CM-DiI標記人骨髓間充質干細胞并檢測其移植后產生腦源性神經營養因子的實驗研究

趙春松 鄒海強 李曉波 閆曉明 關云謙* 張 愚

(1.首都醫科大學宣武醫院細胞生物室，北京 100053；2.教育部神經變性病重點實驗室，北京 100053； 3.廣州軍區廣州總醫院神經內科，廣州 510010； 4.蘇北人民醫院神經內科，江蘇揚州 225001； 5.首都醫科大學宣武醫院功能神經外科，北京 100053)

· 基礎研究 ·

CM-DiI標記人骨髓間充質干細胞并檢測其移植后產生腦源性神經營養因子的實驗研究

趙春松1,2鄒海強3李曉波4閆曉明5關云謙1,2*張 愚1,2

(1.首都醫科大學宣武醫院細胞生物室，北京 100053；2.教育部神經變性病重點實驗室，北京 100053； 3.廣州軍區廣州總醫院神經內科，廣州 510010； 4.蘇北人民醫院神經內科，江蘇揚州 225001； 5.首都醫科大學宣武醫院功能神經外科，北京 100053)

目的 觀察熒光染料 (CM-DiI)標記人骨髓間充質干細胞(bone marrow mesenchymal stem cells, BM-MSC)后，是否會脫落造成周圍細胞被污染，標記細胞經靜脈移植入腦梗死大鼠后是否會造成宿主腦內神經元被誤染色；以及是否可以鑒定人BM-MSC產生腦源性神經營養因子(brain derived neurotrophic factor, BDNF)。方法 應用不同濃度CM-DiI分別標記培養的人BM-MSC，觀察標記效率。將轉染綠色熒光蛋白(green fluorescence protein, GFP)的人胚腎293T細胞和CM-DiI標記的人BM-MSC細胞共培養，7 d之后觀察CM-DiI的紅色熒光和293T細胞是否雙標記。將CM-DiI標記的人BM-MSC經靜脈移植入腦梗死大鼠體內，觀察植入細胞的紅色熒光是否會沾染宿主細胞以及和BDNF免疫熒光的雙標記。結果 不同濃度CM-DiI(1 000、200、100、20 nmol/L)均可成功標記人BM-MSC，其中1 000、200 nmol/L 濃度標記24 h后觀察標記效率均達到98%以上, 比100、20 nmol/L 標記的效率明顯升高(P<0.01)。CM-DiI標記后的人BM-MSC與GFP 標記的293T細胞共培養，7 d之內沒有發現紅色熒光沾染綠色的293T細胞。移植后第3天，靜脈植入腦梗死大鼠的標記細胞的紅色熒光沒有沾染宿主腦內神經元, 而且可以和BDNF的綠色熒光形成雙標記。結論 CM-DiI可以高效地標記人BM-MSC。采用200 nmol/L 濃度標記的人BM-MSC細胞在體外培養和移植入腦梗死大鼠后都未發現對周圍細胞造成污染，植入細胞的CM-DiI熒光可以鑒定產生BDNF的人BM-MSC。

間充質干細胞；CM-DiI ；移植；腦梗死；腦源性神經營養因子

人類骨髓可以提取和擴增出大量間充質干細胞，已有研究[1-2]證實人骨髓間充質干細胞(bone marrow mesenchymal stem cells, BM-MSC)具有免疫調節和產生營養因子兩種主要作用，前者包括抑制T淋巴細胞增生、抑制促炎因子如腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α，TNF-α)、干擾素-γ(interferon-γ，IFN-γ)等生成/抑制B細胞產生抗體、抑制自然殺傷(natural killer，NK)細胞的功能等；營養作用包括MSC本身產生多種營養性的細胞因子，還包括MSC經血管移植后還可以促進宿主腦內產生各種營養因子[3]。MSC或者宿主產生的腦源性神經營養因子(brain derived neurotrophic factor, BDNF)、膠質源性神經營養因子(glial cell derived neurotrophic factor, GDNF)、胰島素樣生長因子-1(insulin-like growth factor, IGF-1)等因子都對神經系統退行性疾病的恢復具有明顯益處[4-9]。其中BDNF在腦梗死恢復中的重要性已有了廣泛的研究[6-7]。判斷來自于移植細胞和宿主自身的營養性細胞因子在療效中的權重，對于今后提高MSC移植治療神經系統退行性疾病的療效具有重要的意義。這就涉及到對移植細胞進行標記，并用標記信號檢測產生營養因子的細胞。

