云南獨蒜蘭組培快繁技術研究

李蕾

摘 要：目的：通過研究云南獨蒜蘭種子萌發、小苗增殖和生根的適宜培養基，建立一套獨蒜蘭組織培養的快速繁殖體系。方法：以獨蒜蘭種子為外植體，研究激素（6-benzylaminopurine和1-naphthlcetic acid） 不同質量濃度配比對云南獨蒜蘭小苗增殖和壯苗生根的影響。結果：云南獨蒜蘭小苗增殖最適培養基為 1/2MS+NAA1.5mg/L+6-BA0.5mg/L，壯苗與生根最適培養基為 1/2MS+NAA2.0mg/L+6-BA0.3mg/L。結論：建立了一套云南獨蒜蘭組培快繁體系，可用于大規模生產云南獨蒜蘭組培苗。

關鍵詞：云南獨蒜蘭；種子；組培快繁

中圖分類號 S63 文獻標識碼 A 文章編號 1007-7731（2018）01-0010-03

Abstract：Objective To explore suitable culture mediums for the seed germination，seedling multiplication，rooting and growth of plantlet in Pleione yunnanensis，in order to establish a tissue culture and rapid propagation system.Methods Seeds of Pleione yunnanens is were used as the explants，and the effects of different mediums on proliferation，rooting and seedling. Results The most suitable culture medium for proliferation was 1/2MS+NAA1.5mg/L+6-BA0.5mg/L，The most suitable culture medium for rooting and seedling was 1/2MS+NAA2.0mg/L+6-BA0.3mg/L。Conclusion This research established a tissue culture and rapid propagation system，which could be used for the large scale production of Pleione yunnanensis.

Key words：Pleione yunnanensis；Seed；Tissue culture and rapid propagation

云南獨蒜蘭〔Pleione yunnanensis（Rolfe）Rolfe〕，蘭科獨蒜蘭屬的一種半附生蘭，國內主要產于四川、貴州和云南[1]，假鱗莖為中藥山慈菇的主要來源之一。云南獨蒜蘭為《中國藥典》收載品種，具有清熱解毒、止咳化痰，止血生肌。主治肺結核，百日咳，氣管炎，癰腫，消化道出血，外傷出血等[2]。近年來，由于其含有的秋水仙堿具有抗腫瘤的活性，獨蒜蘭市場需求量不斷增加。但其種子小，自然狀態下很難成功萌發及生長，加之野生資源破壞嚴重，所以通過組織培養是獲得大量完整再生植株的重要技術手段，亦是緩解資源環境壓力的主要途徑。近年來有少量關于獨蒜蘭組織培養方面的報道，如陳之林等人對白花獨蒜蘭進行了組培快繁研究，以種子和原球莖為外植體成功獲得了組培苗[3]；張燕等人認為，在獨蒜蘭組培快繁研究中，以種子為外植體生產組培苗是最好的方法[4]。本文就云南獨蒜蘭組培快繁體系進行了研究，為建立和完善云南獨蒜蘭的人工繁育技術提供科學依據。

1 材料與方法

1.1 實驗材料 外植體：以云南獨蒜蘭成熟且未開裂的蒴果為外植體，采自云南省文山市。

1.2 實驗方法

1.2.1 外植體消毒 用適量洗潔劑先洗滌蒴果6min，然后用無菌水沖凈洗潔精，在超凈工作臺上將洗滌后的蒴果用75%的酒精表面消毒處理2min，再用0.1%的升汞（HgCl2）消毒15min，用無菌水沖洗6次，用無菌濾紙吸干蒴果表面的水分。

1.2.2 無菌播種 超凈工作臺上用消毒后的手術刀將消毒處理過的蒴果兩端切除，縱向剖開蒴果，將種子播于培養基上，輕輕晃動培養瓶使種子均勻散布。完成接種后將其置于培養室培養，誘導種子萌發階段避光培養，溫度為25℃，待種子萌發出原始球莖后采用光照培養，溫度為25℃，光照時間12h/d，光照強度1200lx。此階段培養基為：1/2MS+NAA（1.0mg/L）+炭粉（1g/L）+蔗糖（30g/L）+瓊脂（6g/L），pH=5.8。

1.2.3 原球莖增殖 在播種40d后極少數原球莖開始分化出葉，同時原球莖繼續增殖，形成苗和原球莖混雜的塊狀物。此時的原球莖經過繼代培養，有利于原球莖的增殖，生長速度加快。本階段采用光照培養，溫度25℃，光照時間12h/d，光照強度1200lx。此階段以1/2MS+6-BA（1.5mg/L）+NAA（0.5mg/L）+炭粉（1g/L）+蔗糖（30g/L）+瓊脂（6g/L），pH=5.8為原球莖繼代培養、增殖的培養基。

