陳杰 鄭可 張文燕 孫林雍 唐源 嚴嘉琦 趙莎 劉衛(wèi)平
(四川大學華西醫(yī)院病理科, 四川 成都 610041)
?
·論著·
毛細管電泳基因掃描和凝膠電泳異源雙鏈分析在免疫球蛋白/T細胞受體基因重排檢測中的應用研究*
陳杰 鄭可 張文燕 孫林雍 唐源 嚴嘉琦 趙莎 劉衛(wèi)平
(四川大學華西醫(yī)院病理科, 四川 成都 610041)
目的 探討免疫球蛋白輕鏈IgK及T細胞抗原受體(TCRγ)基因重排更有效的檢測方法。 方法 收集四川大學華西醫(yī)院病理科2013~2014年淋巴組織增生性病變石蠟樣本共139例,采用BIOMED-2系統(tǒng)擴增,分別使用毛細管電泳基因掃描和凝膠電泳異源雙鏈分析兩種方法進行IgK和TCRγ基因重排檢測,比較不同方法之間的檢出率。 結(jié)果 81例行IgK基因重排檢測,其中59例病理診斷為B細胞淋巴瘤,毛細管電泳基因掃描檢出陽性47例(79.66%),凝膠電泳異源雙鏈分析檢出陽性34例(57.63%),二者差異有統(tǒng)計學意義(P=0.01)。58例行TCRγ基因重排檢測,其中26例病理診斷為T細胞淋巴瘤,毛細管電泳基因掃描檢出陽性21例(80.77%),凝膠電泳異源雙鏈檢出陽性17例(65.38%),差異無統(tǒng)計學意義(P=0.211)。 結(jié)論 毛細管電泳基因掃描在抗原受體基因重排檢測中比凝膠電泳異源雙鏈分析有更好的檢測靈敏度。
毛細管電泳; 凝膠電泳; 基因重排; BIOMED-2系統(tǒng)
免疫球蛋白(Immunoglobin, Ig)和T細胞受體(T cell receptor, TCR)基因重排檢測是淋巴組織增生性疾病的重要輔助診斷手段,其基本原理是淋巴組織腫瘤起源于單個惡性轉(zhuǎn)化的淋巴細胞,相同的克隆具有相同的基因重排方式。因此,淋巴組織增生克隆性分析的常用檢測方法,常規(guī)用于石蠟包埋組織。四川大學華西醫(yī)院病理科分子病理室采用BIOMED-2標準化的Ig和TCR基因重排克隆性分析系統(tǒng)合成引物并行擴增反應,其結(jié)果分析采用聚丙烯酰胺凝膠跑電泳結(jié)合異源雙鏈分析檢測目標條帶[1-2];在2014年逐步替換為毛細管電泳基因掃描,使用InVivoScribe Technologies公司商品化試劑進行Biomed-2擴增,擴增后使用ABI3500基因分析儀行毛細管電泳,檢測其目標擴增峰[3]。本文將對比毛細管電泳基因掃描和凝膠電泳異源雙鏈分析兩種方法在抗原受體基因重排檢測中的差異。
1.1 材料 收集四川大學華西醫(yī)院病理科2013~2014年淋巴組織增生性病變139例,均為10%中性緩沖福爾馬林固定石蠟包埋組織樣本。
1.2 方法
1.2.1 DNA提取 使用QIAGEN FFPE DNA提取試劑盒提取DNA;并檢查濃度備測。擴增管家基因β-globin檢測其質(zhì)量。
1.2.2 引物 室內(nèi)合成引物和商品化試劑盒的引物相同:IgK: Vk1f/6, Vk2f,Vk3f,Vk4,Vk5,Vk7,Jk1-4,Jk5,Kde,InTR;TCRγ:Vr1f,Vr10,Vr9,Vr11,Jr1.1/2.1,Jr1.3/2.3。
1.2.3 凝膠電泳異源雙鏈分析 所有樣本均使用天根公司商品化BufferMix加Taq酶及室內(nèi)合成的引物配制反應體系,進行Biomed-2擴增,反應結(jié)束后行異源雙鏈分析,最后使用聚丙烯酰氨凝膠電泳檢測目標條帶。
1.2.4 毛細管電泳基因掃描法 所有樣本均使用InVivoScribe Technologies公司的IdentiCloneTMIGK Gene Clonality Assay、IdentiCloneTMTCRγ Gene Clonality Assay試劑盒及ABI公司的AmpliTaq Gold Taq酶配制反應體系,進行Biomed-2擴增,隨后配制檢測體系行異源雙鏈分析,使用ABI3500基因分析儀跑毛細管電泳,結(jié)果使用GeneMapper軟件進行分析。兩種方法均使用相同的IgK及TCRγ陽性和陰性對照品,空白對照使用滅菌去離子水。
1.3 結(jié)果判讀標準 兩種方法的擴增片段范圍一致。IgK TubeA擴增條帶/擴增峰范圍:120~160 bp、190~210 bp、260~300 bp,TubeB為:210~250 bp、270~300 bp、350~390 bp;TCRγ TubeA擴增條帶/擴增峰范圍:145~255 bp,TubeB為80~220 bp。凝膠電泳異源雙鏈分析的結(jié)果在目標片段范圍內(nèi)可見清晰條帶,邊緣整齊,寬<1 mm,視為有克隆性重排;若條帶顯色較弱視為弱陽性;呈現(xiàn)涂片狀(smear)則為陰性[4]。毛細管電泳基因掃描的結(jié)果在目標片段范圍內(nèi)查見明顯的尖銳擴增峰,且峰高超過10 000可視為有克隆性重排;若擴增峰高度在10 000以下視為弱陽性;若呈現(xiàn)連續(xù)的波浪小峰或者數(shù)個低矮雜亂峰、甚至無峰出現(xiàn)則為陰性[3]。IgK檢測中其TubeA反應結(jié)果會在146 bp處出現(xiàn)一高度在10 000以內(nèi)的非特異性擴增峰,應不納入判讀范圍。
