木薯渣中酵母菌的分離鑒定及發酵性能測定

楊承劍，謝芳，李孟偉，梁辛，梁賢威*，李麗莉，郭艷霞，彭開屏

（中國農業科學院廣西水牛研究所，廣西南寧530001）

木薯渣中酵母菌的分離鑒定及發酵性能測定

楊承劍，謝芳，李孟偉，梁辛，梁賢威*，李麗莉，郭艷霞，彭開屏

（中國農業科學院廣西水牛研究所，廣西南寧530001）

為篩選出適合木薯渣發酵的專用酵母菌，試驗以自然發酵的堆貯木薯渣為樣品，采用傳統分離培養法分離得到8株酵母菌，分別命名為Y1、Y4、Y7、Y8、Y11、Y12、Y18、Y21。通過形態學、生理生化特征鑒定及26S rDNAD1/D2區序列分析，最終鑒定出菌株Y7、Y8、Y11、Y18、Y21為皺褶假絲酵母（Candida rugosa），菌株Y1、Y4、Y12為乙醇假絲酵母（Candida ethanolica），并對其兩種代表菌株Y1和Y7進行發酵性能測試，結果表明，菌株Y1和Y7的最適培養溫度分別為34℃和36℃，最適pH分別為6.5和6.0，培養16 h左右，其OD600nm值均達到最大值，分別為2.872和2.984。

木薯渣；酵母；分離；鑒定；26S rDNA

木薯（Manihot esculenta）又名樹薯，與馬鈴薯、紅薯并列為世界三大薯類作物[1-2]。木薯渣是生產木薯淀粉和酒精后的副產物，處理不當會造成極大的浪費，污染周邊環境。木薯渣飼料化是有效利用途徑之一，但木薯渣中含有氫氰酸，過量飼喂容易引起動物中毒，從而導致生產性能下降[3]。研究木薯渣的飼用價值，不僅可以減少環境污染，實現資源就地轉化，還能緩解當前飼料原料緊張狀態，促進畜牧業的發展[4]。木薯渣堆貯發酵是一個復雜的微生物菌群更替過程，有大量的乳酸菌和酵母菌參與，改變其理化性質，使其所含的粗纖維降解為動物易消化吸收的單糖、雙糖、氨基酸等小分子物質，從而提高木薯渣作為動物飼料的利用率[5]。酵母是一類單細胞微生物，具有個體大、蛋白質含量高、雜食性強、易分離培養、代謝產物多、綜合利用廣等特點，廣泛應用于釀酒、面點、飲料等食品生產領域，而飼用酵母一般有熱帶假絲酵母、產朊假絲酵母、啤酒酵母、紅酵母等[6]。近年來，酵母在飼料中的研究較多，但從自然發酵木薯渣中分離酵母菌并應用于木薯渣發酵的研究仍十分有限，本試驗擬從堆貯的木薯渣中篩選出適合木薯渣發酵的優良酵母菌并對其發酵特性進行研究，以期將其擴大培養后發酵木薯渣，提高木薯渣的品質和適口性，為木薯渣的飼料化利用提供科學依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

木薯渣樣品5份，于實驗當天取自廣西水牛研究所水牛種畜場，在取樣1 h內到達實驗室，5份樣品各取5 g混勻，置于500 mL裝有無菌水三角瓶中，用200目紗布過慮后備用。

酵母膏胨葡萄糖瓊脂培養基（yeast extract peptone dextrose，YPD）、YPD肉湯培養基：青島日水生物技術有限公司；酵母基因組脫氧核糖核酸（deoxyribonucleicacid，DNA）快速提取試劑盒、蛋白酶K、TaqDNA：北京康為世紀科技有限公司；無水乙醇、β-巰基乙醇：天津市科密歐化學試劑有限公司；其他試劑（磷酸二氫鉀、磷酸氫二鉀、氯化鈉、鹽酸、氫氧化鈉）均為國產分析純。

