999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

玉米ZmMGT0基因過表達(dá)載體的構(gòu)建及擬南芥遺傳轉(zhuǎn)化研究

2018-01-12 01:07:16李洪有張素芝陳慶富
華北農(nóng)學(xué)報(bào) 2017年6期
關(guān)鍵詞:植物

李洪有,張素芝,陳慶富

(1.貴州師范大學(xué) 蕎麥產(chǎn)業(yè)技術(shù)研究中心,貴州 貴陽 550001;2.四川農(nóng)業(yè)大學(xué) 玉米所,農(nóng)業(yè)部西南玉米生物學(xué)與遺傳育種重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,四川 成都 611130)

鎂是葉綠素的重要組成成分和超過300種酶的激活劑,參與了植物光合作用、呼吸作用、N代謝等眾多重要的生理代謝過程[1-2]。鎂缺乏將會(huì)抑制植物光合作用,同化物由“源”器官向“庫”器官的分配,進(jìn)而影響植物的正常生長發(fā)育,并最終影響農(nóng)產(chǎn)品的產(chǎn)量與品質(zhì)[3-4]。研究表明,CorA/MRS2/MGT-型鎂離子轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白在生物體鎂離子平衡中起著重要作用[5-9]。

在植物中,CorA/MRS2/MGT-型鎂離子轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白基因已在擬南芥、水稻、玉米、鐵皮石斛、巴西橡膠樹中克隆[10-14],但有關(guān)該類蛋白的功能研究主要集中在擬南芥中。研究表明,幾個(gè)擬南芥MRS2/MGT-型鎂離子轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白在擬南芥低鎂脅迫抵抗中起著重要作用。Deng等[15]在煙草中的研究發(fā)現(xiàn),過表達(dá)擬南芥AtMGT1基因增加了轉(zhuǎn)基因煙草植株根對Mg2+的吸收,增強(qiáng)了轉(zhuǎn)基因植株對低鎂脅迫的抵抗。Gebert等[16]對擬南芥CorA/MRS2/MGT家族基因的T-DNA插入突變體進(jìn)行分析時(shí)發(fā)現(xiàn),mrs2-7植株不能在Mg2+濃度低于50 μmol/L 的培養(yǎng)條件下正常生長,表明AtMRS2-7/AtMGT7是擬南芥在低鎂環(huán)境下正常生長發(fā)育所必需的。Mao等[17]研究發(fā)現(xiàn),AtMRS2-4/AtMGT6在擬南芥根中的表達(dá)受低鎂脅迫誘導(dǎo),且在低鎂環(huán)境下其RNAi植株的根和葉中的Mg2+積累量均低于野生型植株,其生長受到的抑制明顯強(qiáng)于野生型植株,表明AtMRS2-4/AtMGT6介導(dǎo)的Mg2+吸收是擬南芥在低鎂環(huán)境下正常生長發(fā)育所必需的。最近,Oda等[18]通過對低鎂脅迫下EMS誘變的擬南芥M2群體篩選進(jìn)一步證明AtMRS2-4/AtMGT6和AtMRS2-7/AtMGT7是擬南芥在低鎂環(huán)境中正常生長發(fā)育所必需的。

雖然研究已經(jīng)表明,擬南芥CorA/MRS2/MGT-型鎂離子轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白基因在抵抗擬南芥低鎂脅迫中起著至關(guān)重要的作用,但該類基因在其他植物,尤其在作物中是否具有相關(guān)作用還不清楚。前面的研究發(fā)現(xiàn),玉米基因組中有12個(gè)CorA/MRS2/MGT-型鎂離子轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白基因,其中ZmMGT10(基因ID:GRMZM2G018706)具有鎂離子轉(zhuǎn)運(yùn)功能,其在根中特異性表達(dá),且表達(dá)受缺鎂脅迫誘導(dǎo),暗示其可能在抵抗植物低鎂脅迫中起作用[13]。本研究通過構(gòu)建ZmMGT10的過表達(dá)載體,在擬南芥中過表達(dá)該基因來研究它是否具有抵抗低鎂脅迫的功能。

