楊瓊梁 袁佳敏 黃星雨 顏 沖 楊仁義 蘇啟后 李博楊 顏 紅
(湖南中醫藥大學藥學院,長沙410208)
·免疫學技術與方法·
楊樹花粉過敏BALB/c小鼠動物模型的建立①
楊瓊梁 袁佳敏 黃星雨 顏 沖②楊仁義③蘇啟后④李博楊 顏 紅
(湖南中醫藥大學藥學院,長沙410208)
目的:建立楊樹花粉粗提物致敏激發的小鼠過敏模型。方法:將60只BALB/c小鼠隨機均分為正常組、卵清蛋白(OVA)陽性對照組和模型組,每隔5 d經腹腔注射致敏1次,共4次,末次致敏后第5天滴鼻激發。觀察支氣管肺泡灌洗液(BALF)中炎癥細胞變化情況;PAS染色觀察氣道黏液分泌情況;HE染色觀察鼻黏膜、肺炎癥情況;免疫組化法檢測肺組織中IL-4及IFN-γ陽性細胞平均光密度值;酶聯免疫吸附試驗檢測血清中的總IgE水平。結果:與正常組比較,模型組誘導鼻黏膜、肺組織出現明顯的變應性炎癥且氣道黏液分泌明顯增加;BALF涂片顯示明顯的炎癥細胞(嗜酸性粒細胞、中性粒細胞)增多;肺組織中IL-4陽性細胞平均光密度值均高于正常組,IFN-γ陽性細胞平均光密度值均低于正常組;血清中總IgE高于正常組。結論:楊樹花粉粗提物能夠成功建立小鼠過敏模型。該模型的建立有利于過敏性疾病機制的研究。
楊樹花粉粗提物;過敏反應;動物模型
花粉是引起Ⅰ型變態反應疾病重要的致敏原之一,致敏花粉的種類因地區、海拔、季節的不同而有所不同。楊樹是我國分布最廣的樹種,其每年產生的花粉及飛絮已成為春季主要的致敏花粉之一,常引起人類過敏性鼻炎、哮喘等過敏性疾病發作,臨床上需給予抗炎、平喘、解痙等治療[1]。鑒于人體試驗的局限性和安全性,建立合適的動物模型來研究楊樹花粉過敏顯得尤為重要。許多不同品種的動物如豚鼠、大鼠、小鼠等已成功用于多種變應原炎癥動物模型的構建,如塵螨、花生、卵蛋白等[2-4]。小鼠因其免疫遺傳背景較清楚、來源廣、品系較純、價格低廉等優點,同時隨著免疫學的發展及大量分子生物學試劑的出現,其應用于過敏模型的建立逐年增加。目前國內尚無資料直接顯示Ⅰ型變態反應疾病患者中對楊樹花粉過敏的比例,為此,本研究采用楊樹花粉粗提物致敏和激發小鼠,初步探討小鼠楊樹花粉過敏的發病機理,為后續研究及開發治療楊樹花粉過敏藥物提供良好的動物模型,同時也可為其他花粉過敏模型提供一定的實驗基礎。
1.1 材料
1.1.1 動物 BALB/c雌性小鼠60只,體重(18±2)g,購于湖南太平生物科技有限公司[許可證號:SCXK(湘)2015-0004],飼養于湖南中醫藥大學動物實驗中心[許可證號:SCXK(湘)2011-0003]。
1.1.2 藥物與試劑 楊樹花粉由中國林業科學研究院亞熱帶林業研究所提供,參照文獻[5]制備得到楊樹花粉粗提物;Albumin Egg購自Solarbio公司;氫氧化鋁凝膠由本實驗室自制;總IgE酶聯免疫吸附反應檢測(ELISA)試劑盒均購于欣博盛生物科技有限公司;IL-4免疫組織化學試劑購于武漢博士德生物工程有限公司;IFN-γ免疫組織化學試劑購自北京博奧森生物技術有限公司。其他試劑均為國產分析純。
1.1.3 儀器 臺式高速離心機(湖南湘儀實驗室儀器開發有限公司);ELX800酶標儀(基因有限公司);Spectrumlab 722sp可見分光光度計(Lengguang Tech);CP114型電子天平(上海奧豪斯儀器有限公司);KD2258型石蠟切片機(中國浙江金華),Motic B5顯微攝像圖像分析系統(麥克奧迪實業集團公司)。
1.2 方法
