引物：pYDs01：5' GATCTGTACGACG ATGACGATAAGGTACCAGGATCCAGTGTGGTG GAATTC 3'，下游引物：pYDs02：5' GTTAGGGAT AGGCTTACCTTCGAAGGGCCCTCTAGACTCGA GGGCGGCCGC 3'。

1.2.2總 RNA 提取和 RT-PCR從 U937 細胞系中提取總 RNA，以總 RNA 為模板進行逆轉錄合成第一鏈。從合成的 human CD105 cDNA 中取1 μl 為模板，以 pYDs-CD105-ring-1，pYDs-CD105-ring-2 為上下游引物，高保真聚合酶 Pyrobest 擴增CD105 片段。反應條件為：94 ℃ 預變性 5 min；94 ℃ 30 s，55 ℃ 30 s，72 ℃ 60 s，共 30 個循環；之后 72 ℃ 延伸 5 min。

1.2.3在 CD105 兩端加上酵母轉化同源區序列以上面 PCR 擴增的 CD105 片段為模板，以pYDs01、pYDs02 酵母轉化同源區為上下游引物，PCR 擴增帶同源區序列的 CD105 片段。反應條件為：94 ℃ 預變性 5 min；94 ℃ 30 s，55 ℃ 30 s，72 ℃ 60 s，共 30 個循環；之后 72 ℃ 延伸 5 min。1.2.4酵母轉化根據膠回收試劑盒說明書步驟純化回收用酵母同源區引物擴增的 CD105 片段，與 EcoR I 和 Not I 雙酶切的 pYDs 質粒轉化EBY100 酵母。

轉化前 2 天從 -80 ℃ 冰箱取出 EBY100，劃線接種到 YPD 平板上，30 ℃ 培養至長出單克隆菌落。將 EBY100 接種于 5 ml YPD 培養基，30 ℃200 r/min 過夜。次日測 A600= 0.935，用 50 ml YPD培養液稀釋菌液至 A 值為 0.05，30 ℃ 200 r/min培養至 A 為 0.5，在 3000 × g 條件下，離心 5 min收集菌體，用 20 ml 雙蒸水洗菌體，離心同上，棄上清。用 1 ml 100 mmol/L LiAc 懸浮菌體，30 ℃ 溫浴 10 min，最高速度離心 10 s，棄上清，用 500 μl 100 mmol/L LiAc 重懸菌體。取 50 μl 細胞懸液于新的離心管，15 s 高速離心，移去上清，加入下列成分：240 μl PEG，36 μl LiAc（100 mmol/L），50 μl SS-DNA（carrier），1 μl Plasmic DNA Vector，20 μl PCR 產物，4 μl ddH2O。混勻細胞懸液，30 ℃ 溫浴 30 min，然后加入 40 μl DMSO，混勻。熱擊轉化液，42 ℃ 25 min，高速離心 30 s 收集細胞，去除上清，用 1 ml ddH2O 重懸，細胞懸液涂布 SD板，30 ℃ 培養 2 ～ 4 d，獲得轉化子。

1.2.5測序轉化后從 SD 平板上挑取單克隆菌落接種到 SD 培養基中，30 ℃ 培養 24 h，按照酵母質粒提取試劑盒說明書步驟提取酵母質粒，熱擊法轉化 DH5α，涂在 LB Amp+平板上，37 ℃ 培養箱培養過夜，挑單克隆測序。

1.2.6酵母誘導得到正確的展示 CD105 酵母克隆后，SG 培養基誘導。從 SD 平板上挑單克隆接種到 2 ml SD 培養基（加 2% 葡萄糖）中，30 ℃ 搖床培養到 OD 值至 2.0 時，取 1 ml 菌液，5000 r/min 離心 5 min，棄上清。用 1 ml SG 培養基（加 2% 半乳糖）懸浮菌體，5000 r/min 離心5 min，棄上清，然后用 2 ml SG 培養基懸浮菌體，轉入試管，20 ℃ 搖床誘導 36 ～ 48 h。

1.2.7流式細胞儀檢測取 SG 誘導的酵母 1 × 106個，用 1 ml FACS buffer（PBS + 1% BSA）洗1 次，5000 r/min 離心 5 min，棄上清，按 1：1000加入 anti-V5 抗體，4 ℃ 避光孵育 1 h，1 ml FACS buffer 洗 3 次，按 1∶100 加入二抗 goat anti-mouse-IgG-FITC，流式細胞儀 FACS Calibur檢測 V5 信號。同時，用 20 μl anti-CD105-PE 單克隆抗體標記酵母 1 × 106個，4 ℃ 避光孵育 1 h，隨后流式細胞儀檢測 CD105 信號。

2　結果

2.1PCR 擴增產物的鑒定

以 CD105 cDNA 為模板，以兩側引物擴增CD105 分子的一個蛋白結構域。經瓊脂糖凝膠電泳分析，結果顯示成功地擴增出 717 bp 的目的 DNA條帶（圖 1）。以此為模板，在 CD105 兩端加上酵母（pYDs）轉化同源區序列，成功地擴增出 767 bp 的 pYDs-CD105 DNA 目的條帶（圖 2）。

