肝細胞LO2中細胞因子誘導的含CISH基因的表達及其炎性因子調控的研究*

李臘梅，楊雪梅，伍洋平，陳潔，胡章勇△

1.成都醫學院 基礎醫學院(成都 610083);2.成都醫學院 第一附屬醫院(成都 610500);3.四川大學生物治療國家重點實驗室(成都 610411)

肝細胞LO2中細胞因子誘導的含CISH基因的表達及其炎性因子調控的研究*

李臘梅1，楊雪梅2，伍洋平3，陳潔2，胡章勇2△

1.成都醫學院 基礎醫學院(成都 610083);2.成都醫學院 第一附屬醫院(成都 610500);3.四川大學生物治療國家重點實驗室(成都 610411)

目的 建立SH2結構域蛋白(cytokine inducible SH2-containing protein,CISH)基因上、下調的肝細胞模型，探討CISH基因在正常肝細胞中的表達及其對炎性因子的調控。方法 實驗組分別為轉染CISH siRNA組和CISH過表達質粒組，對照組分別為轉染空質粒的陰性對照組和未轉染任何物質的空白對照組；分別用CISH siRNA和CISH過表達質粒借助lipo 2000轉染肝細胞LO2構建CISH基因表達的上、下調肝細胞模型；采用實時熒光定量PCR和蛋白質印跡法(Western Blot)分別檢測肝細胞LO2中CISH基因在mRNA和蛋白水平的變化；利用ELISA法檢測LO2肝細胞中CISH基因表達水平改變后對炎癥因子TNF-α、IL-1β水平的影響。結果 實時熒光定量PCR和Western Blot法檢測表明，與未轉染的LO2肝細胞比較，被轉染CISH過表達質粒的細胞能夠上調目的基因CISH的表達，被轉染CISH siRNA的細胞可下調目的基因CISH的表達；ELISA法檢測表明，與未轉染的LO2肝細胞比較，被轉染CISH過表達質粒的細胞分泌的炎癥因子TNF-α和IL-1β水平表現出降低趨勢，而被轉染CISH siRNA的細胞分泌的炎癥因子TNF-α和IL-1β水平則表現出升高趨勢。結論 成功構建了CISH高、低表達的LO2肝細胞系，CISH基因表達改變可影響LO2肝細胞系炎性因子的分泌。

慢性乙肝；肝細胞LO2；CISH基因；炎癥因子

SH2結構域蛋白(cytokine inducible SH2-containing protein,CISH)是SOCS蛋白家族的一員，于1995年由Yoshimura等研究首次發現[1]。SOCS蛋白家族包含8個成員，各個成員之間結構相似，中間含有一個SH2結構域，能夠結合磷酸化酪氨酸殘基，其決定著SOCS蛋白家族的識別作用；C端有一段保守序列，稱為“SOCS盒”[2-3]。既往研究[4-6]表明，CISH基因與過敏性哮喘、鉤端螺旋體病、肺結核、菌血癥及瘧疾等多種感染性疾病相關。研究[7]報道，處于免疫清除期的e抗原陽性慢性乙型肝炎患者，若CISH基因rs414171位點為AA基因型，則有更高概率發生HBV自發清除。本課題組前期研究[8]顯示，CISH基因rs414171和rs2239751位點單核苷酸的多態性與持續HBV感染相關。為驗證正常肝細胞內是否存在CISH基因的表達及其對炎性因子的調控，本研究擬在LO2正常肝細胞中建立CISH基因表達上調、下調的細胞模型，并探討CISH基因表達改變后對肝細胞分泌的炎性因子的影響。