1.2.1 動物分組 將60只小鼠按體重隨機分成3組,即正常組,卵清蛋白(OVA)陽性對照組,模型組。
1.2.2 動物免疫 參照文獻[6]方法加以改進,OVA陽性對照組每只小鼠腹腔注射100 μg/ml的OVA 生理鹽水(含5%氫氧化鋁免疫佐劑)溶液0.1 ml。模型組將楊樹花粉粗提物混懸于含5%氫氧化鋁免疫佐劑生理鹽水中,配成濃度為2 mg/ml的溶液,腹腔注射給予該組每只小鼠0.4 ml。正常對照組采用生理鹽水溶液,注射方法、劑量均同陽性對照組。每間隔5 d重復致敏1次,共4次。
1.2.3 抗原激發 第4次致敏后的第5天進行滴鼻激發。陽性對照組所有小鼠給予40 μl(10 mg/ml)OVA溶液滴鼻激發;模型組所有小鼠給予40 μl(10 mg/ml) 楊樹花粉粗提物滴鼻激發;正常對照組采取生理鹽水進行滴鼻;每天1次,連續5 d。
1.2.4 血液的采集及處理 最后一次激發后24 h,眼窩取血,室溫靜置30 min,3 000 r/min離心10 min,血清移至干凈的Eppendorf管,-20℃保存。
1.2.5 鼻黏膜病理學檢查 取雙側鼻組織,固定于10%甲醛中,石蠟包埋,蘇木精-伊紅(HE)染色,光鏡下觀察鼻黏膜局部炎癥變化。
1.2.6 支氣管肺泡灌洗液(BALF)的收集及處理 每組取10只小鼠切開頸部皮膚,行氣管插管術,用含5%的胎牛血清生理鹽水1 ml,分2次從氣管插管緩慢注入肺內,緩慢收集,回收率為70%~80%(0.7~0.8 ml)。灌洗液2 000 r/min離心5 min后取沉淀涂片,干后進行HE染色,光學顯微鏡高倍鏡下觀察炎癥細胞變化。
1.2.7 肺組織病理學檢查及評分 往每組剩余小鼠肺中注入甲醛0.5 ml固定,石蠟包埋,常規切片,HE染色和PAS染色,顯微鏡高倍鏡下觀察肺組織中炎癥浸潤程度及氣道黏液分泌情況。采用Underwood的標準,依據血管周圍和支氣管周圍嗜酸粒細胞浸潤情況(分為0~5分)、組織水腫情況(分為0~5分)和肺組織中上皮損傷情況(分為0~5分)分別給每組小鼠評分,并計算出其平均總評分[7]。參照Henderson提供的方法,依據氣道上皮著色情況(分為0~5分)確定支氣管周圍黏液分泌情況[8]。
1.2.8 肺組織中IL-4及IFN-γ表達 取固定好的小鼠肺組織,應用免疫組化法對肺組織中IL-4及IFN-γ的表達進行測定,采用圖像分析系統檢測。
1.2.9 血清中總IgE含量的測定 參照總IgE檢測試劑盒說明書,酶聯免疫吸附法測定血清中的總IgE含量。
2.1 模型組出現過敏癥狀 模型組和OVA對照組小鼠于激發后均出現不同程度的煩躁不安或安靜少動、立毛撓鼻、打噴嚏、呼吸加快加深、前肢縮抬、二便失禁等過敏反應表現;而正常組小鼠除有輕微撓鼻外無上述表現。
2.2 模型組鼻黏膜炎癥細胞浸潤明顯 模型組及OVA對照組鼻黏膜上皮脫落,有大量炎癥細胞(嗜酸性粒細胞、肥大細胞及少量的中性粒細胞)浸潤,而對照組鼻黏膜呈淡紅色、光滑、黏膜結構正常,無炎癥細胞浸潤(圖1)。
2.3 模型組BALF中炎癥細胞浸潤程度增加 模型組及OVA對照組BALF涂片中炎癥細胞(嗜酸性粒細胞、中性粒細胞、淋巴細胞及巨噬細胞)顯著高于正常組(P<0.05,圖2)。
