單乃榮孫 甜羅昭軍陳 幸韋 緯班燕桃吳 濤葉云鋒唐 建李錦泉賀敏華
(1.廣西獸藥監察所,廣西南寧 530001;2.廣西養蜂指導站,廣西南寧 530022)
超高效液相色譜-串聯質譜法對蜂蜜中土霉素殘留的檢測
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(1.廣西獸藥監察所,廣西南寧 530001;2.廣西養蜂指導站,廣西南寧 530022)
建立了蜂蚩中土霉素藥物殘留檢測的超高效液相色譜_串聯質譜檢測方法。以McIlvajne_Na2EDTA緩沖液為提取液,經HLB固相萃取小柱凈化,脫溶劑后用甲醇水溶解,在超高效液相色譜_串聯質譜上進行檢測。土霉素在0~200ng·ml_1濃度范圍內呈良好的線性關系,相關系數R2>0.999。添加藥物水平40~200μg·kg_1的回收率在65.1~98.7%。土霉素的檢測限為5μg·kg_1,定量限為10 μg·kg_1。方法快速簡便,準確可靠,重現性好,可用于監測蜂蚩中土霉素的含量。
;蜂蚩;土霉素;超高效液相色譜_串聯質譜法
土霉素是最常用四環素類廣譜抗生素藥物之一,具有防治見效快,價格低廉,容易購買的特點,作為獸藥和飼料添加劑在食品動物中廣泛應用。土霉素被非法用于養殖過程中蜂群病蟲害的治療和預防,劑量過大或療程過長,造成土霉素藥物殘留除了其毒副作用對人直接危害外,更為嚴重的是動物性食品中殘留容易誘導人類致病菌產生耐藥性,從而不利于該類藥物在人類疾病的治療[1~3],因此必須十分重視土霉素在動物性食品中的殘留問題。在歷年國家蜂產品質量安全通報中均有檢出,使得土霉素在蜂產品中的藥物殘留越來越受到關注。目前已發布的 GB/T18932.23-2003《蜂蜜中土霉素、四環素、金霉素、強力霉素殘留量的測定方法液相色譜-串聯質譜法》[4]中凈化需要兩種小柱,處理過程較多,易造成損失,回收率不理想;農業部1025號-12-2008《雞肉、豬肉中四環素類藥物殘留檢測 液相色譜-串聯質譜法》[5],由于受蜂蜜樣品基質影響分析結果較大,也不適用。我們通過飼喂試驗,考察土霉素在蜂蜜中的代謝過程,并對樣品前處理和儀器條件進行研究,改進后的方法快速簡便,準確可靠,重現性好,為有效監控蜂蜜樣品中土霉素藥物殘留提供技術支持。
1.1 儀器和試劑
1.1.1 儀器 超高效液相色譜-串聯質譜儀(美國Waters,TSQ QUANTUMACCESS,配有電噴霧電離源);N-EVAP 112氮吹儀,美國Organomatian assocaiate公司;3K15高速冷凍離心機,美國Sigma公司;HY-54回旋振蕩器,國華電器有限公司;精密pH計,梅特勒公司;Mettler AE 240分析天平(感量0.0001 g);Mettler PL602-S電子天平(感量0.01 g);美國Waters固相萃取裝置。
1.1.2 試劑 土霉素對照品來自中國獸醫藥品監察所,批號為K0031208,含量89.5%;有效期未標示;乙腈(色譜純)、甲醇(色譜純);氫氧化鈉、磷酸氫二鈉、檸檬酸、乙二胺四乙酸二鈉、甲酸;水為實驗室一級水;HLB固相萃取柱,60 mg,3cc,美國Waters公司。
1.1.3 制備試劑 氫氧化鈉溶液(1.0 mol·L-1):稱取氫氧化鈉1 g,加水溶解并稀釋至100 mL;McIlvaine-Na2EDTA緩沖液:分別取檸檬酸12.9 g,磷酸氫二鈉10.9 g,乙二胺四乙酸二鈉37.2 g,加水900 ml溶解,用1.0 mol·L-1氫氧化鈉溶液調pH至4.0±0.5,加水稀釋至1000 ml;0.1%甲酸水溶液,取1 ml甲酸用水稀釋至1000 ml。
1.2 陽性樣品制備
通過人為在花粉和蜂蜜中添加藥物飼喂至蜂群,選用“藥物+蜂蜜”、“藥物+花粉”兩種方式進行平行試驗;用藥量為常規用量的2倍(參照成人用藥量飼喂10脾蜂為常規用量),喂藥7、21、45日后取蜜檢測。
1.3 對照品溶液制備
土霉素標準儲備液的配制:取土霉素對照品適量,精密稱定,按土霉素計,用甲醇溶解并稀釋成濃度為1mg·ml-1的溶液,作為標準儲備液。置-20℃冰箱中保存,有效期為1個月。
土霉素標準工作液的配制:準確量取適量標準儲備液,用初始流動相稀釋成適宜濃度的土霉素標準工作液。臨用前配制。
1.4 試驗方法
1.4.1 色譜條件 色譜柱為WATERS ACQUITY UPLC BEH C18柱 100 mm×2.1 mm,粒度1.7 μm;色譜柱溫30 ℃;流速0.25 ml·min-1;進樣量2μl;流動相為A:0.1%的甲酸水溶液,B:乙腈,采用梯度洗脫:0 min~6 min,90%A線性變化至62%,6~7 min,62%A線性變化至90%A,7 min~9 min,90%A。
1.4.2 質譜條件 電噴霧離子化,正離子檢測,噴霧電壓4000 V,離子傳輸管溫度400 ℃,鞘氣流速15 L·min-1,碰撞氣為氬氣,定性離子對、定量離子對及碰撞能量的參考值見表1。