對細胞常用的標記方法有使培養細胞攝入5-溴脫氧尿嘧啶核苷(5-bromo-2’-deoxyuridine,BrdU)標記法，轉染綠色熒光蛋白(green fluorescence protein, GFP)基因標記法以及生物染料標記法。前兩種標記方法操作比較復雜，而且標記率較低；利用病毒載體轉入GFP基因后的干細胞常常在分化后丟失綠色熒光，造成使用上的限制。生物染料標記方便且效率高，但是隨著細胞分裂次數的增加，熒光染料會被稀釋、導致熒光減弱；而且還有熒光染料脫落沾染宿主細胞的可能。

氯甲基-1,1十八烷基-3,3,3′,3′-四甲基-吲哚-羧花青-高氯酸鹽(chlormethylbenzamido-1,1-dioctadecyl-3,3,3′,3′-tetramethylin-docarbocyamine， CM-DiI)作為一種生物染料，有強而穩定的紅色熒光(激發峰553nm/發射峰570nm)。CM-DiI對細胞無毒，通過與膜結構的脂質分子結合而標記細胞，標記效果穩定長效，能很好地長期示蹤細胞。它水溶性比DiI更好，所以對于培養細胞染色更為方便。研究[10]證實，CM-DiI標記后熒光在胞內表達穩定，對多種細胞的陽性標記率達98%以上，標記細胞形態良好，能有效地觀察細胞在體外的誘導分化情況；如果將標記的細胞注入體內，可以有效的顯示移植細胞在活體組織中的遷移及分化。另外，其氯甲基替代基團(CM基團)能與多肽及蛋白上的巰基反應從而使該分子在醛類物質中保持穩定，所以CM-DiI標記細胞后再進行固定、破膜及石蠟包埋操作都不會影響其熒光。

CM-DiI標記MSC雖然已有應用[11]，但適宜方法還沒有明確的報道，標記后是否會因為熒光染料脫落造成假陽性也需要實驗檢驗。本文首先探討了不同濃度CM-DiI標記BM-MSC的標記效率；隨后探討體外實驗中，CM-DiI標記MSC的紅色熒光是否會造成與之共培養的細胞的沾染以及靜脈輸注的MSC進入腦內，其紅色熒光是否會沾染宿主腦內細胞。最后，觀察了CM-DiI是否可用于鑒定移植細胞BDNF的產生。

1 材料與方法

1.1 材料

人骨髓來自首都醫科大學宣武醫院產科外傷流產的胎兒，胎齡16～18周，并獲得知情同意。

實驗動物SPF級SD雄性大鼠6只(體質量260～280 g)，由北京維通利華實驗動物技術有限公司提供，動物許可證號為SCXK(京)2016-0004。大鼠自由進水進食。實驗動物分2組、每組3只，分別是缺血對照組[缺血后尾靜脈給予0.9%(質量分數)氯化鈉注射液]、人BM-MSC組[缺血后尾靜脈給予CM-DiI標記BM-MSC的0.9%(質量分數)氯化鈉注射液]。

培養基低糖DMEM、RPMI 1640、αMEM，胎牛血清(fetal bovine serum, FBS)，抗生素,左旋谷氨酰胺(L-glutmax)，0.25%(質量分數)胰蛋白酶(trypsin)，DPBS均來自美國Life technology公司。培養箱、超凈工作臺購自美國Thermo公司；全波長酶標儀購自美國Bio-Rad公司；4000B顯微鏡和照相系統購自德國Leica 公司。CM-DiI購自美國Molecular probe 公司。