1.2 儀器與設備

SW-CJ-1F超凈工作臺：蘇州蘇潔凈化設備有限公司；SPX-150生化培養箱：北京科偉永興儀器有限公司；UV-8000紫外可見分光光度計：上海無析儀器有限公司；Thermo Scientific渦旋振蕩器：雷琪實驗器材有限公司；YM50立式壓力蒸氣滅菌器：上海三申醫療器械有限公司；HC-2518R冷凍高速離心機：北京京立離心機有限公司；JD500-2型電子天平：梅特勒-托多利儀器有限公司；ECLIPSE 50i正置生物顯微鏡：Nikon日本公司；DYCP-31DN DNA電泳槽、DYY-5穩壓電泳儀：北京六一儀器廠；DK-8D電熱恒溫水槽：上海一恒科學儀器有限公司；FR980凝膠成像儀：上海復日科技儀器有限公司；2720 thermal cycler聚合酶鏈式反應儀（polymerase chain reaction，PCR）：美國應用生物系統公司；脫氧核糖核酸（deoxyribonucleic acid，DNA）提取試劑盒：北京康為世紀科技有限公司。

1.3 試驗方法

1.3.1 酵母菌的分離純化

取10 mL混合木薯渣過濾后的溶液于90 mL無菌生理鹽水中，在渦旋儀上充分混勻，按梯度分別稀釋成10-1、10-2、10-3、10-4、10-5樣液。取以上5種稀釋度的樣液各20 μL，用無菌玻璃刮鏟均勻地涂布于YPD瓊脂平板上，于28℃恒溫培養箱中培養48～72 h，用滅菌牙簽挑取生長較快、形態、顏色不同的菌落，劃線接種于YPD瓊脂平板上，反復分離、純化，直至得到單一菌落，將純化后的菌株分別接種于滅菌后的YPD肉湯培養基中增殖培養12 h，編號、保存于20%甘油管中，置-20℃冰箱中保藏備用。

1.3.2 酵母菌的形態特征及生理生化鑒定

形態特征：將菌株接種到含杜氏管的YPD肉湯培養基中，27℃培養3 d，觀察杜氏管內是否有氣泡、是否渾濁、試管底部是否成環或成島，并制水浸片于顯微鏡下觀察，觀察記錄酵母菌的無性繁殖方式及細胞形狀[7]。

生理生化鑒定：參照《酵母菌的特性與鑒定手冊》[8]和《真菌鑒定手冊》[9]進行。

1.3.3 菌株的26S rDNA D1/D2區序列分析鑒定

DNA提?。簶悠稤NA使用酵母菌基因組DNA提取試劑盒提取，具體操作步驟按說明書進行；

PCR擴增：使用康為世紀2×EsTaqMasterMix進行PCR擴增，擴增引物：正向引物NL1（5′-GCATATCAATAAGCG GAGGAAAAG-3′），反向引物NL4（5′-GGTCCGTGTTTC AAGACGG-3′）；

反應體系如下：10×PCR緩沖液5 μL；正、反向引物均為10 mmol/L各2.5 μL；dNTP（10 mmol/L）4 μL；基因組DNA 1.0 μL；TaqDNA聚合酶0.5 μL；雙蒸水34.5 μL。PCR擴增循環參數為：98℃預變性2 min；98℃變性10 s，56℃退火15 s，72℃延伸2 min，共35個循環；再72℃延伸5 min；

電泳：使用1%的瓊脂糖凝膠電泳，電壓120 V，電泳30 min，每孔上樣1 μL。

1.3.4 構建系統進化樹

將測序結果與GenBank中的序列進行比對，選取GenBank中相似性最高的已知序列構建系統進化樹，通過Clustalx1.83比對后，再用MEGA4.0軟件采用Neighbour-Joining方法構建系統發育樹[10]。

1.3.5 菌株的發酵性能測定

選取分離鑒定出的菌株進行發酵性能測定，將菌株活化后，以3%的接種量接種到YPD肉湯培養基內，28℃培養過夜，在不同發酵溫度（22℃、24℃、26℃、28℃、30℃、32℃、34℃、36℃、38℃、40℃）[11]、不同pH（4.0、4.5、5.0、5.5、6.0、6.5、7.0）培養24 h，以確定菌株的最適生長溫度和pH值，然后分別在最適溫度和pH值條件下培養菌株，觀察其24 h菌株的生產力，期間每隔2 h取樣一次，用紫外可見分光光度計在波長600 nm處測定其吸光度值[12]，繪出菌株生長曲線的變化趨勢。

