999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

2 種草莓成熟過程中果實特征品質指標的變化

2017-03-27 06:50:37嚴嘉瑋路洪艷羅自生李棟棟班兆軍
食品科學 2017年4期

嚴嘉瑋,路洪艷,李 莉,*,羅自生,李棟棟,宋 鈞,班兆軍

(1.浙江大學生物系統工程與食品科學學院,浙江 杭州 310058;2.加拿大農業部,新斯科舍 B4J 1J5,加拿大;3.浙江科技學院生物與化學工程學院/輕工學院,浙江 杭州 310023)

2 種草莓成熟過程中果實特征品質指標的變化

嚴嘉瑋1,路洪艷1,李 莉1,*,羅自生1,李棟棟1,宋 鈞2,班兆軍3

(1.浙江大學生物系統工程與食品科學學院,浙江 杭州 310058;2.加拿大農業部,新斯科舍 B4J 1J5,加拿大;3.浙江科技學院生物與化學工程學院/輕工學院,浙江 杭州 310023)

研究‘米拉’(‘Mira’)和‘哈尼’(‘Honeoye’)2 個草莓品種的白色未熟期、粉色轉熟期和紅色成熟期3 個階段成熟過程中與風味、生理功能活性相關的特征品質指標變化。結果表明隨著草莓成熟果實中總可溶性固形物含量、芳香性揮發成分、花色苷成分積累量有顯著性上升,而總酸、總酚、總黃酮含量和抗氧化能力均有所下降。相關性和主成分分析結果表明,草莓成熟過程中總酚、總黃酮、總可溶性固形物和總酸含量均與總抗氧化-亞鐵還原能力(ferric reducing-antioxidant power,FRAP)以及氧自由基吸收能力(oxygen radical absorption capacity,ORAC)的變化之間存在高相關性(r為0.859 1~0.994 7),而總花色苷含量與FRAP和ORAC之間的相關性僅為0.315 0和0.385 3。同時得出草莓果實的成熟度與芳香性揮發成分和花色苷組分積累量呈正相關性。

草莓;成熟;揮發性物質;花色苷;特征品質

草莓(Fragaria×ananassa Duch.)是一種薔薇科草莓屬多年生草本、常綠莓果植物,含有豐富的維生素、礦物質、纖維素和多酚類化合物[1-2],因其豐富可口的風味特性和其獨特的營養生理學功能而廣泛受到世界各地人們的歡迎[3],因此草莓也享有“水果皇后”、“神奇之果”,是世界七大水果之一[4-5]。目前的研究已證明草莓的抗氧化能力是蘋果、梨、番茄和柑橘等常食用的園藝產品的2~11 倍[6-7],而食用草莓能提升血液、紅細胞和單核細胞的抗氧化能力[8],能有效降低心血管慢性疾病[9]和癌癥的死亡風險[10]。

與草莓風味相關的特征品質主要是草莓的總可溶性固形物(total soluble solid,TSS)、總酸以及草莓中揮發性香味物質[11];草莓的營養生理學功能主要與花色苷、總黃酮和總酚類等生理活性指標的含量密切相關[12]。而伴隨著草莓成熟過程中的上述生理活性物質含量不斷發生變化,其特征品質也不斷發生變化[13-14]。

本實驗選取‘米拉’(‘Mira’)和‘哈尼’(‘Honeoye’)2 種草莓的白色未熟期、粉色轉熟期和紅色成熟期3 個階段的果實,分別測定其TSS、可滴定酸(titratable acid,TA)和芳香性揮發成分含量,果實中總黃酮含量(total flavonoid content,TFC)、總酚含量(total phenolic content,TPC)和花色苷含量以及總抗氧化活性,旨在監測2 種草莓成熟過程中與風味、生理功能活性相關的特征品質變化。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

‘米拉’和‘哈尼’草莓采自浙江省杭州市草莓種植園(東經120.13°、北緯30.27°);乙腈為色譜純,其余試劑均為國產分析純。

1.2 儀器與設備

50/30 μm二乙基苯/碳分子篩/聚二甲基硅氧烷(divinylbenzene/carboxen/polydimethylsiloxane(DVB/ CAR/PDMS)萃取頭 美國Supelco公司;折光儀美國ATAGO公司;848 Titrino Plus自動滴定儀(配801攪拌器) 瑞士萬通公司;4000氣相色譜-質譜(gas chromatography-mass spectroscopy,GC-MS)聯用儀(配CombiPAL自動進樣) 美國Varian公司;1100系列高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)儀(配光電二極管陣列檢測器) 美國安捷倫公司;紫外-可見全光譜酶標儀 美國伯騰儀器有限公司。