1.4 統(tǒng)計學方法 用SPSS軟件進行統(tǒng)計分析,兩組結(jié)果比較采用2檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 病理診斷 139例樣本的病理診斷為B細胞淋巴瘤62例,T細胞淋巴瘤31例,霍奇金淋巴瘤9例,不典型淋巴組織增生9例,炎性病變(包括Kikuchi病)9例,淋巴組織反應性增生12例,EB病毒相關淋巴增生性病變3例,Langerhans細胞組織細胞增生癥1例,脾臟淤血伴髓外造血1例,骨髓造血細胞增生活躍2例。
2.2 DNA質(zhì)量檢測 提取的DNA經(jīng)質(zhì)控引物擴增均獲得100~400 bp目標條帶,符合檢測要求。
2.3 IgK和TCR基因重排檢測結(jié)果 139例樣本中81例進行了IgK基因重排檢測,48例(59.26%)毛細管電泳基因掃描檢出克隆性重排,35例(43.21%)凝膠電泳異源雙鏈分析法檢出克隆性。58例進行了TCR基因重排檢測,32例(55.17%)毛細管電泳基因掃描檢出克隆性重排(表1)。
2.4 B細胞淋巴瘤的IgK和TCR基因重排檢測結(jié)果 62例B細胞淋巴瘤,其中59例用兩種方法同時進行了IgK檢測,毛細管電泳基因掃描法檢出克隆性重排47例(79.66%),凝膠電泳異源雙鏈分析法檢出克隆性重排34例(57.63%)(圖1)。兩組結(jié)果比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。另外3例同時進行了TCRγ基因檢測,均未檢出克隆性重排。
2.5 T細胞淋巴瘤的IgK和TCR基因重排檢測結(jié)果 31例T細胞淋巴瘤,其中26例用兩種方法同時進行了TCRγ基因重排檢測,毛細管電泳基因掃描檢出克隆性重排21例(80.77%),凝膠電泳異源雙鏈檢出克隆性重排17例(65.38%)(圖2)。2檢驗比較顯示二者差異無統(tǒng)計學意義(P=0.211)。余5例行IgK基因重排檢測,均未檢出克隆性重排。

表1 139例淋巴組織增生性病變IgK/TCR基因重排檢測結(jié)果[n(×10-2)]
注:ND:未檢測;MALToma:黏膜相關淋巴組織結(jié)外邊緣區(qū)淋巴瘤。

圖1 彌漫大B細胞淋巴瘤基因重排檢測結(jié)果
Figure 1 Positive results of Igk in diffuse large B cell lymphoma by capillary electrophoresis and gel electrophoresis
注:A.毛細管電泳TubeA在120~160 bp及260~300 bp范圍內(nèi)見克隆性擴增峰,TubeB在270~300 bp范圍內(nèi)見克隆性擴增峰;B.凝膠電泳TubeA在120~160 bp及260~300 bp范圍內(nèi)見克隆性擴增條帶,TubeB在270~300 bp范圍內(nèi)見克隆性擴增條帶。

圖2 淋巴組織反應性增生基因重排檢測結(jié)果
Figure 2 Negative results of Igk in reactive hyperplasia by capillary electrophoresis and gel electrophoresis
注:A.毛細管電泳;B.凝膠電泳;兩種方法TubeA、TubeB在目標范圍內(nèi)均未查見克隆性擴增峰/擴增條帶。

圖3 外周T細胞淋巴瘤基因重排檢測結(jié)果(非特指)
Figure 3 Positive results of TCRγ in peripheral T cell lymphoma by capillary electrophoresis and gel electrophoresis
注:A.毛細管電泳TubeA在145~255 bp范圍內(nèi)見克隆性擴增峰,TubeB在80~220 bp范圍內(nèi)見克隆性擴增峰;B.凝膠電泳TubeA在145~255 bp范圍內(nèi)見克隆性擴增條帶,TubeB在80~220 bp范圍內(nèi)見克隆性擴增條帶.