2 結果與分析

2.1 酵母菌的形態特征及生理生化鑒定

從木薯渣中篩選出的菌株在YPD平板培養基上大致呈現出2種不同的菌落形態，其主要包括：菌落是否有突起、大小、顏色、表面光滑度等[13]。挑取同一平板上菌落形態相同的菌株3～5株，經多次純化后，其菌落形態、鏡檢結果均保持一致。選取生長旺盛、形態不同的菌落，進一步劃線分離，最終分離得到8株具有代表性的單菌落，將其分別編號為Y1、Y4、Y7、Y8、Y11、Y12、Y18、Y21。分離菌株的菌落及細胞形態特征見表1和圖1，生理生化鑒定結果如表2所示。

圖1 顯微鏡下酵母菌形態（40×10）Fig.1 Morphology of yeasts under microscopy(40×10)

由表1可知，菌株的菌落形態特征為表面光滑，不透明，菌落呈卵圓形。

表1 酵母菌的形態特征Table 1 Morphological characteristics of yeasts

表2 酵母菌的生理生化特征Table 2 Physiological and biochemical characteristics of yeasts

由表2可知，所有菌株的碳源試驗中麥芽糖、D-半乳糖、蔗糖、乳糖、淀粉均不能被同化；菌株Y7、Y8、Y11、Y18、Y21在37℃培養試驗中生長良好，重氮基蘭B（DBB）試驗與脲酶試驗均為陰性，這與Candida屬的Candida rugosa的特征極為相似，而菌株Y1、Y4、Y12則在42℃培養試驗中生長良好，且重氮基蘭B（diazo base blue，DBB）試驗與脲酶試驗均為陰性，與Candida屬的Candida ethanolica的特征相同，參照《酵母菌的特征與鑒定手冊》檢索表，可初步判定菌株Y1、Y4、Y12可能為釀酒酵母屬（Saccharomyces）或假絲酵母屬（Candida），而菌株Y7、Y8、Y11、Y18、Y21可初步判斷為假絲酵母屬（Candida）。然而，僅根據形態和生理生化特性并不能準確鑒定菌株至種水平，還需要靠分子生物學鑒定來進一步確認[14]。

2.2 菌株的26S rDNA鑒定

將分離到的8株酵母菌基因組進行26S rDNA區PCR擴增[15]，對擴增結果進行瓊脂糖凝膠電泳檢測，電泳順序為：2 000 bp Marker、Y1、Y4、Y7、Y8、Y11、Y12、Y18、Y21，菌株擴增后的電泳結果見圖2。

圖2 菌株26S rDNA PCR擴增產物電泳圖Fig.2 Electrophoretograms of 26S rDNA PCR amplification products of strains

由圖2可知，這8株菌擴增出的片段長度在500～750bp，條帶清晰可見，無雜帶，可用于菌株26S rDNA測序。將酵母菌基因PCR擴增成功的電泳目的條帶片段回收，送生工生物（上海）有限公司進行測序，將測序結果拼接并輸入GenBank數據庫，運用BLAST程序將測序結果與NCBI核酸數據庫中的公開序列進行比對（http：//blast.ncbi.nlm.nih. gov/Blast），并運用MEGA4.0軟件采用Neighbour-Joining方法構建系統發育樹，結果如圖3所示。

從圖3可知，菌株Y7、Y8、Y11、Y18、Y21的26S rDNA與數據庫存報道的Candida rugosa菌株的26S rDNA核苷酸序列聚集于同一簇且同源性達到99%以上，菌株Y1、Y4、Y12的26S rDNA與數據庫存報道的Candida ethanolica菌株的26S rDNA核苷酸序列聚集于同一簇，且同源性達到99%以上，結合之前的形態特征及生理生化特性，確定為Y1、Y4、Y12為乙醇假絲酵母（Candida ethanolica），Y7、Y8、Y11、Y18、Y21確定為皺褶假絲酵母（Candida rugosa）。