1 材料與方法

1.1 主要儀器

熒光定量PCR儀(美國BioRad公司)、倒置熒光顯微鏡(日本Nikon公司)。

1.2 主要抗體

兔抗CISH單克隆抗體、辣根酶標記山羊抗兔IgG抗體購自美國CST公司，鼠抗β-actin抗體、辣根酶標記山羊抗鼠IgG抗體購自北京中杉金橋生物科技有限公司。

1.3 其他試劑

CISH siRNA購自廣州市銳博生物科技有限公司，CISH過表達質粒、陰性空載質粒購自上海吉凱基因科技有限公司，ELISA試劑盒購自欣博盛生物科技有限公司，Lipofectamine 2000 Reagent購自美國Life Technologies公司。

1.4 實驗方法

1.4.1 實驗分組 實驗組分為實驗組1(轉染CISH siRNA組)和實驗組2(轉染CISH過表達質粒組)；對照組分為轉染空質粒的陰性對照組和未轉染任何物質的空白對照組。

1.4.2 細胞培養 LO2正常人肝細胞由“四川大學生物治療國家重點實驗室”惠贈。用含10%胎牛血清的RPIM 1640培養基培養，每隔2～3 d傳代1次。

1.4.3 肝細胞模型構建 肝細胞LO2傳代后用含10%胎牛血清的RPIM 1640培養基培養2 d，胰酶消化細胞，用不含血清的RPIM 1640培養基重懸細胞后，按1.0×105個細胞/孔鋪入6孔板中，細胞融合度達50%～70%時，實驗組按Lipofectamine 2000 Reagent操作說明書分別進行CISH siRNA和CISH 過表達質粒轉染，空白對照組只替換為不含血清的RPIM 1640培養基，陰性對照組轉染空載質粒，培養6 h后更換成新鮮含10%胎牛血清的1640培養基繼續培養，從而構建肝細胞CISH基因上、下調表達模型。

1.4.4 RT-PCR測定 CISH siRNA和CISH 過表達質粒轉染肝細胞LO2，24 h后使用美國Promega公司的Eastep Super總RNA提取試劑盒提取肝細胞LO2的總RNA，反轉錄合成cDNA。按YBR Slect Master Mix說明書進行RT-PCR反應，檢測CISH基因在 mRNA水平的變化。

1.4.5 Western Blot法測定 CISH siRNA和CISH 過表達質粒轉染肝細胞LO2，48 h后使用高效RIPA裂解細胞提取總蛋白，Western Blot法檢測CISH基因在蛋白水平的變化。

1.4.6 ELISA法測定 CISH siRNA和CISH 過表達質粒轉染肝細胞LO2，48 h后收集上清按ELISA試劑盒說明書檢測炎癥因子TNF-α和IL-1β的水平。

1.5 統計學方法

2 結果

2.1 正常肝細胞LO2中CISH基因的表達

將LO2細胞用含10%胎牛血清的RPIM 1640培養基培養，待細胞融合度達到90%時用高效RIPA裂解細胞提取總蛋白，BCA法測得蛋白濃度后做Western Blot檢測。結果顯示，正常肝細胞LO2中有CISH基因的表達(圖1)。

圖1 正常肝細胞LO2中CISH基因的表達

2.2 CISH siRNA轉染肝細胞LO2后CISH基因在mRNA水平的表達變化

用無血清培養液將CISH siRNA(#1)利用Lipofectamine 2000 Reagent轉染進LO2細胞，6 h后更換成新鮮含10%胎牛血清的RPIM 1640培養基繼續培養，24 h后提取總RNA，反轉錄成cDNA，進行熒光定量PCR分析，結果見圖2A。結果顯示，實驗組1的CISH基因相對表達量低于空白對照組，差異具有統計學意義(t=2.851，P=0.046)(圖2B)。

2.3 CISH siRNA轉染肝細胞LO2后CISH基因在蛋白水平的表達變化

用無血清培養液將CISH siRNA(#1)利用Lipofectamine 2000 Reagent轉染進LO2細胞，6 h后更換成新鮮含10%胎牛血清的RPIM 1640培養基繼續培養，48 h后用高效RIPA裂解細胞提取總蛋白，BCA法測得蛋白濃度后做Western Blot檢測。結果顯示，實驗組1的CISH蛋白表達量明顯低于空白對照組(圖3A)，灰度值分析得到相同的結果(圖3B)。