圖1　CD105 基因片段擴增的瓊脂糖電泳分析Figure 1　Analysis of CD105 gene by agarose gel electrophoresis

圖2　pYDs-CD105 基因擴增的瓊脂糖電泳分析Figure 2　Analysis of pYDs-CD105 gene by agarose gel electrophoresis

2.2酵母轉化及測序

根據膠回收試劑盒說明書步驟純化回收用酵母同源區引物擴增的 CD105 片段，與 EcoR I 和Not I 雙酶切的 pYDs 質粒轉化 EBY100 酵母，30 ℃ 培養 2 d 后 SD 平板長出數十個單菌落。

從 SD 平板上挑取單克隆菌落提取酵母質粒，熱擊法轉化 DH5α，涂在 LB Amp+平板上，37 ℃培養箱培養過夜，挑單克隆 pYDs-CD105-ring-1 和pYDs-CD105-ring-2 去測序，最終獲得了序列完全正確的 pYDs-CD105 質粒。

2.3流式細胞儀檢測酵母表面 CD105 的表達

PCR 擴增 CD105 一個蛋白結構域的片段，表達在酵母表面后，先用 anti-V5-FITC 標記，檢測酵母展示的效率。結果顯示 V5 信號陽性（圖 3），然后用 anti-CD105 抗體標記，流式細胞儀檢測抗體結合。結果表明，CD105 片段與 anti-CD105 抗體結合（圖 4）。

圖3　FACS 檢測 V5 表達Figure 3　The expression of V5 was determined by FACS

圖4　FACS 檢測 CD105 表達Figure 4　The expression of CD105 was determined by FACS

3　討論

酵母展示系統是研究可溶性蛋白間相互作用的有效系統，利用此系統可以簡單快速地研究抗原與抗體的相互作用，確定與抗體相對應的空間構象性的抗原決定簇。

自絲狀噬菌體表面展示技術創立以來，短短幾年，又分別發展了 λ 噬菌體、T4 噬菌體、T7 噬菌體、大腸桿菌、桿狀病毒以及酵母等多種表面展示系統。酵母表面展示系統是一種真核展示系統，含有與哺乳動物相似的蛋白折疊機制，這樣酵母比原核細胞更有可能正確地表達和展示人的蛋白［4］。另外，在回收稀有克隆，區分親和力微弱差別的克隆方面也優于噬菌體、大腸桿菌等原核展示系統。更具優勢的是將目的片段連入載體，經過誘導，目的蛋白就展示在酵母表面，不需要進行蛋白純化，且酵母細胞顆粒大，可用流式細胞儀進行篩選和分離，比 Western blot 和 ELISA 方法要方便、快速［5-6］。

本實驗室應用酵母展示技術成功將人 CD105分子片段展示在細胞表面，建立了篩選 CD105 單克隆抗體的新技術平臺。但是，CD105 全長基因較大（2000 bp 左右），將全長基因轉化至酵母載體不易形成正確的空間構象，故計劃將其拆分為幾個結構域進行克隆，構建不同抗原決定簇的酵母展示載體，相關實驗還在進行中。

本次構建的酵母表面展示 CD105 片段與anti-CD105 抗體結合，但是信號較 V5 弱。可能是測試所用的 anti-CD105 抗體對應的抗原結合位點與本實驗構建的抗原部分交叉，而不是完全一致，導致信號不強。另一個原因，anti-CD105 抗體不是與 CD105 抗原的某一段線性片段結合，而是與 CD105 抗原空間構象位點結合，抗體結合需要CD105 的正確折疊。

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【Abstract】

ObjectiveConstruction of the yeast display system on human CD105.

MethodsIn the present study， the cDNA of human CD105 was used as a template， and human CD105 gene was amplified by PCR with primer we designed. The PCR products were cloned into yeast surface display vector pYDs， and the recombinant vector CD105-pYDs was thus constructed. This recombinant vector was then transfected into yeast cells. The expression of CD105 on the surface of yeast cells was determined by flow cytometery.

ResultsThe CD105 gene was successfully transfected into pYDs， and CD105 was detected on the surface of yeast cells by flow cytometery.

ConclusionThe yeast display system on human CD105 is successfully constructed in the present study， and this might provide a favorable basis of further study.

Author Affiliations： Tianjin AllianStemcell Biotech Co.， Ltd.， Tianjin 300304， China （GAO Hai-xia）； Union Stem Cell & Gene Engineering Co.， Ltd.， Tianjin 300384， China （LIU Hong-qin， SHI Lin， QU Hao）

www.cmbp.net.cnChin Med Biotechnol， 2016， 11（4）：329-332

Construction and identification of human CD105 based yeast display system

GAO Hai-xia， LIU Hong-qin， SHI Lin， QU Hao

Polymerase chain reaction；Membrane glycoproteins；CD105；Introduce；Yeast display

GAO Hai-xia， Email： gaohaixia2005@aliyun.com

10.3969/j.issn.1673-713X.2016.04.008

天津市科技創新專項資金（08FDZDSH03000）

300304 天津和澤干細胞科技有限公司（高海霞）；300384 天津，協和干細胞基因工程有限公司（劉紅芹、石琳、屈浩）

高海霞，Email：gaohaixia2005@aliyun.com

2016-04-08