蜂花粉多糖和黃酮的聯合提取及含量測定

張翠香，羅永會，徐春萍，左紹遠

（大理大學基礎醫學院，云南大理671000）

蜂花粉多糖和黃酮的聯合提取及含量測定

張翠香，羅永會*，徐春萍，左紹遠

（大理大學基礎醫學院，云南大理671000）

以蜂花粉為原料，用石油醚回流脫去脂類和色素，再用80%乙醇80℃回流2次提取蜂花粉黃酮；濾渣用80℃水提3次后，醇沉后，并用sevag法脫蛋白。計算多糖和黃酮的提取率和純度，并對試驗方法的重復性、精密度和穩定性進行考查。蜂花粉中黃酮的提取率為2.56%（RSD=1.722%，n=5），純度為82.3%（RSD=2.517%，n=5），多糖提取率為3.11%（RSD=2.826%，n=5），純度為91.6%（RSD=1.992%，n=5）；精密度試驗RSD黃酮=1.760%，RSD多糖= 1.507%，穩定性試驗中顯色后的90 min內穩定性較好，RSD黃酮=2.947%，RSD多糖=2.632%。

蜂花粉；多糖；黃酮；聯合提取

蜂花粉（beepollen）為蜜蜂采集的雄蕊花藥的粉狀物質，除含有豐富的營養成分外，蜂花粉還含有多糖類、活性肽、黃酮類、核苷類、甾體、醛類、苷類、不飽和脂肪酸及少量生物堿等多種生物活性物質。被稱為“完全營養食品”。對人體具有多種保健功能，不僅能增強機體免疫力，而且還可防止動脈硬化、高血脂、高血壓、靜脈曲張等，是治療各種疾病的名貴藥材[1-3]。

多糖和黃酮都是蜂花粉的主要活性成分。研究表明蜂花粉多糖具有增強機體免疫力、調節血糖、降血脂及抗腫瘤、抗病毒、抗氧化等多種生物學活性[4-7]，同時，蜂花粉黃酮能夠抗氧化和降糖、降脂等生物活性也有所報道[7-10]。目前，蜂花粉中多糖和黃酮類化合物的研究主要集中在提取純化、含量測定及成分、生物活性等方面。也有很多關于蜂花粉中多糖和黃酮類物質的提取研究的文獻。大多數研究都只集中在單一的蜂花粉多糖或黃酮類的提取工藝條件研究上[7-8]，其優點是確定了多糖或黃酮類物質的最佳提取工藝，能充分提取蜂花粉中的多糖或黃酮類物質，獲取蜂花中更多的生物活性成分；缺點是單一提取，不能同時獲得其中生物活性成分，造成原料和試劑的浪費，耗費時間和能源，造成提取成本的增加等。本研究查閱大量相關文獻，參照蜂花粉多糖、黃酮單一提取的最佳工藝，采用聯合提取蜂花粉中的黃酮和多糖方法，能從蜂花粉中同時獲得蜂花粉重要生物活性物質多糖和黃酮。方法簡單易行，可為蜂花粉的進一步開發和研究提供參考，節約時間和成本。

1 材料和儀器

1.1 試劑

蘆丁、石油醚（沸程60℃～90℃）、無水乙醇、亞硝酸鈉、硝酸鋁、氫氧化鈉、濃硫酸、葡萄糖、苯酚等：國藥集團化學試劑有限公司，均為分析純。

1.2 主要儀器

BT-224S型電子分析天平：德國賽多利斯儀器公司；HH－4數顯恒溫水浴鍋：常州國華電器有限公司；TDL－4A低速離心機：上海菲恰爾儀器有限公司；722E分光光度計：上海分析儀器有限公司；RA－6000旋轉蒸發儀：上海亞榮生化儀器廠；DEF-200中藥粉碎機：溫嶺市林大機械有限公司等。

2 方法[11-15]

2.1 蜂花粉多糖和黃酮的提取工藝

2.2 蜂花粉總黃酮的提取

稱取1 200 g蜂花粉，用10倍體積的石油醚（沸程30℃～60℃）水浴回流3.0 h，過濾2次，脫去蜂花粉中的脂類，以及色素，濾渣晾干備用。用10倍體積80%乙醇80℃回流2.0 h，過濾，重復2次，合并濾液，減壓濃縮回收乙醇，得蜂花粉黃酮浸膏。濾渣晾干即脫脂蜂花粉備用。