圖3 Western Blot檢測肝細胞LO2中CISH基因下調后蛋白水平的表達變化

2.4 CISH過表達質粒轉染肝細胞LO2后CISH基因在mRNA水平的表達變化

用無血清培養液將CISH 過表達質粒和陰性空載質粒利用Lipofectamine 2000 Reagent轉染進LO2細胞，6 h后更換成新鮮含10%胎牛血清的RPIM 1640培養基繼續培養，12 h時轉染效率達90%以上(圖4A)，24 h后提取總RNA，反轉錄成cDNA，進行熒光定量PCR分析。結果顯示，實驗組2的CISH相對表達量高于空白對照組和陰性對照組(F=8.175，P=0.009)(表1)。

表1 熒光定量PCR檢測肝細胞LO2中CISH基因上調后CISH相對表達量的表達變化

2.5 CISH過表達質粒轉染肝細胞LO2中CISH基因在蛋白水平的表達

用無血清培養液將CISH 過表達質粒和陰性空載質粒利用Lipofectamine 2000 Reagent轉染進LO2細胞，6 h后更換成新鮮含10%胎牛血清的RPIM 1640培養基繼續培養，12 h轉染效率達90%以上(圖4A)，48 h后用高效RIPA裂解細胞提取總蛋白，BCA法測得蛋白濃度后做Western Blot檢測。結果顯示，實驗組2的CISH表達量明顯高于空白對照組和陰性對照組(圖4B)，灰度值分析得到相同的結果(圖4C)。

圖4 Western Blot檢測肝細胞LO2中CISH基因上調后蛋白水平的表達變化

2.6 ELISA檢測肝細胞LO2中CISH基因上、下調后肝細胞分泌的炎性因子的改變

用無血清培養液將CISH 過表達質粒和CISH siRNA(#1)利用Lipofectamine 2000 Reagent轉染進LO2細胞，6 h后更換成新鮮含10%胎牛血清的RPIM 1640培養基繼續培養，48 h后ELISA檢測上清中TNF-α和IL-1β水平，結果如下：實驗組1、2和空白對照組的上清中TNF-α水平差異具有統計學意義(F=88.70，P<0.000)(圖5A)，其中，實驗組1與空白對照組(t=6.667，P=0.003)、實驗組2與空白對照組(t=4.819，P=0.008)及實驗組1與實驗組2(t=22.980，P<0.000)的上清中TNF-α水平差異也具有統計學意義。實驗組1、2和空白對照組的上清中IL-1β水平差異同樣具有統計學意義(F=10.88，P=0.010)，其中，實驗組1與對照組(t=3.454，P=0.026)、實驗組2與空白對照組(t=7.490，P=0.002)及實驗組1與實驗組2(t=5.47，P=0.0054)的上清中IL-1β水平差異也具有統計學意義(圖5B)。

圖5 ELISA檢測肝細胞LO2中CISH基因上、下調后其上清中炎癥因子的變化

3 討論

CISH基因作為SOCS蛋白家族中最早發現的成員，主要調控細胞因子信號，尤其是IL-2介導的信號通路。與SOCS蛋白家族其他成員不同，CISH可以通過結合細胞因子受體的酪氨酸殘基，從而占據STAT5的結合位點。因此，CISH可以抑制STAT5的激活，進而抑制其下游的信號分子[8]。有研究[5,9]表明，過敏性哮喘及小兒肺結核患者中，CISH能負性調控STAT5信號從而影響疾病的進展。

本研究中，WB和RT -PCR的實驗結果都證實人類LO2肝細胞中有CISH基因的表達。細胞實驗中，將CISH 過表達質粒和CISH siRNA轉染進肝細胞LO2中構建CISH基因上、下調肝細胞模型，在mRNA和蛋白水平都證實實驗組1的CISH表達明顯低于空白對照組；相反，實驗組2的CISH表達卻明顯高于空白對照組及陰性對照組，差異具有統計學意義。研究結果表明，筆者成功構建了CISH基因上、下調的肝細胞模型。