1.3 方法

1.3.1 TSS和TA含量的測定

樣品預處理:將搗碎后的草莓果實用紗布過濾,得到果汁待測。

TSS含量測定:用折光儀直接測定果汁,結果以°Brix表示;TA含量測定:取果汁4 g用20 mL蒸餾水稀釋后用自動電位滴定儀測定,用0.5 mol/L NaOH溶液滴定至pH 8.5[15]為終點,結果以g/100 g檸檬酸表示。

1.3.2 芳香物質的測定

采用固相微萃取-GC法進行測定。

考慮到提取條件對測定結果有一定影響,因而分別對草莓凍干粉與提取液(飽和食鹽水)體積分數、提取時間和提取溫度等參數進行優化。采用‘哈尼’草莓全熟果實為試材,分別用質量濃度1、10、50 g/100 mL的提取液,提取時間為5、15、30、60 min,以及提取溫度為30 ℃和60 ℃參數條件下對草莓果實的芳香物質成分進行分析,得出最佳提取參數[16]。

以得出的最佳提取參數進行實驗,取一定量的不同草莓果實樣品凍干粉[15]與等量飽和食鹽水混合,置于20 mL的樣品瓶內,用磁力攪拌器攪拌1 min使充分混合。同時向樣品瓶中加入100 μL 5.24 μg/mL 2-辛酮溶液作為內標物校正柱溫、流動相等條件造成的保留時間漂移,以聚四氟乙烯/硅隔墊加蓋封好;于5 min內將萃取溫度上升到最佳溫度,并用50/30 μm DVB/CAR/PDMS萃取頭頂空萃取一定時間后,于1177注射器解吸5 min后,轉入GC進樣。

GC條件:VF-Xms色譜柱(30 m×0.32 mm,1.00 μm);分流比1∶5;進樣速率2.5 mL/min;進樣口溫度250 ℃;升溫程序:起始溫度35 ℃保持5 min,以10 ℃/min升溫至240 ℃,保持4.5 min。

MS條件:電子電離源;質量掃描范圍為35~400 u;發射電流25 μA;掃描時間0.60 s(4 μscans);目標計數20 000 個;傳輸線溫度170 ℃;離子阱溫度100 ℃;歧管溫度50 ℃;離子源溫度180 ℃。

之后將樣品GC-MS分析所得的質譜圖與各標樣質譜圖進行比對分析,采用NIST進行檢索確定揮發性香氣成分,部分芳香物質含量用標準化峰面積表示,各揮發性成分總含量以μg/g(濕基)計。

1.3.3 花色苷的提取和測定

用高效組織勻漿機充分混合7.5 g不同草莓果實樣品的凍干粉與15 mL色苷提取液甲醇-丙酮-水-甲酸(40∶40∶20∶0.1,V/V)溶液2 min[4],用9 cm玻璃纖維過濾膜過濾,并用提取液定容至25 mL。樣品提取混合物進行冷凍干燥至恒質量,復溶至5%乙腈溶液(用三氟乙酸(trifluoroacetic acid,TFA)調節pH值至1.35),充分溶解并于20 000 r/min離心15 min后,取過完濾膜的上清液即為HPLC供試樣品[17-18]。

HPLC條件:Zorbax SB-C18色譜柱(2.1 mm× 50 mm,1.8 μm);進樣量20 μL;流動相:A為水(TFA調pH 1.35),流動相B為乙腈(TFA調pH 1.35);起始條件:95%流動相A和5%流動相B;梯度洗脫條件:0~12.5 min,5%~10% B,12.5~43.75 min,10%~20% B,43.75~45 min,20%~100% B,45~50 min,100% B,50~55 min,100%~5% B;流速0.4 mL/min;檢測波長280 nm和520 nm。

測定后獲得HPLC譜圖中各色譜峰的保留時間和峰面積數值。根據各花色苷標準品的回歸方程,計算各供試樣品中主要花色苷組分的含量。其中花色苷主要成分為天竺葵素-3-葡糖苷(pelargonidin-3-glucoside,P3G)、天竺葵素-3-蕓香糖苷(pelargonidin-3-rutinoside,P3R)和天竺葵素-3-丙二酰葡糖苷(pelargonidin-3-glucosidemalonate,P3GM)均以每100 g鮮質量中P3G當量(P3G equivalent,P3GE)的毫克量計,即mg P3GE/100 g;矢車菊素-3-葡糖苷(cyanidin-3-glucoside,C3G)和矢車菊素-3-丙二酰葡糖苷(cyanidin-3-glucoside-malonate,C3GM)均以經草莓樣品干質量中C3G與草莓含水量比例計算得到每100 g鮮質量中C3G當量(C3G equivalent,C3GE)的毫克量計,即mg C3GE/100 g。而總花青素含量(total anthocyanin content,TAC)分別以C3GE和P3GE表示。