2.4 模型組肺組織炎癥浸潤程度及氣道黏液分泌增加 HE染色及PAS染色結果表明:正常組小鼠肺組織切片未見明顯病理學變化(圖3A、D);模型組氣管、支氣管及血管周圍大量炎性細胞(肥大細胞、巨噬細胞、啫酸性粒細胞、淋巴細胞與中性粒細胞)浸潤,上皮細胞脫落,間質大量中性粒細胞浸潤(圖3B);OVA對照組氣管、支氣管及血管周圍大量淋巴細胞、中性粒細胞浸潤,支氣管黏膜腫脹、破裂(圖3C),較之正常組(2.16±1.44),模型組(14.39±1.79)及OVA對照組(15.96±2.03)肺組織炎癥浸潤程度顯著增加(P<0.05)。模型組(4.5±0.97)及OVA對照組(4.7±0.68)較之正常組(0.5±0.85)PAS著色細胞明顯增加,氣道上皮杯狀細胞增生,管腔中有黏液滲出,有的可見黏液栓(圖3E、F)。
2.5 模型組肺組織中IL-4免疫反應性增強,IFN-γ免疫反應性降低 OVA對照組、模型組肺組織IL-4表達明顯高于正常組,IFN-γ表達明顯低于對照組(表1、圖4)。

圖1 鼻黏膜炎癥細胞浸潤程度(HE×200)Fig.1 Inflammatory cell infiltration in nasal mucosa(HE ×200)Note:A.Control group;B.Model group;C.OVA group.

圖2 BALF中炎癥細胞浸潤程度(HE×200)Fig.2 Inflammatory cell infiltration in BALF(HE×200)Note:A.Control group;B.Model group;C.OVA group.
2.6 模型組血清中總IgE含量增加 OVA對照組、模型組血清中總IgE的含量顯著高于正常組,OVA對照組與模型組之間無顯著性差異(表2)。

圖3 肺組織病理學變化(HE,PAS×400)Fig.3 Inflammatory cell infiltration in lung tissues(HE,PAS×400)Note:A.Control group of HE staining;B.Model group of HE staining;C.OVA group of HE staining;D.Control group of PAS staining;E.Model group of PAS staining;F.OVA group of PAS staining.



GroupsIL?4IFN?γControl0 19±0 030 52±0 08Model0 35±0 051)0 33±0 101)OVA0 38±0 081)0 30±0 121)
Note:Compared with control group,1)P<0.05.

圖4 肺組織中IL-4、IFN-γ免疫反應性(×400)Fig.4 IL-4 immune reactivity and IFN-γ immune react-ivity in lung tissue(×400)Note:A.IL-4 expression of control group;B.IL-4 expression of OVA group;C.IL-4 expression of model group;D.IFN-γ expression of control group;E.IFN-γ expression of OVA group;F.IFN-γ expression of model group.



GroupsIgE/(ng/ml)Control9 71±1 26Model16 3±1 421)OVA15 14±0 941)
Note:Compared with control group,1)P<0.01.