圖3 菌株26S rDNA基因序列系統發育樹Fig.3 Phylogenetic tree of 26S rDNA gene sequence of strains

2.3 菌株的發酵性能測定

2.3.1 篩選酵母菌的最適生長溫度測定

根據圖3的結果可以看出，因菌株Y1和Y7 PCR擴增出的目的條帶明顯處在不同位置條帶上，Y1靠近700 bp，Y7靠近500 bp，說明這兩株菌分可能屬不同菌種，再后面通過26S rDNA測序結果Y1、Y4、Y12為乙醇假絲酵母（Candida ethanolica），Y7、Y8、Y11、Y18、Y21確定為皺褶假絲酵母（Candidarugosa），取Y1和Y7為代表菌株進行下面的發酵實驗，以避免重復實驗。Y1（乙醇假絲酵母Candidaethanolica）和Y7（皺褶假絲酵母Candida rugosa）接種于YPD肉湯培養基中，以不同溫度條件下，將菌株增殖培養24 h后，測定其OD600nm值，結果如圖4所示。

圖4 不同溫度條件下分離菌株在YPD肉湯培養基中的生長曲線Fig.4 Growth curve of isolated strains in broth medium under different temperature

由圖4可知，菌株Y1和Y7的OD600nm值是在24～36℃范圍內隨著溫度的升高而逐漸增大，在36℃后變小；Y1的 OD600nm值在34℃時達到最高值2.512，Y7的OD600nm值則在36℃時達到最高值2.663。故Y1和Y7的最適生長溫度分別是34℃和36℃。

2.3.2 篩選酵母菌的最適生長pH測定

選取鑒定出的菌株Y1和Y7，分別在不同pH值的YPD肉湯培養基中，按各自最適溫度培養24 h，測定其OD600nm值，結果如圖5所示。

圖5 不同pH值條件下分離菌株在YPD肉湯培養基中的生長曲線Fig.5 Growth curve of isolated strains in broth medium under different pH

由圖5可知，菌株在pH4.0時受到明顯抑制，基本不生長，而在pH4.5～6.0范圍內，OD600nm值則隨著pH值的升高而增加；Y1的OD600nm值在pH6.5時達到最高，之后逐漸下降，而Y7的OD600nm值則在pH6.0時達到最高，之后也逐漸下降。故Y1和Y7的最適生長pH值分別是6.5和6.0。

2.3.3 篩選酵母菌生長曲線的測定

選取鑒定出的菌株Y1和Y7，分別在其最適溫度和最佳pH的YPD肉湯培養基中培養24 h，測定其OD600nm值，結果如圖6所示。

圖6 最適溫度和pH條件下分離菌株在YPD肉湯培養基中的生長曲線Fig.6 Growth curve of isolated strains in broth medium under the optimal temperature and pH

由圖4～圖6綜合可知，菌株Y1和Y7的最適培養溫度分別是34℃和36℃，最適pH分別為6.5和6.0，兩株菌都在培養10 h左右開始進入對數生長期，培養16 h后，其OD600nm值達到最大，分別為2.872和2.984，之后便進入穩定期，其OD600nm值不再繼續增加。

3 結論

試驗采用傳統分離培養方法從自然發酵堆貯木薯渣樣品中分離篩選出8株酵母菌，通過形態、生理生化及26SrDNA鑒定出乙醇假絲酵母（Candida ethanolica）3株，皺褶假絲酵母（Candida rugosa）5株，分別選取其中代表性菌株Y1和Y7進行發酵性能測試，結果表明，菌株Y1和Y7最適培養溫度分別為34℃和36℃，最適生長pH分別為6.5和6.0，將其在最適溫度和pH各培養16 h左右，其發酵生產力均達到最大。本研究側重于適合木薯渣發酵酵母菌的篩選與鑒定，可為后續木薯渣飼料化提供優良的酵母菌株。

[1]黃萍，齊仁立.木薯渣作為飼料資源的開發與利用[J].四川畜牧獸醫，2013，39（12）：34-36.