1.3.4 TPC的測定

以10 mL甲醇-水-乙酸(80∶19∶1,V/V)提取液溶解0.5 g凍干至恒質量的草莓果實樣品,置于15 mL樣品瓶中,混勻后超聲提取5 min,在振蕩提取1 h后,于3 000 r/min離心10 min;取上清液經0.45 μm濾膜過濾,得到的提取液置于-20 ℃貯存,備用。

TPC使用改進的斐林試劑法測定[5]。取0.2 mL提取液加入1 mL斐林試劑混勻后與室溫條件下反應30 min,之后加入0.8 mL 7.5%碳酸鈉溶液混合;取其混合物200 μL加入96 孔反應板。利用紫外-可見全光譜酶標儀測定在波長765 nm處吸光度,以80%甲醇作為空白對照,以質量濃度為20~100 μg/mL沒食子酸按上述方法做標準曲線,得出回歸方程,將樣品吸光度代入方程計算TPC,TPC表示為每克干質量中沒食子酸當量(gallic acid equivalent,GAE)的毫克量計,即mg GAE/g[19]。

1.3.5 TFC的測定

TFC采用比色法測定。以4 mL蒸餾水稀釋1 mL提取液,之后立刻加入0.3 mL質量濃度為5 g/100 mL NaNO2溶液,混勻靜置5 min后加入0.6 mL 10 g/100 mL AlCl3溶液,混勻靜置6 min后加入2 mL 1 mol/L NaOH溶液;之后加入2.4 mL蒸餾水稀釋并充分混合。取其混合物200 μL加入96 孔反應板,利用紫外-可見全光譜酶標儀于波長510 nm處測定吸光度,以蒸餾水作為空白對照,以不同質量濃度的兒茶素按上述方法做標準曲線,得出回歸方程,將樣品吸光度代入計算TFC。結果以每克干質量中兒茶素當量(catechin equivalent,CE)的毫克量計,即mg CE/g[19]。

1.3.6 總抗氧化能力的測定

總抗氧化-亞鐵還原能力(ferric reducing-antioxidant power,FRAP)測定利用酸性條件下水溶性抗氧化物(親水性抗氧化劑)可以還原Fe3+-三吡啶基三嗪(tripyridyltriazine,TPTZ)產生藍色的Fe2+-TPTZ。取10 μL標樣或實驗樣品提取液與300 μL Fe3+-TPTZ工作液混合后加入到96 孔反應板中,于37 ℃溫度條件下反應1 h后,利用紫外-可見全光譜酶標儀測定樣品混合液于波長593 nm處吸光度。總抗氧化能力以FRAP值表示,以500 mmol/L L-抗壞血酸作為基準,以每克干質量中抗壞血酸當量(ascorbic acid equivalent,AAE)的毫克量計,即mg AAE/g[20]。

1.3.7 氧自由基吸收能力(oxygen radical absorption capacity,ORAC)的測定

ORAC測定是利用熒光素在有自由基作用條件下被氧化,熒光強度逐漸減弱;當有抗氧化劑存在時,熒光強度檢索被抑制,且抗氧化劑對熒光素熒光強度的保護能力與其濃度成正比原理來進行測定,其中熒光素作為氧化底物,偶氮二異丁脒鹽酸鹽(2,2’-azobis-2-methylpropionamidine-dihydrochloride,AAPH)為自由基產生劑,以水溶性VE(Trolox)作為標準,用來定量樣品的抗氧化能力[21-22]。

測定試劑均使用74 mmol/L磷酸緩沖液(pH 7.4)配制。取25 μL樣品提取液用80%甲醇溶液稀釋50 倍,加入到96 孔反應板中并加入150 μL 8.68×10-5mmol/L熒光素工作液與之混合,混合物在37 ℃溫度條件下反應30 min。反應以加入25 μL 153 mmol/L AAPH的時刻為開始,最大強度振蕩10 s。每隔1 min記錄熒光值,所設激發波長和發射波長分別為485 nm和528 nm。同時實驗以水作空白對照,以濃度為3.125~100 μmol/L的Trolox做線性標準曲線。最終結果以樣品和空白對照之間的熒光衰退曲線下面積(area under the fl uorescence decay curve,AUC)大小的差異來計算,表示為每克干質量中Trolox當量(trolox equivalent,TE)的微摩爾數,即μmol TE/g。按下式計算AUC:

式中:f4代表第4個測定點時的相對熒光強度;fi代表第i個測定點時的相對熒光強度;CT為相鄰2 個測定點之間的間隔。

1.4 數據統計

采用GenStat(15thedition)軟件對實驗進行設計,每個指標的每個測量點來自于3 個生物性重復和3 個技術重復的平均值,結合GenStat和Microsoft?Excel軟件進行數據統計和分析。測定指標均重復3 次。采用Sigmaplot 12.0軟件作圖,圖中數據均為平均值,誤差以平均值的標準誤差表示。采用SPSS 11.5軟件對所有數據在P值為0.05水平上進行Duncan多重比較差異顯著性分析,并對芳香物質、TAC、TPC、TFC、TSS和TA含量以及抗氧化能力等進行主成分分析(principal component analysis,PCA),相關性分析采用Pearson相關分析。

2 結果與分析

2.1 草莓成熟過程中TSS和TA含量的變化

圖1 草莓成熟過程中TSS(A)和TA(B)含量的變化Fig.1 Changes in TSS (A) and TA (B) contents in strawberry fruits during ripening

如圖1所示,草莓果實在不同成熟階段,TSS和TA含量都有顯著性的變化。TSS含量在‘米拉’和‘哈尼’2 種草莓中都隨著果實由白色未熟期到紅色成熟期而逐步上升。而TA含量在2 種草莓的粉色轉熟期達到最高,到紅色成熟期時有明顯下降,甚至低于白色未熟期。此結果與目前在其他草莓品種中測定結果相一致[23-24]。從總體實驗結果來看,‘米拉’的TSS和TA含量較‘哈尼’高。

2.2 草莓芳香揮發性組分分析

如圖2所示,當提取液質量濃度50 g/100 mL、提取時間60 min、提取溫度60 ℃時,大多數所測定的特征芳香組分提取率最高。因而選擇草莓果實樣品香氣成分的最佳提取參數為:提取液質量濃度50 g/100 mL、提取時間60 min、提取溫度60 ℃。

圖2 不同提取參數條件下‘哈尼’草莓紅色果實的部分芳香物質Fig.2 Volatile contents extracted under different conditions from the red part of ‘Honeoye’ strawberry fruits

圖3 草莓成熟過程中各揮發性成分含量的變化Fig.3 Changes in the contents of total volatile compounds in strawberry fruits during ripening

選取上述最佳參數進行實驗,如圖3所示。2 種草莓果實在成熟過程中各種芳香揮發性組分都有顯著性的變化,且總揮發性組分含量都隨著果實由白色未熟期到紅色成熟期逐步上升,其中當草莓由粉色轉熟期到紅色成熟期的過程中,總揮發性組分含量有一個顯著性上升,在‘米拉’草莓的紅色成熟期總揮發性組分含量達到轉熟期含量的2 倍,在‘哈尼’中紅色成熟期總揮發性組分含量甚至達到轉熟期含量的3 倍。在芳香揮發性物質組分中,酯類物質占絕大多數[25],紅色成熟期總酯類含量上升至白色未熟期的8 倍;總萜烯類物質、總酸類物質和其他類物質總含量在白色未熟期和粉色轉熟期時都較低,而在紅色成熟期含量達到最高,可見草莓成熟過程中萜烯類、酸類等揮發性組分主要由粉色轉熟期到紅色成熟期之間產生;與之不同的是總醇類物質,其在‘哈尼’在粉色轉熟期時最低,在紅色成熟期時有所上升但仍低于白色未熟期,在‘米拉’中是含量是逐步遞減的。

2.3 草莓成熟過程中的花色苷組分分析

圖4 草莓成熟過程中花色苷組分含量的變化Fig.4 Changes in anthocyanin contents in strawberry frui during ripening ts

如圖4所示,隨著草莓的成熟,果實含有花色苷的種類和含量均有顯著性上升。2 種草莓在白色未熟期各種類的花色苷含量都很低,而到粉色轉熟期各類花色苷含量有一定上升,而到紅色成熟期各類花色苷含量均有極大幅度的上升,上升比例超過草莓由白轉粉過程中花色苷的比例。可見草莓果實中花色苷的大量產生處于粉色轉熟期到紅色成熟期過程中,此實驗結果與草莓表觀顏色變化過程相一致[4,19]。同時可以看到在紅色成熟期‘哈尼’的P3G、C3G含量顯著高于‘米拉’,而P3R含量與‘米拉’相當,沒有顯著性差異,P3GM和C3GM的含量低于‘米拉’。

2.4 草莓成熟的生物活性成分和抗氧化能力

圖5 草莓成熟過程中生物活性成分與抗氧化能力的變化Fig.5 Changes in the contents of biologically active components and antioxidant capacity during strawberry ripening