目前研究認為,花粉過敏主要是由IgE介導的Ⅰ型超敏反應,機體吸入花粉變應原后產生IgE抗體,IgE與花粉變應原結合后黏附于嗜酸性細胞、肥大細胞表面,引起嗜酸性細胞浸潤及炎癥介質的釋放,導致過敏性鼻炎、哮喘等疾病的發生。由于IgE存在血液循環中,過敏反應并不局限于局部,故本實驗不僅對鼻黏膜、肺組織及BALF進行病理學檢查,也對IgE抗體及相關細胞因子水平進行檢測,以評價建立的過敏模型。
大量研究者采用OVA成功制備小鼠過敏模型,且OVA是過敏實驗常用的陽性對照品,在本研究中選用其作為陽性對照,結果發現楊樹花粉粗提物變應原及OVA能成功誘導小鼠過敏反應,均表現為撓鼻、打噴嚏次數增多,二便失禁,鼻黏膜炎癥細胞浸潤,肺部氣管、小支氣管及血管周圍有明顯的炎性細胞浸潤,部分切片可見細支氣管內含有黏稠痰液及黏液栓,并可見許多嗜酸性粒細胞浸潤,PAS著色細胞明顯增多;而正常對照組并無此癥狀。BALF中亦存在大量以嗜酸性粒細胞為主的炎性細胞,表明楊樹花粉粗提物變應原效價與OVA過敏原相近。
目前公認的過敏反應發生的機制理論為過敏介質理論與Th1/Th2平衡理論,前者是研究最多的一種發生機制[9],后者是較新的理論。研究報道認為,過敏性疾病是由Th2型細胞因子引起的免疫系統失調的疾病[10,11]。正常機體Th1、Th2細胞以及Th1型、Th2型細胞因子處于平衡狀態,發生過敏反應時,細胞因子表達打破平衡,Th2型細胞因子過度表達,引起過敏反應。按此理論可將細胞因子的產生分為Th1型和Th2型,Th1型(IFN-γ、IL-2等)是介導炎癥反應和遲發型的變態反應,其可以抑制Th2型細胞因子作用,起到保護氣道作用[12];Th2型(IL-4、IL-5、IL-6 等)主要介導的是速發型過敏反應及Ⅰ型超敏反應,其可使IgE合成增多,募集EOS向小氣道浸潤。在本試驗中,我們發現與正常對照組相比,OVA對照組和模型組小鼠肺組織中IL-4陽性細胞平均光密度值顯著增加,IFN-γ陽性細胞平均光密度值顯著降低,表明楊樹花粉粗提物與OVA致敏激發均誘導了小鼠Th2型免疫反應。由于實驗條件的局限性,本實驗僅觀察了小鼠鼻黏膜、肺部炎癥的病理學改變及與過敏反應相關的特異性細胞因子的變化,尚未觀察此模型的氣道反應性變化,有待后續實驗的進一步完善。
綜上可知,研究結果證實了本實驗成功構建了楊樹花粉誘導小鼠過敏反應模型,提供了一種楊樹花粉粗提物誘導小鼠過敏模型的方法,并對楊樹花粉過敏的發病機理及病理特征進行了研究,為楊樹花粉引發的過敏性疾病的預防和治療奠定了理論基礎。
[1] 王建紅,車少臣,邵金麗,等.北京楊柳飛絮治理現狀問題與展望[J].北京園林,2011,27(1):48-50.
[2] Ahn JH,Kim CH,Kim YH,etal.Inflammatory and remodeling events in asthma with chronic exposure to house dust mites:a murine model[J].J Korean Med Sci,2007,22(6):1026-1033.
[3] Belafsky PC,Peake J,Smiley-Jewell SM,etal.Soot and house dust mite allergen cause eosinophilic laryngitis in an animal model[J].Laryngoscope,2016,126(1):108-112.
[4] Abril-Gil M,Garcia-Just A,Pérez-Cano FJ,etal.Development and characterization of an effective food allergy model in Brown Norway rats[J].PLoS One,2015,10(4):e0125314.
[5] 李雅莉,張 明,盧家美,等.葎草花粉致敏的小鼠肺部變應性炎癥模型的建立[J].西安交通大學學報(醫學版),2010,31(5):563-566.
[6] 朱劍萍,姚紅伊,謝怡誠,等.艾蒿花粉誘導的豚鼠過敏反應[J].中國病理生理雜志,2009,25(1):7-12.
[7] Myou S,Leff AR,Myo S,etal.Blockade of inflammation and airway hyperresponsiveness in immune-sensitized mice by do minant-negative phosphoinositide 3-kinase-TAT[J].Jem,2003,198(10):1573-1582.