1.2.4 葉芽誘導、叢芽增殖 原球莖經增殖培養20d后大部分原球莖都能長出第1片葉芽，但叢生芽數量相對較少，葉片弱小，此時，需對繼代增殖原球莖進行葉芽誘導、叢芽增殖，選用已經設計好的不同激素種類和濃度的培養基進行培養，選擇大小適合的原球莖用于接種。采用光照培養，溫度為25℃，光照時間12h/d，光照強度1200lx。經培養40d后，統計叢生芽的數目。此階段以1/2MS+6-BA（變量）+NAA（變量）+炭粉（1g/L）+蔗糖（30g/L）+瓊脂（6g/L），pH=5.8為原球莖繼代培養、增殖的培養基。

1.2.5 生根壯苗培養 選取經葉芽誘導、叢芽增殖的小苗用于生根壯苗培養研究，設計不同激素種類和濃度進行培養，所選材料要求大小和長度，生長狀況一致的小苗。完成接種后將材料移至培養室中，采用光照培養，溫度為25℃，光照時間12h/d，光照強度1200lx。endprint

2 結果與分析

2.1 誘導種子無菌萌發階段 種子在播于培養基后約24d開始萌發，出現白色類原球莖，然后轉至光照培養，白色原球莖逐漸形成黃綠色的原球莖，出現綠色點芽點。原球莖逐漸長大，顏色轉綠，在播種40d后極少數開始分化出葉，同時原球莖繼續增殖，形成苗和原球莖混雜的塊狀物。

2.2 葉芽誘導、叢芽增殖階段 此階段設計不同激素種類和濃度進行培養。原球莖經過葉芽誘導、叢芽增殖培養30d后，叢芽數目開始增多，多數芽也長成接種前1～4cm不等的小苗，而且基部開始膨大，直徑大多達1～2mm。此時進行觀察和測量，統計誘導葉芽數目如表1。

對原球莖進行芽誘導是組培中的重要環節，提高葉芽誘導率和叢芽增殖，為獲得大量的組培苗奠定基礎。為能反應出各處理對獨蒜蘭原球莖的葉芽誘導、叢芽增殖影響作用的差異，從中選取到最佳激素組合，所以對表1結果進一步作方差分析，見表2。

表2中可以看出，NAA的P=0.019<0.05，6-BA的P=0.177>0.05，表明：在該范圍濃度下的NAA和6-BA組合對處理對獨蒜蘭原球莖的葉芽誘導、叢芽增殖影響作用實驗中，對葉芽誘導、叢芽增殖影響的主效應是NAA，而6-BA的影響不顯著。在6號處理組NAA1.5mg/L+6-BA0.5mg/L中的平均出芽數最多，葉芽誘導、叢芽增殖效果最好。

2.3 生根壯苗培養階段 此階段設計不同激素種類和濃度進行培養。50d觀察不同處理組，葉片較接種前增長，莖的基部膨大明顯，膨大的基部下面長出1～4條根。此時進行觀察和測量，統計生根數目、根長，球莖大小及葉片長度，見表3。

在組培中，生根率是重要的指標，為能反應出各處理對云南獨蒜蘭組培苗生根情況影響作用的差異，從中選取到最佳激素組合，所以對表3結果進一步作方差分析，見表4。

表中4可以看出，NAA的P=0.002<0.05，6-BA的P=0.007<0.05，表明：在該范圍濃度下的NAA和6-BA組合對處理對云南獨蒜蘭組培苗生根率影響作用實驗中，不同濃度NAA和6-BA組合對組培苗的生根率影響均達到了顯著水平。在9號處理組NAA2.0mg/L+6-BA0.3mg/L的平均生根率最高，平均根長度也最長，生根效果相對較好。

3 結論

本實驗選取云南獨蒜蘭經授粉、成熟且未開裂的蒴果內的種子為外植體，誘導種子萌發產生原球莖。在此基礎上，對原球莖進行增殖、擴繁，獲得后續實驗中所需的愈傷組織和不定芽。叢生芽誘導階段，以1/2 MS為基礎培養基，處理組（1/2 MS+NAA1.5mg/L+6-BA0.5mg/L）的平均出芽數最多，對葉芽誘導、叢芽增殖效果最好。生根壯苗階段，以1/2 MS為基礎培養基，處理組（1/2 MS+NAA2.0mg/L+6-BA0.3mg/L）的平均生根率最高，平均根長度也最長，生根效果最好。

參考文獻

[1]陳心啟，吉占和.中國蘭花全書[M].北京：中國林業出版社，2003.

[2]何順志，徐文芬.貴州中草藥資源研究[M].貴陽：貴州科技出版社，2007.

[3]陳之林，葉秀麟.白花獨蒜蘭的組織培養和快速繁殖[J].植物生理學通訊，2004，40（4）：455.

[4]張燕，黎斌.瀕危蘭科植物獨蒜蘭的快速技術研究[J].陜西農業科學，2013（3）：57-59.

（責編：施婷婷）endprint