1.2 方法

1.2.1 胚胎骨髓人BM-MSC提取

人BM-MSC的基礎培養液為低糖DMEM +10%(體積分數)FBS +100 U/mL青霉素+100 μg/mL鏈霉素 +2 mmol/L L-谷氨酰胺。在無菌條件下，分離胚胎下肢長骨，用基礎培養液通過注射器沖洗出骨髓液，將細胞懸液以1.0×106個/mL接種到100 mm培養皿，置37 ℃，5% (體積分數)CO2培養箱。培養4 d后棄去未貼壁細胞，以后每2～3 d半量換液待細胞貼壁生長至80%匯合時，以0.25%(質量分數)胰蛋白酶-EDTA消化，1∶3傳代。

1.2.2 CM-DiI 標記細胞

配制濃度為1 mmol/L的CM-DiI 儲存液，然后用人BM-MSC培養基稀釋為多個工作濃度，分別為 1 000、200、100、20 nmol/L。取100 mm培養皿中培養的第3～5代的細胞，待細胞貼壁生長至80%匯合時(細胞量為3×106～4×106)。用含有不同濃度CM-DiI的培養液(8 mL/100 mm培養皿)培養細胞24 h。用15 mL PBS洗3遍，用基礎培養基繼續培養。每個標記濃度設置3個復孔，實驗重復2次。

1.2.3 CM-DiI 標記的人BM-MSC細胞和293T細胞共培養

分別用1 000、200、100、20 nmol/L濃度的CM-DiI標記人BM-MSC，標記方法同上，標記后傳代時，按照1∶1的數量比例，分別將CM-DiI 標記的人BM-MSC細胞和GFP 標記的293T細胞共培養7 d，進行熒光顯微鏡觀察是否有GFP標記的綠色細胞被CM-DiI紅色熒光沾染的情況。

1.2.4 CM-DiI標記的人BM-MSC靜脈植入腦梗死大鼠

采用遠端大腦中動脈梗阻(distal middle cerebral artery occlusion，dMCAO)模型[12]。dMCAO局灶性腦缺血模型的制作：雄性SD大鼠260～280 g，周齡為9～11周，正常進食飲水。5%(體積分數)恩氟烷誘導麻醉，1%～2%恩氟烷維持麻醉。頸部正中切口，分離雙側頸總動脈，穿線待用。動物置左側臥位，于左耳與左眼間垂直切口，分離顳部肌肉暴露顱骨，高速鉆頭磨去大部分顳骨，咬骨鑷打開骨窗約3 mm×3 mm，暴露腦膜，顯微鏡下挑開腦膜，開顱暴露大腦中動脈(moddle cerebral artery, MCA)；動物再置仰臥位，微血管夾夾閉雙側頸總動脈(common carotid artery，CCA)；動物換至左側臥位，電凝后剪斷MCA?？p合顳部肌肉，皮膚。半小時后放開CCA血管夾，即制作成功dMCAO局灶性腦缺血模型。梗死后1 h, 取不同濃度CM-DiI 標記人BM-MSC重懸在1 mL 0.9%(體積分數)氯化鈉注射液中，緩慢推入大鼠尾靜脈。缺血對照組推入等量不含人BM-MSC的0.9%(體積分數)氯化鈉注射液。

1.2.5 抗人類細胞核抗體和BDNF 抗體與腦內CM-DiI標記的人BM-MSC雙標染色

大鼠腦梗死模型植入不同濃度CM-DiI 標記的人BM-MSC后3 d，深麻醉后4%(質量分數)多聚甲醛灌注固定取腦。40 μm厚度連續冰凍切片。切片用0.01 mol/L PBS清洗2次，使用含有0.3% (體積分數)Triton X-100的PBS作用30 min，使用封閉液[含有1.5%(體積分數)的山羊血清和1%(質量分數) BSA的0. 01 mol/L PBS]室溫孵育1 h，使用含有抗人細胞核抗體或抗BDNF抗體的緩沖液4 ℃孵育過夜。次日，用0.01 mol/L PBS清洗3次，使用含有FITC-熒光標記的二抗(1∶200)的封閉液室溫孵育1 h，用0.01 mol/L PBS緩沖液清洗3次。使用濃度為100 ng/mL的 DAPI-PBS溶液做細胞核染色15 min，用0.01 mol/L PBS緩沖液清洗3次，用含有10%(體積分數) 甘油的0.01 mol/L PBS溶液封片[3,13]。