[8] Henderson Jr WR,Tang L,Chu SJ,etal.A role for cysteinyl leukotrienes in airway remodeling in a mouse asthma model[J].Am J Res Crit Care,2002,165(1):108-116.
[9] Roberts G,Boyle R,Bryce PJ,etal.Developments in the field of allergy mechanisms in 2015 through the eyes of Clinical & Experimental Allergy[J].Clin Exp Allergy,2016,46(10):1248-1257.
[10] Zhang T,Yang Z,Yang S,etal.Immunoregulatory effects of paeoniflorin exerts anti-asthmatic effects via modulation of the Th1/Th2 equilibrium[J].Inflammation,2015,38(6):2017-2025.
[11] Wu C,Yang G,Bermúdez-Humarán LG,etal.Immunomodulatory effects of IL-12 secreted by Lactococcus lactis on Th1/Th2 balance in ovalbu min(OVA)-induced asthma model mice[J].Int Immunopharmacol,2006,6(4):610-615.
[12] Shahid SK,Kharitonov SA,Wilson NM,etal.Increased interleukin-4 and decreased interferon-γ in exhaled breath condensate of children with asthma[J].Am J Res Crit Care,2002,165(9):1290-1293.
[收稿2016-11-15 修回2016-12-08]
(編輯 許四平)
BALB/c mice model of allergic diseases induced by populus pollen
YANGQiong-Liang,YUANJia-Min,HUANGXing-Yu,YANChong,YANGRen-Yi,SUQi-Hou,LIBo-Yang,YANHong.
SchoolofPharmacy,HunanUniversityofChineseMedicine,Changsha410208,China
Objective:To study performed of develop a mice model of allergic diseases induced by crude extractings from populus pollen.Methods: A total of 60 BALB/c mice were divided randomly into there groups:normal control group,Albumin Egg(OVA) group and populus pollen model group with 20 in each.Mices were repeatedly sensitized by intraperitoneal injections of OVA or crude populus pollen extract every 5 d for four doses.Five days after the last sensitization,mices were repeatedly challenged by once daily antigen from 21-25 d.The changes of inflammatory cells in bronchoalveolar lavage fluid(BALF) were stained with hematoxylin and eosin(HE) to evaluate the degree of allergic inflammation.PAS staining was used to observe the secretion of airway mucus;The changes of the nasal mucosas and lungs of mice were stained with HE to evaluate the degree of allergic inflammation.And the average optical density of IL-4 and IFN-γ positive cells in lung tissue was measured by immunohistochemistry.The total IgE in the serum was also measured by enzyme-linked immunoassay(ELISA).Results: Compared with the mice in normal control group,those in OVA group and model group developed obvious allergic inflammation in the nasal mucosas and lungs,and increased airway mucus secretion.The number of inflammatory cells including eosinophil and neutrophils markedly increased in BALF smear.The average optical density of IL-4 positive cells in lung tissue was all increased in OVA group and model group compared with those in normal control group,and the average optical density of IFN-γ in lung tissue was on the contrary.The total IgE in the serum were all increased in OVA group and model group compared with those in normal control group,and the IFN-γ in the serum was significantly reduced in OVA group and model group compared with those in normal control group.Conclusion: Taken together,crude populus pollen extract can successfully induce a mice model of allergic diseases.This model is a useful tool in studying the mechanisms of allergic disease.
Crude populus pollen extract;Allergy;Animal models
10.3969/j.issn.1000-484X.2017.04.016
①本文為國家林業公益性行業科研專項(201304103)和湖南省“中藥學”重點學科項目(湘教通[2011]76號)。
楊瓊梁(1992年-),女,在讀碩士,主要從事天然活性產物及中藥新制劑的研究,E-mail:598789133@qq.com。
及指導教師:顏 紅(1978年-),女,博士,副教授,主要從事天然產物研究及中藥新劑型及新技術的研究,E-mail:yh8632@126.com。
R363
A
1000-484X(2017)04-0554-04
②湖南中醫藥大學醫學院,長沙 410208。
③湖南中醫藥大學中西醫結合學院,長沙410208。
④湖南中醫藥大學中醫學院,長沙410208。