[2]艾必燕，劉長忠，陳建康，等.木薯渣發酵飼料的工藝篩選[J].飼料工業，2012，33（7）：57-60.

[3]樊懿萱，王鋒，王強，等.發酵木薯渣替代部分玉米對湖羊生長性能、血清生化指標、屠宰性能和肉品質的影響[J].草業學報，2017，26（3）：92-93.

[4]冀鳳杰，王定發，侯冠彧，等.木薯渣飼用價值分析[J].中國飼料，2016，12（6）：37-38.

[5]張愛華，鄧雪娟，李婷婷，等.木薯渣飼料資源在畜禽生產中的應用研究進展[J].飼料與畜牧，2015，12（9）：45-46.

[6]白曉婷.酵母類產品在飼料中的研究與應用[J].中國飼料，2015，12（2）：8-9.

[7]李豪，章霞，張靜，等.草莓果酒酵母菌的篩選、鑒定及耐受性研究[J].中國釀造，2017，36（2）：86-87.

[8]巴尼特J A.胡瑞卿譯.酵母菌的特征與鑒定手冊[M].青島：青島海洋大學出版社，1990：120-397.

[9]魏景超.真菌鑒定手冊[M].上海：上?？萍汲霭嫔纾?997：102-117.

[10]謝芳，曾慶坤，楊承劍，等.水牛乳中高產γ-氨基丁酸乳酸菌的篩選與鑒定[J].中國釀造，2015，34（4）：103-104.

[11]馬斌，隋超，馬長中.林芝青稞酒曲酵母菌的分離鑒定及性能測定[J].中國釀造，2017，36（2）：82-83.

[12]趙娜，程金芝.籽粒莧營養面包酵母菌的分離與鑒定[J].食品研究與開發，2015，36（24）：169-170.

[13]武偉偉，牟德華，李艷.樹莓酒自然發酵過程中酵母菌的分離與鑒定[J].食品工業科技，2015，36（10）：187-188.

[14]邵冰潔，陶永清，王素英，等.傳統法糯米發酵炸糕中酵母菌的分離鑒定及優勢菌株篩選[J].現代食品科技，2016，32（7）：92-93.

[15]何蕾.我國傳統奶制品中乳酸菌多樣性研究[D].成都：四川農業大學，2010.

Isolation,identification and fermentation ability of yeasts from cassava residues

YANG Chengjian,XIE Fang,LI Mengwei,LIANG Xin,LIANG Xianwei*,LI Lili,GUO Yanxia,PEN Kaiping
(Guangxi Buffalo Research Institute,Chinese Academy of Agricultural Sciences,Nanning 530001,China)

In order to screen the optimal dedicated yeasts for cassava residue fermentation,using natural fermented cassava residue as raw material, eight stains were isolated by traditional culture method,namely Y1,Y4,Y7,Y8,Y11,Y12,Y18,and Y21.The strains were identified by morphology, physiological and biochemical characteristics and 26S rDNA sequence analysis.The results showed that strain Y7,Y8,Y11,Y18,Y21 wereCandida rugosa,strain Y1,Y4,Y12 wereCandida ethanolica.The results of fermentation ability of representative strains showed that the optimal temperature and optimal pH of strain Y1 and Y7 was 34℃,36℃,respectively,and 6.5,6.0,respectively.After 16 h incubation,the OD600nmof both strains reached the maximum,which were 2.872 and 2.984,respectively.

cassava residues;yeast;isolation;identification;26S rDNA

Q939.9

0254-5071（2017）07-0090-05

10.11882/j.issn.0254-5071.2017.07.020

2017-03-31

廣西水產畜牧獸醫局科技項目（桂漁牧科201352039）；廣西自然科學基金面上項目（2014GXNAFA118082）；國家自然科學基金項目（31460613）

楊承劍（1981-），男，副研究員，博士，主要從事水牛營養與飼料科學研究工作。

*通訊作者：梁賢威（1962-），男，研究員，碩士，主要從事水牛營養與繁殖研究工作。