1 材料和方法

1.1 試驗(yàn)材料

植物材料:野生型擬南芥(生態(tài)型為Col-0);菌株:大腸桿菌DH5α、根癌農(nóng)桿菌EHA105;載體:克隆載體pMD19-T、植物表達(dá)載體PCMBIA2300-eGFP;質(zhì)粒:pMD19-T∷ZmMGT10(農(nóng)業(yè)部西南玉米生物學(xué)與遺傳育種重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室保存)。

1.2 試驗(yàn)方法

1.2.1ZmMG10植物過表達(dá)載體構(gòu)建 根據(jù)ZmMGT10基因cDNA序列和PCMBIA2300-eGFP載體多克隆位點(diǎn)特征,設(shè)計(jì)帶有KpnⅠ酶切位點(diǎn)的上游引物ZmMGT10-FO(5′-ATGGTACCATGGGGAGGTTATCGGGAAG-3′)和帶有PstⅠ酶切位點(diǎn)的下游引物ZmMGT10-RO(5′-ATCTGCAGTCAACTGCCAAGTAGCCTGTTC-3′),以pMD19-T∷ZmMGT10質(zhì)粒為模板,擴(kuò)增ZmMGT10基因完整的ORF,將完整的ORF克隆到PCMBIA2300-eGFP載體的KpnⅠ/PstⅠ酶切位點(diǎn)間,得到PCMBIA2300∷ZmMGT10重組植物表達(dá)載體。

1.2.2 擬南芥遺傳轉(zhuǎn)化 采用凍融法將PCMBIA2300∷ZmMGT10重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)入根癌農(nóng)桿菌EHA105中,待生長在22 ℃長日照(16 h光照/8 h黑暗)條件下的擬南芥長出花蕾時(shí),利用蘸花法侵染擬南芥(中途多次侵染)[19]。轉(zhuǎn)化完畢后將擬南芥平放并用黑塑料袋蓋住,暗培養(yǎng)24 h后重新垂直放置小盆,在22 ℃長日照(16 h光照/8 h黑暗)條件下培養(yǎng),收獲T0種子。

1.2.3 轉(zhuǎn)基因擬南芥陽性苗鑒定 將T0種子用70%的酒精消毒2 min,再用2%的次氯酸鈉消毒15 min。消毒后的種子用無菌水沖洗干凈,隨后將種子用膠頭滴管均勻地點(diǎn)在含50 mg/L的卡那霉素MS固體培養(yǎng)基上,并在4 ℃黑暗春化處理3 d,隨后移入22 ℃光照培養(yǎng)箱培養(yǎng)。培養(yǎng)14 d后能在平板上正常生長的幼苗鑒定為初步鑒定的轉(zhuǎn)基因陽性苗,并將其移入土壤中,置于人工氣候室培養(yǎng)。取1個(gè)月大初步鑒定的轉(zhuǎn)基因陽性苗葉片,利用CTAB法提取DNA,利用上游引物35SF:5′-AAGGAAGGTGGCTCCTACAA-3′(CaMV35S啟動(dòng)子序列)和下游引物ZmMGT10R:5′-CGTTAGTCATGAACACCTCG-3′(ZmMGT10序列)對初步鑒定的陽性苗進(jìn)行基因組PCR檢測。單株收獲經(jīng)基因組PCR證實(shí)的轉(zhuǎn)基因擬南芥植株的T1種子。播種T1轉(zhuǎn)基因種子,提取T1轉(zhuǎn)基因植株RNA,利用實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測ZmMGT10基因在T1轉(zhuǎn)基因植株中的表達(dá)。