1.3 統計學方法

2 結果

2.1 MSC生長和標記

分離的原代人BM-MSC培養3～5 d，可見有梭形、多角形細胞貼壁。去除非貼壁細胞之后，進一步增長成為形態相對均一的梭形細胞, 在培養瓶底部呈現旋渦狀。原代培養第10～12 d培養細胞達到80%融合，此時即可進行胰蛋白酶消化并按1∶3傳代，之后每3～5 d需要傳代1次。不同濃度CM-DiI(1 000、200、100、20 nmol/L)CM-DiI均可成功標記人BM-MSC，24 h后觀察標記效率均分別達到99.95%±0.076%，97.67%±2.70%， 88.23%±3.08%, 77.63%±3.11% (圖1)。其中100、20 nmol/L濃度的標記效率和1 000 nmol/L濃度相比已經顯著降低(t=2.447,P=3.60×10-6；t=2.446,P=2.17×10-6)。200 nmol/L 濃度的標記效率也顯著高于100、20 nmol/L(t=2.10,P=1.03×10-5；t=2.18,P=5.22×10-8)。

圖1 各濃度CM-DiI 標記人BM-MSC的標記效率Fig.1 The efficiency of CM-DiI labeling human BM-MSC at different concentrations

A、D、G、J: CM-DiI labeled cells；B、E、H、K: phase contrast images of BM-MSC; C、F、I、L：merged images of red fluorescence and phase contrast images； M: labelling efficiency of different CM-DiI concentrations；**P<0.01vs1 000 nmol/L group；##P<0.01vs200 nmol/L group；n=6, scale bar=100 μm;BM-MSC:bone marrow mesenchymal stem cells.

2.2 CM-DiI標記的BM-MSC與GFP-293T細胞共培養

不同濃度CM-DiI(1 000、200、100、20 nmol/L)標記人BM-BMSC和綠色熒光蛋白標記的293T細胞共培養7 d。最高濃度1 000 nmol/L標記的BM-MSC和293T細胞明顯發生熒光污染的現象。通過仔細觀察發現，在綠色視野中出現的和紅色標記的人BM-MSC完全重合的影像(圖2 A～D)，屬于過強的紅色熒光綠二色通道間串色(crosstalk)造成。

次高濃度200 nmol/L標記后的BM-MSC，熒光顯微鏡的視野下BM-MSC細胞沒有明顯串色效應(圖2 E～H)，相比1 000 nmol/L CM-DiI標記時接近100% 的串色效應已經明顯減輕，可以被較容易地識別開來。另外2個濃度(100，20 nmol/L)的CM-DiI標記的細胞和綠色的293T細胞也沒有發現染色交叉污染的現象(圖2I～L,2M～P)。

圖2 CM-DiI標記的人BM-MSC細胞和綠色熒光蛋白標記的293T細胞共培養Fig.2 Co-culture of CM-DiI labeled human BM-MSC and GFP labeled 293T

A,E,I,M: red florescence of BM-MSC labeled by CM-DiI at different concentrations; B,F,J,N: GFP images in the green channel; C,G,K,O：merged images of GFP and phase contrast; D,H,L,P：merged images of channel red and green; scale bar=100 μm;BM-MSC:bone marrow mesenchymal stem cells; GFP:green fluorescence protein.