如圖5所示,TAC在果實的不同成熟階段都具有顯著性差異,從白色未熟期到紅色成熟期草莓TAC含量顯著上升,此結果與2.3節結果中花色苷組分的變化結果相一致,‘哈尼’TAC顯著高于‘米拉’。

此外,2 種草莓中的TFC在果實成熟的過程中均顯著性下降,這與文獻[26-29]報道的其他品種草莓情況相類似,而TPC略有下降但沒有顯著性差別,可能的原因是草莓中酚類物質組成較復雜,包含花青素、原花青素、類黃酮和兒茶素等[28-29];而在草莓成熟過程的花色苷類明顯上升、黃酮類顯著下降,導致總酚類物質變化并不明顯。而在紅色成熟期‘哈尼’中TFC和TPC均略高于‘米拉’。

抗氧化能力方面,以FRAP指標來看,隨著草莓成熟其提取物的抗氧化能力有顯著的下降,與目前對草莓成熟期中抗氧化性研究結果相一致[26-27,30],同時‘哈尼’的抗氧化性能顯著高于‘米拉’。以ORAC指標來看,2 種草莓都是在粉色轉熟期的抗氧化效應最低,在‘米拉’中紅色成熟期抗氧化效應較之轉熟期有顯著上升但仍低于白色未熟期,而在‘哈尼’中抗氧化效應沒有顯著性變化。以在紅色成熟期的FRAP和ORAC指標綜合來看,‘哈尼’的抗氧化性能高于‘米拉’,成熟期的草莓抗氧化能力低于未熟期,可能原因是具有高抗氧化能力的咖啡酸等物質含量的降低。FRAP和ORAC抗氧化性能在草莓成熟過程中的變化趨勢并不一致,可能是FRAP和ORAC所測定抗氧化原理不同,在草莓成熟過程中其內在組分的變化導致其對自由基和鐵離子的還原性能變化趨勢有所差異。

2.5 相關性分析和PCA

表1 草莓成熟過程中特征品質參數之間的相關性分析Table1 Correlation analysis among characteristic quality parameters in strawberry fruits during ripening

從表1可以看出,在草莓成熟過程中上述的特征品質參數之間均呈正相關性,其中TAC以及TA與其他特征品質參數無顯著相關性;TPC與TFC、TSS以及抗氧化能力指標有極顯著正相關性;TFC與TSS有顯著正相關性,與抗氧化能力指標有極顯著正相關性;抗氧化指標FRAP與ORAC之間呈極顯著正相關性,同時都與TSS有極顯著正相關性。

圖6 草莓成熟過程中香氣成分以及其他特征品質參數之間的PCAFig.6 Principal component analysis for correlations of volatile compounds and other characteristic quality parameters in strawberry fruits during ripening

如圖6所示,‘哈尼’和‘米拉’的白色未熟期與總醇類呈正相關,粉色轉熟期與總揮發性化合物、萜烯類和其他類揮發性物質的積累量呈負相關,紅色成熟期與總揮發性化合物、總萜烯類、總酸類、總酯類等積累量呈正相關。如圖6B所示,‘哈尼’和‘米拉’草莓的白色未熟期僅與TA具有正相關性,紅色成熟期與C3G、P3G、P3R、C3GM、P3GM 之類花色苷和TSS積累量呈正相關,而粉色轉熟期與各項成分的積累量的相關性不明顯,各項成分相關性與上述表1相關性分析結果一致,PCA結果進一步驗證了草莓果實的成熟度與芳香性揮發成分和花色苷組分積累量的正相關性,并證明了芳香物質和花色苷成分合成與果實成熟之間的正相關性。

3 結 論

隨著‘哈尼’和‘米拉’草莓由白色未熟期至紅色成熟期的成熟過程,其果實中的TSS、TA、芳香性揮發成分、花色苷組分、TPC、TFC以及抗氧化能力都有顯著性的變化,其中TSS、芳香性揮發成分、花色苷成分積累量有顯著性上升,可見在紅色全熟期時可能是一些感官風味特征性品質最佳的階段,而TA、TPC、TFC和抗氧化能力都有所下降。而從相關性和PCA中得出在成熟過程中2 種草莓果實的TPC、TFC、TSS、TA含量均與FRAP和ORAC的變化之間存在顯著的高相關性(r為0.859 1~0.994 7),而TAC與FRAP和ORAC之間的相關性僅為0.315 0和0.385 3,同時得出草莓果實的成熟度與芳香性揮發成分和花色苷組分積累量呈正相關性,證明芳香物質和花色苷成分合成與果實成熟之間呈正相關性。以此可見2 種草莓在成熟過程中各項特征品質都有顯著變化,可在一定程度上反映草莓成熟過程中新陳代謝的變化,可進一步應用到草莓的代謝研究中。

[1] 阮金蘭, 陳靜波, 趙曉亞, 等. 草莓的化學成分研究[J]. 中國中藥雜志, 2001, 26(9): 610-612. DOI:10.3321/j.issn:1001-5302.2001.09.013.