1.2.5 轉(zhuǎn)基因擬南芥Mg2+吸收分析 將14 d的野生型和轉(zhuǎn)基因株系#1的T1幼苗轉(zhuǎn)移至含2 mmol/L MgSO4·7H2O全營養(yǎng)液中培養(yǎng)10 d,隨后轉(zhuǎn)移到含0 mmol/L MgSO4·7H2O培養(yǎng)10 d。對于時(shí)間依賴的Mg2+攝取分析,經(jīng)Mg2+饑餓處理的野生型和轉(zhuǎn)基因植株移至含0.01,2.00 mmol/L MgSO4·7H2O營養(yǎng)液中培養(yǎng)10,30,60,120,180,240 min,收獲根用于Mg2+含量測定。對于濃度依賴的Mg2+攝取分析,經(jīng)Mg饑餓處理的野生型和轉(zhuǎn)基因植株在含0.00,0.01,0.05,0.10,0.50,1.00,2.00,3.00 mmol/L MgSO4·7H2O營養(yǎng)液中培養(yǎng)2 h,收獲各濃度處理下擬南芥的根用于Mg2+含量測定。Mg2+含量測定參照Mao等[17]的方法進(jìn)行。

2 結(jié)果與分析

2.1 ZmMGT10植物過表達(dá)載體構(gòu)建

用KpnⅠ和PstⅠ限制性內(nèi)切酶分別對ZmMGT10 PCR擴(kuò)增產(chǎn)物和PCMBIA2300-eGFP(切掉eGFP)進(jìn)行雙酶切,回收目的片段。將回收的ZmMGT10片段和PCMBIA2300-eGFP大片段用T4連接酶進(jìn)行連接,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,轉(zhuǎn)化子經(jīng)PCR檢測后搖菌提取質(zhì)粒。質(zhì)粒用KpnⅠ和PstⅠ進(jìn)行雙酶切,得到了2條預(yù)期大小的條帶(圖1-A)。將陽性克隆送測序公司進(jìn)行測序,測序結(jié)果與ZmMGT10參照序列完全一致,說明ZmMGT10基因的植物過表達(dá)載體構(gòu)建成功,將其命名為PCMBIA2300∷ZmMGT10(圖1-B)。

2.2 轉(zhuǎn)基因擬南芥的鑒定

利用凍融法將PCMBIA2300∷ZmMGT10重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)入根癌農(nóng)桿菌EHA105中,陽性轉(zhuǎn)化子采用花絮侵染法轉(zhuǎn)化野生型擬南芥(Col-0),收獲T0轉(zhuǎn)基因種子。T0轉(zhuǎn)基因種子經(jīng)50 mg/L卡那霉素抗性篩選和基因組PCR鑒定,得到15株轉(zhuǎn)基因陽性植株(圖2-A、B),單株收獲T1轉(zhuǎn)基因種子。提取T1植株的總RNA,以擬南芥Actin基因?yàn)閮?nèi)參基因,對ZmMGT10在轉(zhuǎn)基因植株中的表達(dá)進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測。結(jié)果表明,ZmMGT10在15個(gè)轉(zhuǎn)基因株系中均有表達(dá),其中株系#1、#6、#12具有較高表達(dá),選用于后繼試驗(yàn)(圖3)。

M.DL10000分子標(biāo)記;1.PCMBIA2300載體酶切回收產(chǎn)物;2.PCMBIA2300∷ZmMGT10重組質(zhì)粒;3.PCMBIA2300∷ZmMGT10重組質(zhì)粒酶切產(chǎn)物;4.ZmMGT10酶切回收產(chǎn)物。

M.DL10000 Marker;1.Enzyme digestion product of PCMBIA2300 vector;2.PCMBIA2300∷ZmMGT10 recombinant plasmids;3.Enzyme digestion product of PCMBIA2300∷ZmMGT10 recombinant plasmids;4.Enzyme digestion product ofZmMGT10.