本研究使用CISH 過表達質粒和CISH siRNA重新轉染肝細胞LO2，48 h后收取細胞上清做ELISA實驗，觀察肝細胞中CISH基因表達水平發生變化后，對肝細胞分泌的炎性因子的影響。結果表明，實驗組1中的肝細胞分泌的促炎因子TNF-α和IL-1β的水平明顯高于空白對照組；相反，實驗組2中的肝細胞分泌的促炎因子TNF-α和IL-1β的水平卻明顯低于空白對照組。Lewis等[10]研究表明，在造血系統中，CISH可以調節JAK2/STAT5信號通路的活性，在過敏性氣道感染疾病中，CISH也可以調節STAT3/STAT5/STAT6的活性[11]。Palmer等[12]研究表明，CISH/STAT5還與腫瘤耐受相關。據此推測，在肝細胞中，CISH基因也可能通過JAK2/STAT5信號通路調控炎性因子的分泌進而調節肝細胞功能表型，本課題組下一步將以此作為研究重點。

綜上所述，本研究結果表明，肝細胞中有CISH基因的表達且CISH基因能負性調節肝細胞促炎因子TNF-α、IL-1β的分泌。

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A Study on the Gene Expression of Cytokine-inducible SH2-containing Protein (CISH) in Hepatocyte LO2 and the Regulation of Its Inflammatory Factors

LiLamei1,YangXuemei2,WuYangping3,ChenJie2,HuZhangyong2△.

1.SchoolofBasicMedicalSciences,ChengduMedicalCollege,Chengdu610083,China; 2.TheFirstAffiliatedHospital,ChengduMedicalCollege,Chengdu610500,China; 3.StateKeyLaboratoryofBiotherapy,SichuanUniversity,Chengdu610041,China

Objective To establish the hepatocyte models up-regulated and down-regulated by cytokine-inducible SH2-containing protein (CISH) gene and investigate the expression of CISH gene in the normal hepatocyte and the regulation of its inflammatory factors. Methods The experiment groups consisted of the groupinfected by CISH siRNA and that infected by CISH over-expression plasmid; while the control groups involved the negative group infected by empty plasmid and the uninfected blank group. The hepatocyte LO2 was transfected with CISH over-expression plasmid and CISH siRNA by Lipo 2000to establish the hepatocyte models up-regulated and down-regulated by CISH gene. Real-time Fluorescence Quantitative PCR and Western Blotting were used to detect the level changes of CISH mRNA and protein and Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) was adopted to detect the effect of the CISH gene expression change on the levels of the inflammatory factors TNF-α and IL-1β in hepatocyte LO2.Results According to the results of Real-time Fluorescence Quantitative PCR and Western Blotting, the cells infected by CISH over-expression plasmid up-regulated the expression of CISH gene and those infected by CISH siRNA down-regulated the expression of CISH gene when compared with the uninfected hepatocyte LO2.The results of ELISA indicated that the levels of the inflammatory factors TNF-α and IL-1β secreted by the cells infected by CISH over-expression plasmid decreased and those secreted by the cells infected by CISH siRNA increased when compared with the uninfected hepatocyte LO2.Conclusion Thehepatocyte LO2 cell lines up-regulated and down-regulated by CISH gene are established successfully, and the changes of the CISH gene expression can affect the secretion of inflammatory factors in hepatocyte LO2 cell lines.

Chronic hepatitis B; Hepatocyte LO2; CISH gene; Inflammatory factor

http://www.cnki.net/kcms/detail/51.1705.R.20170221.2247.004.html

10.3969/j.issn.1674-2257.2017.01.011

四川省科技廳資助項目(No:2016JY0207)

R363.1

A

△通信作者：胡章勇，E-mail:chendu47@163.com