[2] 程然, 生吉萍. 草莓多酚類植物化學物研究進展[J]. 食品安全質量檢測學報, 2015, 7(2): 575-584.

[3] 張豫超, 苗立祥, 楊肖芳, 等. 草莓不同成熟度果實品質變化研究[C]//中國園藝學會草莓研究進展(Ⅵ). 北京: 中國園藝學會草莓分會, 2015: 123-128.

[4] CRECENTE-CAMPO J, NUNES-DAMACENO M, ROMERORODRíGUEZ M A, et al. Color, anthocyanin pigment, ascorbic acid and total phenolic compound determination in organic versus conventional strawberries (Fragaria × ananassa, Duch. cv Selva)[J]. Journal of Food Composition and Analysis, 2012, 28(1): 23-30. DOI:10.1016/j.jfca.2012.07.004.

[5] CHANDLER C K, STAPLETON S C. Transplant source affects fruiting performance and pests of ‘Sweet Charlie’ strawberry in Florida[J]. Horttechnology, 2001, 11(1): 61-64.

[6] GUTHRIE F, PREECE W H, FOSTE R, et al. The potential impact of strawberry on human health[J]. Natural Product Research, 2013, 27(4/5): 448-455. DOI:10.1080/14786419.2012.706294.

[7] GIAMPIERI F, TULIPANI S, ALVAREZ-SUAREZ J M, et al. The strawberry: composition, nutritional quality, and impact on human health[J]. Nutrition, 2012, 28(1): 9-19. DOI:10.1016/j.nut.2011.08.009.

[8] TULIPANI S, ARMENI T, GIAMPIERI F, et al. Strawberry intake increases blood fluid, erythrocyte and mononuclear cell defenses against oxidative challenge[J]. Food Chemistry, 2014, 156(2): 87-93. DOI:10.1016/j.foodchem.2014.01.098.

[9] GIAMPIERI F, ALVAREZSUAREZ J M, BATTINO M. Strawberry and human health: effects beyond antioxidant activity[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2014, 62(18): 3867-3876. DOI:10.1021/jf405455n.

[10] 王志巧. 草莓酚類成分的抗腫瘤及抗氧化作用研究[D]. 長春: 吉林大學, 2015.

[11] 羅婭, 王小蓉, 張勇, 等. 不同提取條件對草莓果實抗氧化物質和抗氧化活性的影響[J]. 食品科學, 2011, 32(14): 108-112.

[12] MAZUR S P, NES A, WOLD A B, et al. Effects of ripeness and cultivar on chemical composition of strawberry (Fragaria × ananassa, Duch.) fruits and their suitability for jam production as a stable product at different storage temperatures[J]. Food Chemistry, 2014, 146(3): 412-422. DOI:10.1016/j.foodchem.2013.09.086.

[13] DIAMANTI J, CAPOCASA F, DENOYES B, et al. Standardized method for evaluation of strawberry (Fragaria × ananassa, Duch.) germplasm collections as a genetic resource for fruit nutritional compounds[J]. Journal of Food Composition and Analysis, 2012, 28(2): 170-178. DOI:10.1016/j.jfca.2012.07.007.

[14] LI L, SONG J, KALT W, et al. Quantitative proteomic investigation employing stable isotope labeling by peptide dimethylation on proteins of strawberry fruit at different ripening stages[J]. Journal of Proteomics, 2013, 94(20): 219-239. DOI:10.1016/j.jprot.2013.09.004.

[15] LI L, LUO Z, HUANG X, et al. Label-free quantitative proteomics to investigate strawberry fruit proteome changes under controlled atmosphere and low temperature storage[J]. Journal of Proteomics 2015, 120: 44-57. DOI:10.1016/j.jprot.2015.02.016.

[16] NIU Y, HARDY G, AGARWAL M, et al. Characterization of volatiles Tribolium castaneum (H.) in fl our using solid phase microextractiongas chromatography mass spectrometry (SPME-GCMS)[J]. Food Science and Human Wellness, 2015, 5(1): 24-29. DOI:10.1016/ j.fshw.2015.11.002.