2.3 CM-DiI標記的BM-MSC靜脈植入后遷移到腦梗死大鼠腦內未造成宿主神經元誤染色

從上面實驗中可以看出，按照 1 000 nmol/L濃度CM-DiI標記的BM-MSC 紅色熒光過強，而100、20 nmol/L 2個濃度不足以完全標記BM-MSC。所以筆者在移植實驗中采用了次高濃度，即200 nmol/L CM-DiI 對植入細胞進行標記。經靜脈移植后7 d，腦梗死區40 μm厚切片在顯微鏡下觀察，在梗死區域可以看到植入細胞的紅色熒光(圖3A)。這些紅色熒光與神經元特異性抗原NeuN 的免疫熒光染色(圖3B)無明顯重合(圖3C)。CM-DiI 標記的移植細胞和NeuN 標記的宿主神經元都可以和細胞核染色DAPI 很好地重合(圖3D)。這一結果說明，植入細胞的紅色熒光仍然固定在植入細胞上，至少不會污染宿主的神經元使其攜帶紅色。沒有植入細胞的動物只可見到宿主神經元的NeuN染色，未發現明確的紅色熒光(圖3 E～H)。

2.4 CM-DiI標記的BM-MSC靜脈植入后遷移到腦梗死大鼠腦內被抗人核抗體鑒定

為了鑒定靜脈植入的人BM-MSC遷移到達腦內后，梗死區的這些CM-DiI紅色熒光的確是由植入細胞所攜帶，筆者對其進行抗人類細胞核特異性抗體的染色，結果可見綠色的抗人核抗體染色與CM-DiI重合良好(圖4 A～D);無細胞植入的對照組腦組織經染色則沒有紅色熒光，也沒有抗人核抗體陽性的綠色熒光(圖4 E～H)。

圖3 遷移至皮質梗死區的植入細胞攜帶的CM-DiI熒光與宿主神經元NeuN 免疫染色不重合Fig.3 CM-DiI fluorescence of BM-MSC migrateal into the cerebral infarct area was not overlapped with the NeuN immunostaining of host neuron

A：CM-DiI labeled BM-MSC in the infarct area of cerebral ischemia rat; B: NeuN staining of the same view field. C: merged image of A and B， No double staining of CM-DiI and NeuN were found； D:merged image of DAPI and C； E: without cell transplantation, the red fluorescence of CM-DiI could not be observed； F: NeuN staining in the field of E； G: merged image of E and F；H: merged image of DAPI and G; scale bar=250 μm；BM-MSC:bone marrow mesenchymal stem cells.

A-D:cell transplantation group; E-H：control group without cell transplantation;A,E: red fluorescence was used in identifying CM-DiI labeled BM-MSC in the infarct area of cerebral ischemia rat; B,F: immuno-staining of anti-human nucleus antibody in the same view field of A and E; C,G: merged image of red and green fluorescence; D,H: merged image of red, green and DAPI; scale bar=100μm;BM-MSC:bone marrow mesenchymal stem cells.

2.5 CM-DiI標記的BM-MSC靜脈植入后遷移到腦梗死大鼠腦內與BDNF雙標記鑒定

為了鑒定靜脈植入的人BM-MSC遷移到達腦內后是否可以產生BDNF，筆者對腦切片進行了BDNF抗體免疫熒光染色，鏡下觀察梗死區和BDNF抗體染色的綠色熒光的雙標記情況。結果顯示，植入細胞所攜帶的CM-DiI紅色熒光在梗死區域內可見(圖5A)，BDNF的免疫熒光染色主要存在于梗死周邊皮質區，在梗死區也有較多染色陽性細胞存在(圖5B)。表達BDNF的細胞中部分帶有CM-DiI紅色熒光(圖5C)，說明表達BDNF的細胞既來自于宿主自身，也來自于植入的BM-MSC細胞。這些雙標記的細胞可以和DAPI細胞核染色較好地重合(圖5D)，是具有細胞核結構的細胞。未植入細胞的動物腦內沒有紅色熒光(圖5E)，但有BDNF的綠色熒光染色(圖5F～G)，說明腦梗死后動物腦內有表達BDNF的細胞，這些細胞也具有細胞核結構，表現為DAPI陽性(圖5H)。