2.3 蜂花粉多糖的提取和純化

取2.2所得脫脂蜂花粉，用8倍體積蒸餾水，80℃振蕩水提過夜，過濾，濾液收集置4℃冰箱，濾渣用6倍體積蒸餾水80℃振蕩水提2次，每次6.0 h，過濾收集濾液。合并濾液減壓濃縮到適當體積，加無水乙醇使終度達90%，置4℃冰箱過夜，離心收集粗多糖沉淀。沉定用蒸餾水溶解得粗多糖溶液，按多糖溶液和sevag脫蛋白液（氯仿∶正丁醇=4∶1）4∶1體積比混合劇烈攪拌30min離心，收集上清液，重復3次，上清液加無水乙醇使終濃度達90%，置4℃冰箱過夜，離心收集沉淀。沉淀分別用無水乙醇，丙酮，乙醚洗滌3次，真空干燥，得灰白色粉狀多糖。

2.4 蜂花粉黃酮的含量測定

2.4.1 蘆丁標準曲線的繪制

精確稱取120℃干燥恒重的蘆丁標準品100.0 mg，用50%乙醇定容至100 mL，則蘆丁標準液的濃度為1.0 mg/mL，準確吸取對照品溶液0.0、0.4、0.8、1.2、1.6、2.0 mL，置于10 mL刻度試管中，分別加50%乙醇至2.0 mL混勻，加5%亞硝酸鈉溶液0.3 mL混勻，放置6 min，加10%的硝酸鋁溶液0.3 mL混勻，放置6 min后加5%的氫氧化鈉溶液2.0 mL，混勻，放置15 min加50%乙醇至10.0 mL混勻，以第1管為空白對照，于510 nm處測定吸光度，以蘆丁濃度為橫坐標，吸光值為縱坐標，繪制標準曲線。

2.4.2 蜂花粉黃酮的含量測定

準確稱取2.2所得蜂花粉黃酮浸膏100.0 mg，用50%乙醇定容至100 mL，取2.0 mL，按照2.4.1方法操作，于510 nm處讀取吸光度，代入線性回歸方程，求出樣品液中總黃酮濃度，計算蜂花粉黃酮樣品中總黃酮的含量（即總黃酮的純度）及總黃酮的提取率：

蜂花粉黃酮樣品中總黃酮的含量/%=C×V×N×10-6/ M×100

式中：C為樣品總黃酮濃度，μg/mL；V為待測樣品總體積，mL；M為所稱取蜂花粉黃酮的質量，g；N為稀釋倍數，10-6，單位換算（1 g=106μg）。

總黃酮提取率/%=提取所得蜂花粉總黃酮的質量/蜂花粉原料質量×100

2.5 蜂花粉多糖的含量測定

2.5.1 葡萄糖標準曲線

精確稱取105℃干燥至恒重的葡萄糖100.0 mg，用蒸餾水定容至100 mL，再取該溶液10.0 mL用蒸餾水定容至100 mL，即得100 μg/mL葡萄糖標準溶液。分別吸取 0.0、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2 mL葡萄糖標準溶液，各以蒸餾水補至2.0 mL，然后加入5%苯酚水溶液1 mL，充分混合后再沿著試管壁緩慢滴入濃硫酸5 mL，迅速混合均勻后，室溫放置30 min，在波長490 nm處測定吸光度（A）。以葡萄糖濃度（C）為橫坐標，吸光度（A）為縱坐標，繪制標準曲線。

2.5.2 蜂花粉多糖含量的測定

準確稱取2.3所得蜂花粉多糖100.0 mg，用蒸餾水定容至100 mL，取2.0 mL，按照2.5.1方法操作，于490 nm處讀取吸光度，代入線性回歸方程，求出樣品液中多糖濃度，計算蜂花粉中多糖樣品中多糖的含量（即多糖的純度）及多糖的提取率：

蜂花粉中多糖樣品中多糖含量/%=C×V×N×10-6/ M×100

式中：C為樣品多糖濃度，μg/mL；V為待測樣品總體積，mL；M為所稱取蜂花粉多糖質量，g；N為稀釋倍數，10-6，單位換算（1 g=106μg）。

蜂花粉多糖提取率/%=提取所得蜂花粉多糖質量/蜂花粉原料質量×100

2.6 方法學考察

2.6.1 重復性試驗

準確稱取蜂花粉100.00 g，共5份，按2.2、2.3法提取蜂花粉中的黃酮和多糖，按2.4、2.5法測定蜂花粉中的多糖含量和黃酮含量，分別計算RSD。

2.6.2 精密度試驗

準確稱取100.00 mg蜂花粉黃酮浸膏（或多糖），用50%乙醇（多糖用蒸餾水）定容到100 mL，分別按2.4.1、2.5.1法操作，各平行做5份，讀取吸光，分別計算RSD。