圖1PCMBIA2300∷ZmMGT10重組質(zhì)粒酶切驗(yàn)證(A)及結(jié)構(gòu)(B)
Fig.1Enzymedigestion(A)andstructure(B)ofPCMBIA2300∷ZmMGT10recombinantplasmids

M.DL2000分子標(biāo)記;P.質(zhì)粒;W.水;WT.野生型植株;

圖3 ZmMGT10在轉(zhuǎn)基因擬南芥株系中的表達(dá)Fig.3 Expression level of ZmMGT10 in transgenic Arabidopsis lines

2.3 轉(zhuǎn)ZmMGT10基因擬南芥在低鎂生長條件下的表型觀察及生理指標(biāo)分析

將14 d的野生型和轉(zhuǎn)基因株系#1、#6、#12的T1擬南芥幼苗轉(zhuǎn)移到全營養(yǎng)液培養(yǎng)3 d,隨后2種材料各分為2組,分別在含2 mmol/L MgSO4·7H2O (+Mg)和0.01 mmol/L MgSO4·7H2O (-Mg)的營養(yǎng)液中培養(yǎng)21 d后觀察表型。結(jié)果如圖4-A所示,在Mg充足條件下野生型擬南芥植株和轉(zhuǎn)基因擬南芥植株間沒有明顯的表型差異,而在低鎂條件下,野生型植株的生長略弱于轉(zhuǎn)基因植物,且野生型植株的中齡葉出現(xiàn)缺鎂黃化癥狀。此外,在Mg充足條件下的野生型和轉(zhuǎn)基因植株大小略大于低鎂條件下植株的大小,葉色也略綠于低鎂條件植株的葉色。根長分析顯示,在Mg充足條件下,野生型植株和轉(zhuǎn)基因植株的主根長無明顯差異;而在低鎂條件下,野生型和轉(zhuǎn)基因擬南芥的根生長明顯受到抑制,但轉(zhuǎn)基因植株受到的抑制明顯弱于野生型植株(圖4-B)。生物量(以鮮質(zhì)量計(jì))分析顯示,在Mg充足條件下,野生型植株和轉(zhuǎn)基因植株的生物量無明顯差異;而在低鎂條件下,野生型植株和轉(zhuǎn)基因植株的生物量明顯降低,但轉(zhuǎn)基因植株的生物量要顯著高于野生型植株的生物量(圖4-C)。葉片葉綠素濃度(以鮮質(zhì)量計(jì))分析顯示,在Mg充足條件下,野生型植株和轉(zhuǎn)基因植株葉片的葉綠素濃度無明顯差異;而低鎂生長條件明顯減少了野生型和轉(zhuǎn)基因植株葉片的葉綠素濃度,但轉(zhuǎn)基因植株葉片的葉綠素濃度顯著高于野生型(圖4-D)。這些結(jié)果表明,低鎂影響了植物的正常生長,過表達(dá)ZmMGT10基因增強(qiáng)了轉(zhuǎn)基因擬南芥植株對低鎂脅迫的抵抗。

WT.野生型植株;#1、#6、#12.轉(zhuǎn)基因株系1、6、12。不同字母代表差異顯著(P<0.05)。圖5同。WT.Wild type plants;#1,#6,#12.Transgenic 1,6 and 12 lines.Different letters indicate statistic significant difference at P<0.05.The same as Fig.5.