2.6 其他淋巴組織增生性疾病的IgK和TCR基因重排檢測結(jié)果 12例反應性增生,7例行IgK檢測,其中毛細管電泳基恩掃描陽性1例(14.29%),凝膠電泳異源雙鏈結(jié)果為陰性(圖3);5例進行了TCRr檢測,其中毛細管電泳基因掃描檢出陽性2例(40%),凝膠電泳異源雙鏈檢出陽性1例(20%),余為陰性(圖4)。
B或T淋巴細胞在分化成熟過程中免疫球蛋白或T細胞受體基因發(fā)生重排,形成數(shù)目龐大的不同克隆。與反應增生淋巴組織中的多克隆淋巴細胞不同,淋巴瘤的發(fā)生被認為是B或T淋巴細胞被阻斷在其分化過程中某一階段而造成淋巴細胞的克隆性增生所致,淋巴瘤腫瘤細胞來自于同一克隆(少數(shù)為寡克隆),具有一致的基因重排。多數(shù)淋巴增生性疾病通過組織形態(tài)學觀察及免疫表型分析能夠明確診斷,但仍有5%~10%的病例需要通過分子水平的克隆性分析來協(xié)助確定病變性質(zhì)。早在1990年就已經(jīng)將PCR技術應用于檢測淋巴細胞基因重排以助判斷其增生的克隆性,但由于引物覆蓋率低,致使很多假陰性出現(xiàn)。為解決引物設計所致的假陰性,并標準化該項PCR檢測技術,歐洲7個國家47家研究所組織了“歐洲BIOMED-2協(xié)同研究”,成功設計出了BIOMED-2系統(tǒng),該系統(tǒng)設計了107種引物,被組合在18個多重引物擴增管中且具有互補性,可以檢測出幾乎全部的B細胞、T細胞基因重排片段。后續(xù)的大量研究證實BIOMED-2系統(tǒng)被適用于各種亞型淋巴瘤的基因重排檢測[5-19]。

圖4 淋巴組織反應性增生基因重排檢測結(jié)果
Figure 4 Negative results of TCRγ in reactive hyperplasia by capillary electrophoresis and gel electrophoresis
注:A.毛細管電泳,B.凝膠電泳;兩種方法TubeA、TubeB在目標范圍內(nèi)均未查見克隆性擴增峰/擴增條帶。
本研究采用BIOMED-2系統(tǒng)中IgK及TCRγ引物組合進行基因重排檢測,所有139例樣本內(nèi)參質(zhì)控引物擴增均得到300 bp以上的產(chǎn)物,均符合BIOMED-2系統(tǒng)片段范圍。在進行IgK基因重排檢測的81樣本中,59例最終診斷為B細胞淋巴瘤,包括彌漫大B細胞淋巴瘤、套細胞淋巴瘤、胃黏膜相關淋巴組織淋巴瘤等七種亞型,毛細管電泳基因掃描檢出陽性47例(79.66%),而凝膠電泳異源雙鏈分析檢出陽性34例(57.63%),在統(tǒng)計學上兩種方法差異有統(tǒng)計學意義(P=0.01)。在進行TCRγ基因重排檢測的59樣本中,26例最終診斷為T細胞淋巴瘤,包括NK/T細胞淋巴瘤、外周T細胞淋巴瘤(非特指)、間變性大細胞淋巴瘤等六種亞型,毛細管電泳基因掃描檢出陽性21例(80.77%),凝膠電泳異源雙鏈檢出陽性17例(65.38%),在統(tǒng)計學上兩種方法差異無統(tǒng)計學意義(P=0.211)。上述結(jié)果提示B細胞淋巴瘤的IgH基因重排檢測,毛細管電泳基因掃描更加敏感、檢出率更高。就其可能的原因,包括:凝膠電泳使用的是室內(nèi)合成引物,由于引物在合成、配制中存在諸多影響因素,反復凍融亦會導致引物降解、擴增效率變低,以至于在BIOMED-2擴增后觀察不到明確的克隆性條帶;而毛細管電泳使用的商品化試劑盒,其引物、Buffer等均為標準化生產(chǎn)的,其試劑穩(wěn)定性更好,擴增效率更好。凝膠電泳結(jié)果采用聚丙烯酰胺凝膠經(jīng)過電泳后,使用銀染法顯色觀察,聚丙烯酰胺凝膠配制的好壞,染色、顯色的質(zhì)量均直接影響到結(jié)果判斷,且聚丙烯酰胺凝膠需肉眼觀察,受限于分辨率,其結(jié)果存在不確定性。而使用毛細管電泳檢測進行的是片段的分析,PCR產(chǎn)物在毛細管中電泳,經(jīng)激光照射后由信號收集器收集熒光信號,最后由軟件自動計算并以擴增峰的形式顯示結(jié)果,其結(jié)果可以明確知道每個擴增片段的條帶位置及擴增峰高度,即使少量的擴增片段亦可以收集到激光信號,敏感性和準確性均高于聚丙烯凝膠電泳。