圖5 腦梗死大鼠的腦內CM-DiI標記的人BM-MSC和anti-BDNF雙標記鑒定Fig.5 CM-DiI labeled human BM-MSC in the infarct area of ischemia rat brain were identified by anti-BDNF double labeling

A-D:cell transplantation group; E-H：control group without cell transplantation; A,E: Red fluorescence was used in identifying CM-DiI labeled BM-MSC in the infarct area of cerebral ischemia rat; B,F: immuno-staining of anti-BDNF antibody in the same view field of A and E; C,G: merged image of red and green fluorescence; D,H: merged image of red,green and DAPI; scale bar=75μm;BM-MSC:bone marrow mesenchymal stem cells； BDNF:brain derived neurotrophic factor.

3 討論

目前認為細胞移植治療腦梗死產生療效的機制主要有3點：①植入細胞分化成為神經細胞。以MSC為例，植入的MSC大多數會在肺部、脾臟滯留，而且植入細胞的信號迅速減弱，通常在移植后1周消失，根據這些實驗證據可以推斷，植入的細胞大量分化成為神經元的可能性很小[14]；②MSC減弱炎性反應的作用[15-16]; ③植入細胞產生多種營養性的細胞因子，可以保護神經細胞，促進血管新生等[2-3]。

植入的細胞可以產生大鼠來源的細胞因子，也可以誘導宿主產生大鼠源性的細胞因子。目前的研究[3]結果更多地傾向于認為是植入細胞刺激大鼠產生的營養性細胞因子在發揮減輕梗死后腦組織損傷的作用。Karlupia等[3]將5×106個人類臍帶來源的MSC細胞或者單個核細胞經動脈植入大鼠，沒有檢測到明顯的人類來源的細胞因子；但也有研究[17]明確表明，經血管植入的MSC細胞可以遷移到腦內，主要集中在梗死周邊區(infarct boundary zone, IBZ)，也有一部分可以進入梗死區，而且進入腦內的MSC數量和療效有明確的正相關[2,18]?？梢?，進入腦內的MSC如何發揮在腦梗死中的治療作用還沒有明確的結論，為了研究這個問題，對移植細胞進行標記就非常重要。對移植細胞的標記多采用病毒將GFP基因轉入MSC的方法，這種方法比較費時費力，另外轉染效率通常不能達到90%以上；最大的問題是GFP熒光在細胞分化后常常丟失。

生物染料一直是常用的細胞標記試劑。對于標記后的細胞是否會泄露出這些生物染料并造成周圍細胞，特別是在體的宿主細胞的污染，一直是一個必須慎重考慮的問題。本實驗顯示，按照200 nmol/L濃度CM-DiI標記的人BM-MSC，可以達到接近100%的標記效率；無論和其他細胞共培養還是移植入動物體內，標記細胞都沒有造成對未標記細胞的明確污染。這就說明，這種標記方式基本可以滿足觀察植入細胞的遷移的要求。

出乎預料的是當CM-DiI濃度較高的時候(1 000 nmol/L)，會造成被標記的人BM-MSC 紅色熒光較強，這就會造成在熒光顯微鏡下和綠色通道串色的現象。通過降低標記濃度可以較好地解決這一問題。最終和BDNF的雙標記實驗顯示，移植細胞攜帶的CM-DiI可以和BDNF免疫染色雙標，由此證實, CM-DiI不僅可以高效標記人BM-MSC, 還適用于鑒定產生細胞因子的干細胞。

筆者發現在腦內梗死區域中表達的BDNF的細胞，部分被 CM-DiI 標記，換言之就是來自于移植細胞。這就說明在腦梗死后3 d，和宿主細胞產生營養因子相比，移植細胞產生營養因子BDNF在腦梗死恢復中的作用也是比較重要的。