2.4 轉(zhuǎn)ZmMGT10基因擬南芥在低鎂生長條件下Mg2+積累分析

為了探索過表達(dá)ZmMGT10增強(qiáng)了轉(zhuǎn)基因擬南芥植株對低鎂脅迫的抵抗是否與轉(zhuǎn)基因植株在低鎂條件下有更多Mg2+積累有關(guān),檢測了Mg充足和低鎂生長條件下野生型和轉(zhuǎn)基因植株的根和梢中的Mg2+含量。結(jié)果如圖5所示,在Mg充足生長條件下,野生型和轉(zhuǎn)基因植株的根和梢中的Mg2+含量(以干質(zhì)量計(jì))無明顯差異;而在低鎂生長條件下,2種材料的根和梢中的Mg2+含量均明顯低于Mg充足條件下2種材料根和梢中的Mg2+含量,但轉(zhuǎn)基因植株根和梢中的Mg2+含量均顯著高于野生型植株。這些結(jié)果表明,過表達(dá)ZmMGT10增強(qiáng)了轉(zhuǎn)基因擬南芥植株對低鎂脅迫的抵抗與轉(zhuǎn)基因植株在低鎂條件下有更多的Mg2+積累有關(guān),暗示ZmMGT10可能介導(dǎo)了低鎂條件下根對Mg2+的吸收。

2.5 轉(zhuǎn)ZmMGT10基因擬南芥對Mg2+的吸收分析

為了進(jìn)一步探索轉(zhuǎn)基因擬南芥在低鎂條件下比野生型擬南芥積累更多的Mg2+是否與其在低鎂條件下有更強(qiáng)的Mg2+吸收有關(guān),野生型和轉(zhuǎn)基因株系#1的T1幼苗被用于時(shí)間依賴的和濃度依賴的Mg2+吸收試驗(yàn)。時(shí)間依賴的Mg2+吸收分析結(jié)果顯示,在2.00 mmol/L Mg2+生長條件下,野生型植株和轉(zhuǎn)基因植株具有相似的Mg2+積累模式,而在0.01 mmol/L Mg2+條件下,野生型和轉(zhuǎn)基因植株Mg2+積累量(以干質(zhì)量計(jì))均明顯低于2.00 mmol/L條件下植株的Mg2+積累量,但轉(zhuǎn)基因植株的Mg2+積累量明顯高于野生型植株,表明過表達(dá)ZmMGT10增強(qiáng)了低鎂條件下擬南芥根對Mg2+的吸收(圖6-A)。濃度依賴的Mg2+吸收分析結(jié)果顯示,在高鎂濃度條件下,2種材料的Mg2+吸收率(以干質(zhì)量計(jì))無明顯差異,但在低鎂條件下,轉(zhuǎn)基因植株的Mg2+吸收率明顯高于野生型植株,表明ZmMGT10是在低鎂濃度下介導(dǎo)植物根對Mg2+的吸收(圖6-B)。這些結(jié)果表明,過表達(dá)ZmMGT10增強(qiáng)了轉(zhuǎn)基因擬南芥植株對低鎂脅迫的抵抗是由于ZmMGT10介導(dǎo)了低鎂條件下轉(zhuǎn)基因植株根對Mg2+的吸收。

圖5 不同Mg2+濃度處理下野生型和轉(zhuǎn)基因植株根(A)和梢(B)中的Mg2+含量Fig.5 Mg2+ contents in roots (A) or shoots (B) of the wild type and transgenic plants under different concentration Mg2+ treatments

圖6 野生型和轉(zhuǎn)基因擬南芥植株時(shí)間依賴和Mg2+濃度依賴的Mg2+吸收Fig.6 Time-dependent and concentration-dependent Mg2+ uptake in the roots of wild-type and transgenic plants

3 討論

鎂除了作為葉綠素的重要組成成分外,還是眾多酶的激活劑,參與了植株多個(gè)重要的生理代謝過程。植物鎂缺乏將會(huì)影響其正常生長發(fā)育,并最終影響產(chǎn)量和品質(zhì)。因此,提高植物對低鎂環(huán)境中鎂的充分吸收利用,將會(huì)增強(qiáng)植物對低鎂脅迫的抵抗。