[17] 羅赟, 陳宗玲, 宋衛堂, 等. 草莓果實花色苷成分組成鑒定及分析[J]. 中國農業大學學報, 2014, 19(5): 86-94. DOI:10.11841/ j.issn.1007-4333.2014.05.12.

[18] 榮寧寧, 苗立祥, 楊肖芳, 等. 反相高效液相色譜法測定草莓天竺葵素-3-O-葡萄糖苷的含量[J]. 浙江農業學報, 2014(3): 626-631. DOI:10.3969/j.issn.1004-1524.2014.03.16.

[19] VO?A S, ZLABUR J S, DOBRI?EVI? N, et al. Variation in the bioactive compound content at three ripening stages of strawberry fruit[J]. Molecules, 2014, 19(7): 10370-10385. DOI:10.3390/ molecules190710370.

[20] BENZIE I F F, STRAIN J J. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power”: the FRAP assay[J]. Analytical Biochemistry, 1996, 239(1): 70-76. DOI:10.1006/ abio.1996.0292.

[21] CAO G, PRIOR R L, CUTLER R G, et al. Effect of dietary restriction on serum antioxidant capacity in rats[J]. Archives of Gerontology and Geriatrics, 1997, 25(3): 245-253. DOI:10.1016/S0167-4943(97)00014-9.

[22] ATALA E, ASPéE A, SPEISKY H, et al. Antioxidant capacity of phenolic compounds in acidic medium: a pyrogallol red-based ORAC (oxygen radical absorbance capacity) assay[J]. Journal of Food Composition and Analysis, 2013, 32(2): 116-125. DOI:10.1016/ j.jfca.2013.09.007.

[23] 顧采琴, 朱冬雪. 草莓成熟過程中生理生化特性的變化[J]. 山地農業生物學報, 1998(6): 345-348.

[24] SEVERO J, TIECHER A, CHAVES F C, et al. Gene transcript accumulation associated with physiological and chemical changes during developmental stages of strawberry cv. Camarosa[J]. Food Chemistry, 2011, 126(3): 995-1000. DOI:10.1016/j.foodchem.2010. 11.107.

[25] DU X, PLOTTO A, BALDWIN E, et al. Evaluation of volatiles from two subtropical strawberry cultivars using GC-olfactometry, GC-MS odor activity values, and sensory analysis[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2011, 59(23): 12569-12577. DOI:10.1021/ jf2030924.

[26] PROTEGGENTE A R, PANNALA A S, PAGANGA G, et al. The antioxidant activity of regularly consumed fruit and vegetables ref l ects their phenolic and vitamin C composition[J]. Free Radical Research, 2009, 36(2): 217-233. DOI:10.1080/10715760290006484.

[27] LUO Y, TANG H R, WANG X R, et al. Antioxidant properties and involved antioxidant compounds of strawberry fruit at different maturity stages[J]. Journal of Food Agriculture and Environment, 2011, 9(1): 166-170.

[28] BUENDíA B, GIL M I, TUDELA J A, et al. HPLC-MS analysis of proanthocyanidin oligomers and other phenolics in 15 strawberry cultivars[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2010, 58(7): 3916-3926. DOI:10.1017/S0025315400044556.

[29] AABY K, MAZUR S, NES A, et al. Phenolic compounds in strawberry (Fragaria × ananassa, Duch.) fruits: composition in 27 cultivars and changes during ripening[J]. Food Chemistry, 2012, 132(1): 86-97. DOI:10.1016/j.foodchem.2011.10.037.

[30] PINELI L D L D O, MORETTI C L, SANTOS M S D, et al. Antioxidants and other chemical and physical characteristics of two strawberry cultivars at different ripeness stages[J]. Journal of Food Composition and Analysis, 2011, 24(1): 11-16. DOI:10.1016/ j.jfca.2010.05.004.

Variations in Quality Characteristics of Two Strawberry Cultivars during Fruit Ripening

YAN Jiawei1, LU Hongyan1, LI Li1,*, LUO Zisheng1, LI Dongdong1, SONG Jun2, BAN Zhaojun3
(1. College of Biosystems Engineering and Food Science, Zhejiang University, Hangzhou 310058, China; 2. Agriculture and Agri-Food Canada, Nova Scotia B4J 1J5, Canada; 3. School of Biological and Chemical Engineering/ School of Light Industry, Zhejiang University of Science and Technology, Hangzhou 310023, China)