12例淋巴組織反應性增生樣本中7例進行IgK檢測,毛細管電泳檢出陽性1例;5例進行TCRγ檢測,毛細管電泳檢出陽性2例,凝膠電泳檢出陽性1例。盡管例數(shù)不多,但是沒有呈現(xiàn)毛細管電泳基因掃描檢測基因重排的過度敏感或假陽性增加的趨勢。
本研究通過同一組病例的兩種實驗方法比較結(jié)果表明:毛細管電泳基因掃描因采用并經(jīng)過相關衛(wèi)生管理機構認證的商品化試劑盒,具有很強的規(guī)范性和穩(wěn)定性,較傳統(tǒng)的凝膠電泳異源雙鏈分析有更高的檢測靈敏度,更好的陽性檢出率;可以減少重復率提高工作效率;能夠提高淋巴瘤基因重排的檢測準確率,是實驗室標準化的最佳選擇。
[1]van Dongen JJ, Langerak AW, Brüggemann M,etal. Design and standardization of PCR primers and protocols for detection of clonal immunoglobulin and T-cell receptor gene recombinations in suspect lymphoproliferations: report of the BIOMED-2 Concerted Action BMH4-CT98-3936[J]. Leukemia, 2003,17(12):2257-2317.
[2]Liu H, Bench AJ, Bacon CM,etal. A practical strategy for the routine use of BIOMED-2 PCR assays for detection of B- and T-cell clonality in diagnostic haematopathology[J]. Br J Haematol, 2007,138:31-43.
[3]Fan H, Robetorye RS.Detection of clonal T-cell receptor beta and gamma chain gene rearrangement by polymerase chain reaction and capillary gel electrophoresis[J].Methods Mol Biol, 2013,999:169-188.
[4]唐源, 江煒,李雷,等.BIOMED-2系統(tǒng)引物用于檢測T細胞淋巴瘤石蠟樣本T細胞受體γ基因重排的研究[J].中華病理學雜志,2009,38(4):253-257.
[5]Swerdlow SH, Campo E, Harris NL,etal. WHO Classification of Tumors of Haematopoietic and Lymphoid Tissues[M]. Lyon: IARC, 2008.
[6]黃娟, 劉浩,曾凡才,等. BIOMED-2系統(tǒng)應用于B細胞非霍奇金淋巴瘤抗原受體基因重排檢測的研究[J].瀘州醫(yī)學院學報,2015,38(5):437-440.
[7]秦海明, 匡麗,程琳,等. BIOMED-2基因重排檢測在疑難淋巴組織增生性疾病診斷中的應用[J].診斷病理學雜志,2014,21(6):388-390.
[8]張建中, 晏良遂. PCR技術檢測IgH和TCRγ基因重排機器在淋巴瘤診斷中的初步應用[J].中華病理學雜志,1993,22(6):337-340.
[9]鐘梅, 呂亞莉,趙坡,等.異源雙鏈鑒定法檢測淋巴瘤lgH、TCRB基因重排[J].診斷病理學雜志,2004,11(4):255-256.