研究已經(jīng)表明,植物中存在著高親和和低親和2種鎂離子吸收系統(tǒng)[13,22-27]。在水稻和玉米中利用MRS2/MGT蛋白活性抑制劑三氯化六氨合鈷(Co-Hex)發(fā)現(xiàn),MRS2/MGT-型鎂離子轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白介導(dǎo)了水稻和玉米根對Mg2+高親和和低親和吸收[13,27]。在擬南芥中的研究已證明,2個(gè)CorA/MRS2/MGT家族基因AtMGT6和AtMGT7具有抵抗低鎂脅迫的能力,是擬南芥在低鎂環(huán)境下正常生長所必需的[16-18]。AtMGT6編碼蛋白定位于質(zhì)膜上,其主要是通過介導(dǎo)低鎂脅迫下根對Mg2+的吸收來增強(qiáng)擬南芥植株對低鎂脅迫的抵抗[17]。AtMGT7編碼蛋白定位于內(nèi)膜系統(tǒng)上,其可能是通過調(diào)控低鎂條件下鎂離子在根細(xì)胞中的分布來抵抗低鎂脅迫[16]。前面的研究發(fā)現(xiàn),玉米ZmMGT10基因是擬南芥AtMGT6基因的同源基因,其在根中特異性表達(dá)且表達(dá)受缺鎂脅迫誘導(dǎo),暗示其可能也具有抵抗低鎂脅迫的能力[13]。為了探討ZmMGT10是否具有增強(qiáng)植物對低鎂脅迫抵抗能力,筆者在擬南芥中對其進(jìn)行了過表達(dá)分析。在Mg充足條件下,野生型植株和轉(zhuǎn)基因植株生長均受到明顯抑制,但野生型植物受到的抑制強(qiáng)于轉(zhuǎn)基因植株且野生型植株出現(xiàn)了中齡葉缺鎂黃化癥狀,這與煙草中鎂缺乏表型相似[15];進(jìn)一步分析發(fā)現(xiàn),低鎂條件下轉(zhuǎn)基因植株的根長、生物量、葉綠素濃度、根和梢中的Mg2+積累量均明顯高于野生型植株,表明在擬南芥中過表達(dá)ZmMGT10增強(qiáng)了轉(zhuǎn)基因植株對低鎂脅迫的抵抗力。前面在鼠寒沙門氏菌Mg2+轉(zhuǎn)運(yùn)缺陷突變體MM281中的研究表明,ZmMGT10具有Mg2+轉(zhuǎn)運(yùn)能力[13],暗示過表達(dá)ZmMGT10增強(qiáng)了轉(zhuǎn)基因擬南芥植株對低鎂脅迫的抵抗可能與轉(zhuǎn)基因植株具有更強(qiáng)的Mg2+吸收能力有關(guān)。時(shí)間依賴的和濃度依賴的Mg2+吸收分析發(fā)現(xiàn),在低鎂條件下,轉(zhuǎn)基因擬南芥植株的確比野生型植株具有更高的Mg2+吸收率。這些結(jié)果表明,ZmMGT10基因與擬南芥同AtMGT6基因一樣,是通過介導(dǎo)低鎂條件下根對Mg2+的吸收來增強(qiáng)植物對低鎂脅迫的抵抗。

綜上所述,過表達(dá)玉米ZmMGT10基因增強(qiáng)了低鎂條件下轉(zhuǎn)基因擬南芥植株根對Mg2+的吸收,進(jìn)而增強(qiáng)了轉(zhuǎn)基因植株對低鎂脅迫的抵抗。

[1] Cowan J A.Structural and catalytic chemistry of magnesium-dependent enzymes[J].Biometals:an International Journal on the Role of Metal Ions in Biology,Biochemistry,and Medicine,2002,15(3):225-235.

[2] H?rtensteiner S.Stay-green regulates chlorophyll and chlorophyll-binding protein degradation during senescence[J].Trends in Plant Science,2009,14(3):155-162.

[3] 靳曉琳,馬翠蘭,陳立松.植物缺鎂研究進(jìn)展[J].亞熱帶農(nóng)業(yè)研究,2012,8(2):118-122.