In the present study, the variations in fruit quality characteristics related to the fl avor and physiological quality in two strawberry cultivars, ‘Mira’ and ‘Honeoye’, were investigated during three ripening stages. Results showed that total soluble solids (TSS), volatile aromatic components and anthocyanins accumulation signif i cantly increased, while total acid (TA), total phenolics and total fl avonoid contents as well as antioxidant capacity declined during strawberry ripening. The correlations between the quality traits were analyzed by principal component analysis. It was indicated that there were high correlations (r = 0.859 1–0.994 7) between the changes in total phenolics, fl avonoids, total soluble solid or titratable acid and antioxidant capacity (FRAP) as well as oxygen radical absorbance capacity (ORAC) during strawberry ripening, while the correlation coeff i cients between total anthocyanin and ferric reducing antioxidant power (FRAP) as well as ORAC were only 0.315 0 and 0.385 3, respectively. Furthermore, a positive correlation between the maturity of strawberry fruits and the accumulation of aromatic volatile components and anthocyanins was also observed.

strawberry; ripening; volatile compounds; anthocyanins; quality characteristics

10.7506/spkx1002-6630-201704021

TS255.1

A

1002-6630(2017)04-0125-08

嚴嘉瑋, 路洪艷, 李莉, 等. 2 種草莓成熟過程中果實特征品質指標的變化[J]. 食品科學, 2017, 38(4): 125-132.

DOI:10.7506/spkx1002-6630-201704021. http://www.spkx.net.cn

YAN Jiawei, LU Hongyan, LI Li, et al. Variations in quality characteristics of two strawberry cultivars during fruit ripening[J]. Food Science, 2017, 38(4): 125-132. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-201704021. http://www.spkx.net.cn

2016-06-29

國家自然科學基金青年科學基金項目(31401547);國家自然科學基金面上項目(31571895);浙江省自然基金一般項目(LY17C200008;LY17C200014);公益性行業(農業)科研專項(201303073);山東省自然科學基金青年基金項目(ZR2014CQ019)

嚴嘉瑋(1993—),女,碩士研究生,研究方向為果蔬采后生物學。E-mail:yjw_032@163.com

*通信作者:李莉(1984—),女,講師,博士,研究方向為果蔬采后生物學。E-mail:lili1984@zju.edu.cn

主站蜘蛛池模板: 国产97视频在线| 91po国产在线精品免费观看| av天堂最新版在线| 成人精品午夜福利在线播放| 日韩大片免费观看视频播放| 国产AV无码专区亚洲精品网站| 日韩大片免费观看视频播放| 操操操综合网| 欧美成人怡春院在线激情| 亚洲国产一成久久精品国产成人综合| 国模极品一区二区三区| 最新国产在线| 国产成人亚洲精品蜜芽影院| 91精品专区国产盗摄| 欧美国产日产一区二区| 色悠久久综合| 亚洲成A人V欧美综合| 亚洲无码高清一区| 亚洲毛片网站| 伊人久热这里只有精品视频99| 91福利在线观看视频| 福利视频久久| 在线观看免费黄色网址| 久久永久精品免费视频| 免费国产好深啊好涨好硬视频| 国产呦精品一区二区三区网站| 国产成人狂喷潮在线观看2345| 亚洲资源站av无码网址| 欧美亚洲中文精品三区| 农村乱人伦一区二区| 国产成人精品亚洲77美色| 超薄丝袜足j国产在线视频| 国产成人夜色91| 国产精品永久不卡免费视频| 丝袜国产一区| 国产精品19p| 91精品啪在线观看国产91| 在线观看欧美精品二区| 免费人成网站在线观看欧美| 亚洲欧洲免费视频| 国产麻豆精品手机在线观看| 国产成人无码AV在线播放动漫 | 人妻少妇乱子伦精品无码专区毛片| 91福利在线看| 日韩在线影院| 国内精自视频品线一二区| 一区二区在线视频免费观看| 欧美在线黄| 久久久成年黄色视频| a在线观看免费| 毛片一区二区在线看| 国产剧情国内精品原创| 免费无码一区二区| 国产成人综合网在线观看| 手机精品福利在线观看| 99国产精品免费观看视频| 成人午夜网址| 久久天天躁夜夜躁狠狠| 久青草国产高清在线视频| 国产成人高清亚洲一区久久| 九月婷婷亚洲综合在线| 国产精品3p视频| 欧美专区日韩专区| 九九久久精品免费观看| 中文字幕首页系列人妻| 福利在线一区| 色哟哟精品无码网站在线播放视频| 欧美色图第一页| 国产午夜福利在线小视频| 国产后式a一视频| 一本色道久久88综合日韩精品| 一本色道久久88| 伊人婷婷色香五月综合缴缴情| 老司国产精品视频91| 日本在线亚洲| 91系列在线观看| 88av在线看| 无码啪啪精品天堂浪潮av| 国产真实乱人视频| a天堂视频在线| 99re在线视频观看| 婷婷久久综合九色综合88|