2.6.3 穩定性試驗

分別準確吸取2.6.2所得待測液2.0 mL，按2.4.1、2.5.1法操作，分別放置于室溫0、15、30、60、90 min之后，讀取吸光度，分別計算RSD。

3 結果和分析

3.1 蜂花粉黃酮和多糖測定結果

3.1.1 蘆丁標準曲線

以蘆丁濃度為橫坐標，吸光值為縱坐標，求得回歸方程及標準曲線，結果如圖1，蘆丁濃度在20 μg/mL～120 μg/mL范圍內線性良好。

圖1 蘆丁標準線（510 nm）Fig.1 Standard curves of rutin（510 nm）

3.1.2 葡萄糖標準曲

以葡萄糖濃度（C）為橫坐標，吸光度（A）為縱坐標，求得回歸方程及標準曲線，結果如圖2，葡萄糖濃度在0～60 μg/mL范圍內線性良好。

圖2 葡萄糖標準曲線（490 nm）Fig.2 Standard curve of glucose（490 nm）

3.1.3 蜂花粉多糖和黃酮的提取率及含量

蜂花粉1 200.00 g用石油醚脫脂2次后，用80%乙醇對其中黃酮進行提取2次，沉渣再進一步用水提醇法提取其中的多糖，然后用sevag法脫蛋白進行純化蜂花粉多糖。試驗得蜂花粉多糖37.32 g，黃酮浸膏30.72g。多糖提取率為（37.32 g÷1 200 g）×100%=3.11%，多糖樣品中多糖的含量（即純度）為91.6%，黃酮提取率為（30.72g÷1200g）×100%=2.56%，浸膏中黃酮的含量（即純度）為82.3%。蜂花粉中多糖含量為91.6%× 3.11%×100%=2.85%，黃酮的含量為82.3%×2.56%× 100%=2.11%。

3.2 方法學考察結果

3.2.1 重復性試驗

準確稱取蜂花粉100.00，共5份，嚴格按2.2、2.3法提取蜂花粉中的黃酮和多糖，按2.4、2.5法測定蜂花粉中的多糖含量和黃酮含量，并計算多糖提取率、多糖純度、黃酮提取率及黃酮純度的RSD，結果分別為2.826%、1.992%、1.772%和2.517%。表明本試驗方法有較好的重復性，偶然誤差較小，測定方法可靠。結果見表1。

表1 重復性試驗結果（n=5）Table 1 Results in repeated test（n=5）

3.2.2精密度試驗

結果表明，5份黃酮待測樣品，吸光度平均值A黃酮=0.428，RSD=1.760%，5份多糖待測樣品，平均值A多糖=0.469，RSD=1.507%，表明儀器精密度良好。結果見表2。

表2 精密度試驗結果（n=5）Table 2 Results in Precision test（n=5）

3.2.3 穩定性試驗

結果表明，在90 min內連續測定5次，吸光度平均值A黃酮=0.428，RSD=2.947%，平均值A多糖= 0.469，RSD=2.632%，表明其在顯色后的90 min內穩定性較好。結果見表3。

表3 穩定性試驗結果（n=5）Table 3 Results in stability test（n=5）

3.3 結論

通過上述聯合提取的方法，用80%乙醇對蜂花粉黃酮進行提取2次，再進一步用水提醇法提取其中的多糖，然后用sevag法脫蛋白進行純化蜂花粉多糖。此方法能同時獲取蜂花粉中的多糖和總黃酮。所得蜂花粉中黃酮的提取率為2.56%（RSD=1.722%，n=5），純度為82.3%（RSD=2.517%，n=5），多糖提取率為3.11%（RSD=2.826%，n=5），純度為91.6%（RSD=1.992%，n= 5）；精密度試驗RSD黃酮=1.760%，RSD多糖=1.507%，穩定性試驗中顯色后的90 min內穩定性較好，RSD黃酮=2.947%，RSD多糖=2.632%。表明本試驗方法具有較好的穩定性、重復性及準確度。因些，蜂花粉多糖和黃酮的聯合提取是可行的，方法簡單易行，既能節約時間又節約成本，同時還有較好的提取率。