[4] 盛翊佳,丁亞文,傅媛燁,等.植物應(yīng)答鎂營養(yǎng)脅迫機(jī)理的研究進(jìn)展[J].植物學(xué)研究,2015,4(5):97-106.

[5] Bui D M,Gregan J,Jarosch E,et al.The bacterial magnesium transporter CorA can functionally substitute for its putative homologue Mrs2p in the yeast inner mitochondrial membrane[J].The Journal of Biological Chemistry,1999,274(29):20438-20443.

[6] Szegedy M A,Maguire M E.The CorA Mg2+transport protein ofSalmonellatyphimurium:mutagenesis of conserved residues in the second membrane domain [J].Journal of Biological Chemistry,1999,274(44):36973-36979.

[7] Graschopf A,Stadler J A,Hoellerer M K,et al.The yeast plasma membrane protein Alr1 controls Mg2+homeostasis and is subject to Mg2+-dependent control of its synthesis and degradation[J].Journal of Biological Chemistry,2001,276(19):16216-16222.

[8] Lee J M,Gardner R C.Residues of the yeast ALR1 protein that are critical for magnesium uptake[J].Current Genetics,2006,49(1):7-20.

[9] Pisat N P,Pandey A,Macdiarmid C W.MNR2 regulates intracellular magnesium storage inSaccharomycescerevisiae[J].Genetics,2009,183(3):873-884.

[10] Li L,Tutone A F,Drummond R S,et al.A novel family of magnesium transport genes inArabidopsis[J].The Plant Cell,2001,13(12):2761-2775.

[11] Saito T,Kobayashi N I,Tanoi K,et al.Expression and functional analysis of the CorA-MRS2-ALR-type magnesium transporter family in rice[J].Plant & Cell Physiology,2013,54(10):1673-1683.

[12] 張 崗,翟清華,張大為,等.鐵皮石斛鎂離子轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白基因的克隆及表達(dá)分析[J].中草藥,2014,45(23):3443-3448.

[13] Li H,Du H,Huang K,et al.Identification,and functional and expression analyses of the CorA/MRS2/MGT-Type magnesium transporter family in maize[J].Plant & Cell Physiology,2016,57(6):1153-1168.

[14] 陽江華,秦云霞,方永軍,等.巴西橡膠樹鎂離子轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白基因HbMGT10的克隆及表達(dá)分析[J].熱帶作物學(xué)報(bào),2016,37(12):2353-2358.

[15] Deng W,Luo K,Li D,et al.Overexpression of anArabidopsismagnesium transport gene,AtMGT1,inNicotianabenthamianaconfers Al tolerance[J].Journal of Experimental Botany,2006,57(15):4235-4243.

[16] Gebert M,Meschenmoser K,Svidová S,et al.A root-expressed magnesium transporter of theMRS2/MGTgene family inArabidopsisthalianaallows for growth in low-Mg2+environments[J].The Plant Cell,2009,21(12):4018-4030.

[17] Mao D,Chen J,Tian L,et al.Arabidopsistransporter MGT6 mediates magnesium uptake and is required for growth under magnesium limitation[J].The Plant Cell,2014,26(5):2234-2248.

[18] Oda K,Kamiya T,Shikanai Y,et al.TheArabidopsisMg transporter,MRS2-4,is essential for Mg homeostasis under both low and high Mg conditions[J].Plant & Cell Physiology,2016,57(4):754-763.

[19] Clough S J,Bent A F.Floral Dip:a simplified method for agrobacterium-mediated transformation ofArabidopsisthaliana[J].Plant Journal,1998,16(6):735-743.

[20] Tocquin P,Corbesier L,Havelange A,et al.A novel high efficiency,low maintenance,hydroponic system for synchronous growth and flowering ofArabidopsisthaliana[J].BMC Plant Biology,2003,3:2.

[22] Leggett J E,Gilbert W A.Magnesium uptake by soybeans[J].Plant Physiology,1969,44(8):1182-1186.