表1 土霉素的質譜條件
1.4.3 定性與定量 該方法定性滿足四個條件:①試劑空白和樣品空白不能出現與陽性對照相同的離子峰;②特征離子色譜峰的信噪比(S/N)都在3:1以上;③試樣溶液色譜峰保留時間,應與校正溶液的一致,允許偏差為±2.5%;④試樣溶液離子豐度比應與校正溶液一致,定量時以響應強度最強離子作為定量離子對進行計算。
1.4.4 標準曲線的繪制 依次準確移取標準工作液適量,用空白樣品提取液稀釋成濃度為土霉素0、10、20、40、60、100、200 ng·mL-1的系列標準溶液,由低濃度到高濃度進樣,按照液相色譜條件分析,以色譜峰面積為縱坐標,對應標準溶液濃度為橫坐標,繪制標準曲線。
1.4.5 樣品溶液的前處理 稱取(2±0.05)g樣品,置10 ml容量瓶中,加入McIlvaine-Na2EDTA緩沖液至刻度,充分混勻,振搖30 min,9000 r·min-1離心10min,溫度低于10 ℃,備用。
精密量取備用液5 ml過HLB小柱(用甲醇、水各5 ml預洗活化),用水、5%甲醇水溶液各5 ml淋洗,減壓抽干。用甲醇5 ml洗脫,減壓抽干,收集洗脫液,洗脫液用水浴氮氣吹干(溫度低于40℃),用0.1%甲酸水1 ml充分溶解殘余物,過濾膜后作為試樣溶液,供超高效液相色譜-串聯質譜儀測定。
1.4.6 靈敏度確定 將適量藥物加入到空白蜂蜜中,制成2、5、10μg·kg-1的三個濃度添加樣品,經上述方法進行處理后,用LC-MS/MS檢測。觀察藥物特征離子質量色譜峰的信噪比(S/N)和對應藥物濃度,(S/N)>3者定其為方法檢測限;(S/N)>10者定為其方法定量限。
1.4.7 準確度和精確度的確定
采用標準添加方法,取土霉素標準工作液適量,分別添加到空白蜂蜜中,制得濃度為40、100、200 μg·L-1的系列空白添加試料(低、中、高三個濃度),每個濃度做6個平行試驗,重復3次,求批內批間相對標準偏差。

表2 蜂蜜中添加土霉素的精密度、回收率試驗測定結果
2.1 標準曲線
按照上述配制方法,土霉素在0~200 ng·mL-1的濃度范圍內線性關系良好,得回歸方程為y=18341x+10106,相關系數R2>0.999。
2.2 方法靈敏度
按上述方法進行處理,結果顯示方法檢測限為5μg·kg-1,定量限為10μg·kg-1。空白蜂蜜、空白蜂蜜添加土霉素的總離子流圖(Total Ion Current,TIC)和特征離子質量色譜圖見圖1、2。
2.3 精密度和回收率試驗
按上述1.4.5方法進行處理,分別計算批內和批間精密度和回收率結果見表2。該方法準確度較高,回收率65.0%以上,批內變異系數小于12%,批間變異系數小于3%。
2.4 分組飼喂土霉素實驗的檢測結果
分組飼喂土霉素,不同方式在不同時間點的蜂蜜中土霉素濃度的實驗的檢測結果見表3,從表中可看出蜂蜜在給藥7d后,土霉素+蜂蜜給藥方式土霉素藥物濃度最高為820×10 μg.kg-1,土霉素+花粉方式45d的土霉素藥物濃度最小為2.38 μg.kg-1。蜂蜜中土霉素沒有雜質干擾且峰形良好,具體見圖3。

表3 飼喂土霉素含量測定結果

圖1 空白蜂蜜樣品溶液TIC和特征離子色譜圖

圖2 空白樣品添加土霉素對照品溶液TIC和特征離子色譜圖(10 μg·kg-1)

圖3 飼喂土霉素的蜂蜜樣品溶液TIC和特征離子色譜圖
2.5 色譜條件的優化
本方法比較了甲醇和乙腈、水和0.1%、0.3%甲酸水溶液作為流動相對分離的影響。在C18色譜柱上乙腈的分離度優于甲醇,甲醇水溶液優于水。結果0.1%甲酸水和乙腈梯度洗脫對樣品進行分析,土霉素色譜峰形對稱性良好。
3.1 前處理方法的優化
本方法通過對樣品前處理條件的充分優化改進,建立了適用于蜂蜜中土霉素藥物殘留檢測的UPLC-MS/MS方法。與GB/T 18932.23-2003比較,該檢測方法快速、簡便、結果可靠,靈敏度和精確度均能滿足獸藥殘留分析方面的要求。
3.2 安全風險
通過此次試驗,同劑量藥物的兩種喂藥方式在蜂蜜中均檢測出高濃度藥物,蜂蜜中土霉素放置時間的延長,藥物濃度明顯地消減,45天后檢測結果顯示仍然有殘留,說明無論是“花粉+藥物”還是“蜂蜜+藥物”的用藥方式,均會造成產品污染,影響產品安全,并且代謝時間長,養殖過程中應禁止使用。
[1] 許喜蘭,許曉君.蜂產品中藥物殘留的來源及其控制措施[J].養蜂科技,2004,(6):24.
[2] 閆小峰.四環素類抗生素殘留檢測方法研究進展[J]中國獸藥雜志,2010,44(5):47-50.
[3] 張鑫,吳劍平,李丹妮,等.UPLC-MS/MS檢測七種動物源食品中四環素類藥物殘留量的研究[J].中國獸藥雜志,2015,49(12):36-42.
單乃榮(1969—),女,獸醫師,主要從事畜禽產品安全、獸藥殘留檢測與研究。