[10] Evans PA, Pott C, Groenen PJ,etal. Significantly improved PCR-based clonality testing in B-cell malignancies by use of multiple immunoglobulin gene targets. Report of the BIOMED-2 Concerted Action BHM4-CT98-3936[J]. Leukemia,2007, 21(2):207-214.
[11] Kokovic I, Jezersek Novakovic B, Novakovic S.Diagnostic value of immunoglobulin κ light chain gene rearrangement analysis in B-cell lymphomas[J].Int J Oncol, 2015,46(3):953-962.
[12] 潘鑫艷, 馮強,黎貴蕓,等. BIOMED-2引物系統(tǒng)檢測T 淋巴母細胞性淋巴瘤/急性淋巴細胞白血病中Ig /TCR 基因重排[J]. 臨床與實驗病理學雜志, 2015,31(10):1131-1139.
[13] 閆慶國, 黃高, 王哲,等. BIOMED-2 標準化的IG/TCR 基因重排克隆性分析系統(tǒng)及其應用研究[J]. 診斷病理學雜志, 2008,5(4):307-309.
[14] 潘云, 李甘地,劉衛(wèi)平. 淋巴母細胞淋巴瘤及其分子遺傳學研究進展[J].中華病理學雜志,2005,34(4): 236-239.
[15] 閆慶國, 郭英,黃高. T 、B 細胞受體基因重排克隆性分析的應用要略[J].診斷病理學雜志, 2004, 11(2):113 -115.
[16] 田曉峰, 許良中,何開玲,等.PCR檢測惡性淋巴瘤基因重排的方法學探討[J].實用腫瘤雜志,1999,14(3):180-181.
[17] 陸俐麗, 林賢東,鄭天榮,等. B 細胞淋巴瘤IgH 基因重排的檢測及臨床應用[J]. 福建醫(yī)藥雜志, 2007,9(6):77-79.
[18] 張振中, 吳逸明,徐玉寶,等. 短鏈線性聚丙烯酰胺-毛細管電泳分析DNA片段[J]. 中國藥科大學學報,2000,31(3):196-198.
[19] 王萍, 王瑞年,盧健,等. 非霍奇金淋巴瘤的IgH 和TCRδ基因重排[J]. 臨床與實驗病理學雜志,2002,18:21-23.
Comparative study of capillary electrophoresis-genescan and polyacrylamide gel electrophoresis-heteroduplex polymorphism in detecting IG/TCR gene rearrangement
CHEN Jie,ZHENG Ke,ZHANG Wenyan,et al
(DepartmentofPathology,WestChinaHospital,Sichuanuniversity,Chengdu610041,China)
Objective To compare the sensitivity of immunoglobulin heavy chain (IGH) gene rearrangement, immunoglobulin light chain(IgK) rearrangement and TCRγ gene clonal rearrangment by capillary electrophoresis (CE)-genescan and polyacrylamide gel electrophoresis(PAGE)-heteroduplex polymorphism, then establish a more effective method in detecting gene rearrangement. Methods DNA was extracted from paraffin embedded tissues in 139 patients of lymphoproliferative disease which collected from Department of Pathology, West China Hospital of Sichuan University in the period of 2013 to 2014. Clonal gene rearrangement was detected by PAGE-heteroduplex polymorphism and CE-genescan and compare the sensitivity of the two methods. Results 81 patients were positive for IgK rearrangement. 59 cases were diagnosed as B-cell lymphomas. 47 cases (79.66%) were positive for IgK rearragement by CE-genescan, whereas the positive rate was 57.63% by PAGE-heteroduplex polymorphism. 58 cases were positive for T-cell receptor (TCRγ) gene rearrangement. 26 of these were diagnosed as T-cell lymphomas. 80.77% (21/26) and 65.38%(17/26) TCRγ clonality were detected by CE-genescan and by PAGE-heteroduplex polymorphism, respectively. In composition, The positive rate of the former was higher than that of the latter, and there was a significant difference in the IgH rearrangement (P=0.01 ), while there was no significant difference in TCRγ rearrangement (P=0.211 ). Conclusion CE-genescan has a higher detecting sensitivity to antigen receptor gene rearrangement than PAGE-heteroduplex polymorphism. It’s an efficient detection of gene rearrangement.
Capillary electrophoresis; Gel electrophoresis; Gene rearrangement; BIOMED-2 system
國家自然科學基金(81272626)
張文燕,教授,本刊審稿專家,E-mail:zhangwenyanpath@163.com
R-331; R 733
A
10.3969/j.issn.1672-3511.2016.11.003
2016-07-26; 編輯: 張文秀)