[23] Maas E V,Ogata G.Absorption of magnesium and chloride by excised corn root[J].Plant Physiology,1971,47(3):357-360.

[24] Joseph R A,Vanhai T.Kinetics of potassium and magnesium uptake by intact soybean roots[J].Physiologia Plantarum,1976,36(3):233-235.

[25] Rengel Z,Robinson D L.Competitive Al3+inhibition of net Mg2+uptake by intactLoliummultiflorumroots[J].Plant Physiology,1989,91:1407-1413.

[26] Tanoi K,Kobayashi N I,Saito T,et al.Application of Mg-28 to the kinetic study of Mg uptake by rice plants[J].Journal of Radioanalytical and Nuclear Chemistry,2013,296(2):749-751.

[27] Tanoi K,Kobayashi N I,Saito T,et al.Effects of magnesium deficiency on magnesium uptake activity of rice root,evaluated using (28) Mg as a tracer[J].Plant and Soil,2014,384(1/2):69-77.

猜你喜歡
植物
誰是最好的植物?
為什么植物也要睡覺
長得最快的植物
各種有趣的植物
植物也會(huì)感到痛苦
會(huì)喝水的植物
植物的防身術(shù)
把植物做成藥
哦,不怕,不怕
將植物穿身上
主站蜘蛛池模板: 伊人蕉久影院| 亚洲欧洲日本在线| 国产精品亚欧美一区二区| 国产成人av大片在线播放| www欧美在线观看| 天堂网国产| 午夜爽爽视频| 欧美成人午夜在线全部免费| 国产高清无码第一十页在线观看| 在线观看视频99| 91毛片网| 一本色道久久88| 中文字幕佐山爱一区二区免费| 91在线丝袜| 国产在线小视频| 黄色网址免费在线| 亚洲人人视频| 欧美精品xx| 在线日韩日本国产亚洲| 亚洲天堂视频在线观看免费| 免费无码AV片在线观看国产| 久久精品aⅴ无码中文字幕| 尤物精品视频一区二区三区| 久久精品无码国产一区二区三区| 国产精品久久久久久久久久98| 日本欧美在线观看| 高h视频在线| 国产精品第一区在线观看| 亚洲黄色视频在线观看一区| 97久久精品人人做人人爽| 女人18毛片久久| 992Tv视频国产精品| 欧美中文字幕在线播放| 欧美怡红院视频一区二区三区| 九九视频在线免费观看| 国产精品免费p区| 欧美不卡二区| 免费国产一级 片内射老| 久久精品中文字幕少妇| 亚洲男人天堂久久| 久久久亚洲色| 午夜福利免费视频| 日本精品中文字幕在线不卡 | 亚洲美女一区二区三区| 99久久精品国产综合婷婷| 97在线观看视频免费| 日本a级免费| 久久国产乱子| 一本大道视频精品人妻| 日韩欧美一区在线观看| 再看日本中文字幕在线观看| 精品人妻系列无码专区久久| 欧美爱爱网| 黄色网站不卡无码| 欧美精品亚洲精品日韩专区va| 精品久久蜜桃| 国产成人1024精品下载| 亚洲三级色| 久久成人18免费| 免费国产好深啊好涨好硬视频| 日本精品视频| 日本成人在线不卡视频| www.亚洲色图.com| 99国产精品免费观看视频| 成人午夜网址| 久青草免费在线视频| 亚洲国产中文精品va在线播放| 爆操波多野结衣| 国产偷国产偷在线高清| 精品久久国产综合精麻豆| 久久一级电影| 中文字幕在线看| 国产a v无码专区亚洲av| 欧美成人h精品网站| 无码内射中文字幕岛国片| 国产成人无码AV在线播放动漫 | 亚洲无码37.| 九九线精品视频在线观看| 伊人久久久久久久| 91系列在线观看| 欧美视频在线播放观看免费福利资源| 久久国产乱子|