[1]韓薇妍,魏超,趙有璽,等.蜂花粉中總黃酮和SOD酶的測定[J].食品科技,2009,34(7):257-259

[2]梁巖冰,許麗娟,王治寶.壩上油菜蜂花粉中多糖和乙醇提取物對亞硝酸鹽清除作用的研究[J].河北北方學院學報(自然科學版), 2011,27(5):31-33

[3] 魏淑飛,左紹遠.蜂花粉多糖生物活性研究進展[J].生命科學儀器,2014,12(8):15-17

[4]王博,張夢珊,張中玉,等.菊花蜂花粉多糖的分離純化及抗腫瘤活性研究[J].食品工業科技,2016,37(5):358-360

[5]魏淑飛,左紹遠,羅永會.云南產油菜蜂花粉多糖提高小鼠抗氧化和抗疲勞作用初探[J].世界臨床藥物,2015,36(1):43-46

[6]林春榕,張翠香,左紹遠.蕎麥蜂花粉多糖對糖尿病大鼠血糖、血脂的影響[J].亞太傳統醫藥,2013,9(3):7-9

[7]左紹遠,錢金栿.紅花蜂花粉多糖提取工藝的優化及其抗氧化性質研究[J].湖北農業科學,2013,52(7):1631-1633

[8]董吉林,申瑞玲.油菜蜂花粉多糖和黃酮的提取研究[J].現代食品科技,2008,24(10):1022-1025

[9] 孫巖,郭慶興,童群義.油菜蜂花粉黃酮體外降糖活性研究[J].食品工業科技,2015,36(12):122-125

[10]陳南迪,方妙玉,吳錫鴻,等.不同品種蜂花粉總黃酮含量與抗氧化活性相關性的研究[J].食品工業科技,2013,34(1):70-73

[11]孫巖,郭慶興,童群義.油菜蜂花粉黃酮抗糖尿病及其并發癥的研究[J].中國科技論文,2015,10(6):643-647

[12]裴棟,張莉,張君菡,等.同步提取鎖陽總黃酮和多糖的工藝研究[J].時珍國醫國藥2015,26(8):1851-1852

[13]姚玲,李成,張林芳,等.玉米須中黃酮和多糖綜合提取工藝研究[J].吉林化工學院學報,2011,28(9):29-30

[14]王文淵,張航航,周振華,等.從竹葉中同步提取多糖、茶多酚和黃酮的研究[J].應用化工,2014,43(5):835-839

[15]加列西·馬那甫,吐力吾汗·阿米汗,景偉文.甘草籽黃酮、多糖復合提取工藝參數優化及抗氧化性研究[J].藥物分析雜志,2014,34 (4):686-692

Extraction and Content Determination of Bee Pollen Polysaccharide and Flavonoids

ZHANG Cui-xiang，LUO Yong-hui*，XU Chun-ping，ZUO Shao-yuan
（School of Basic Medical Sciences，Dali University，Dali 671000，Yunnan，China）

This experiment by bee pollen as raw material，using petroleum ether reflux lipid and pigment，with two 80℃80%ethanol reflux extraction bee flowers pink yellow ketone；with 80℃water residue after three times，after alcohol sink，by sevag method to take off the protein.Calculation of polysaccharides and flavones extraction yield and purity，and the experimental method of repeatability，precision and stability test.Bee pollen medium yellow ketone extraction yield of 2.56%（RSD=1.722%，n=5），the purity of 82.3%（RSD= 2.517%，n=5），the polysaccharide extraction rate was 3.11%（RSD=2.826%，n=5），the purity of 91.6%（RSD=1.992%，n=5）；Precision test RSD=1.760%of flavonoids，polysaccharide RSD=1.507%，stability test of color within 90 min after stability isbetter，flavonoidsRSD=2.947%，polysaccharide RSD=2.632%.

bee pollen；polysaccharide；flavonoids；combined extraction

10.3969/j.issn.1005-6521.2017.10.013

2016-09-06

張翠香（1979—），女（彝），實驗師，本科，從事行政管理和植物多糖研究。

*通信作者：羅永會（1967—），女（白），高級實驗師，從事生物化學實驗教學和植物成份提取的研究。