本文的主旨是確定CM-DiI適用于鑒定人BM-MSC移植后產生BDNF，以及找到適宜的CM-Dil工作濃度，傾向于定性而非具體定量。本實驗發現部分帶有CM-DiI紅色熒光的細胞同時產生BDNF，說明表達BDNF的細胞既來自于宿主自身，也來自于植入的人BM-MSC細胞。下一個問題是，腦內BDNF有多少由植入細胞產生，有多少由宿主自身產生。這是個非常重要的問題，本課題組將在今后的工作中逐步回答。

被標記的細胞分裂增生后以及分化后是否還可以有效地被觀察到依然沒有定論，這也是今后的工作將要回答的問題。

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編輯 孫超淵

CM-DiI labeling human bone marrow mesenchymal stem cells and was used in identifying BNDF expressing cell after transplantation

Zhao Chunsong1,2, Zou Haiqiang3, Li Xiaobo4, Yan Xiaoming5, Guan Yunqian1,2*, Zhang Yu1,2

(1.DepartmentofCellBiology,XuanwuHospital,CapitalMedicalUniversity,Beijing100053,China; 2.KeyLaboratoryofNeurodegeneration,MinistryofEducation,Beijing100053,China; 3.DepartmentofNeurology,TheGeneralHospitalofGuangzhouMilitaryCommandinGuangzhou,Guangzhou510010,China; 4.DepartmentofNeurosurgery,NorthernJiangsuPeople’sHospital,Yangzhou225001,JiangsuProvince,China; 5.DepartmentofFunctionNeurosurgery,XuanwuHospital,CapitalMedicalUniversity,Beijing100053,China)

Objective To observe whether the CM-DiI carried by human bone marrow mesenchymal stem cells (BM-MSC) after labeling will contaminate the surrounding cells in vitro and in vivo and be used in identifing brain derived neurotrophic factor (BDNF) production. Methods The human bone marrow derived mesenchymal stem cells were labeled by CM-DiI at different concentrations and the labeling percentages were observed. The CM-DiI labeled human BM-MSCs were co-cultured with green fluorescence protein (GFP) labeled 293T cell for 7 days. Then the contamination of 293T cells by CM-DiI was observed. The cerebral ischemia rat model

CM-DiI labeled human BM-MSCs intravenously transplantation, the overlapping of red fluorescence with host neurons and brain derived neurotrophic factor BDNF in the host brain were observed. Results The human BM-MSCs could be successfully labeled by CM-DiI at 1 000, 200,100, and 20 nmol/L. The concentrations of 1 000 and 200 nmol/L reached more than 98% labeling percentages which were significantly higher than that labeled by 100 and 20 nmol/L(P<0.01). After 7 days co-culture of GFP labeled 293T cells, the CM-DiI labeled human BM-MSCs didn’t contaminate the 293T cells. Three days after transplantation, the CM-DiI labeled human BM-MSCs migrated into the infarct area of brain ischemia rats, but didn’t bring any red fluorescence into the host cells. CM-DiI labeled human BM-MSCs could be double labeled by BDNF. Conclusion CM-DiI could label human BM-MSCs effectively. The 200 nmol/L CM-DiI labeled human BM-MSCs will not contaminate the surrounding cells both in vitro and in vivo. The CM-DiI (200 nmol/L) labeling can be used in identifying transplanted BM-MSCs which are expressing BDNF.

mesenchymal stem cells；CM-DiI; transplantation；cerebral infarct; brain derived neurotrophic factor

國家自然科學基金(81371377),北京市科委健康培育項目(Z111107067311033)，北京市科技新星項目(2009B22)。This study was supported by National Natural Science foundation of China (81371377), Beijing Municipal Science and Technology Commission (Z111107067311033)，Beijing Nova Program of Science and Technology (2009B22).

時間：2017-06-09 17∶26 網絡出版地址：http://kns.cnki.net/kcms/detail/11.3662.r.20170609.1726.018.html

10.3969/j.issn.1006-7795.2017.03.019]

Q2

2016-10-17)

*Corresponding author， E-mail：guanyunqian@aliyun.com