王柄棋,羅文娟,孫雨晴,陳 翔,林燕萍
(福建中醫藥大學中西醫結合研究院,福建 福州 350122)
絕經后骨質疏松癥主要是由于絕經后婦女體內雌激素水平下降,骨重建失偶聯,骨吸收大于骨形成所致,屬于高轉換型骨質疏松癥,其中破骨細胞骨吸收增強是其發病的主要機制之一。基質金屬蛋白酶-9(matrix metalloprotrinse 9,MMP-9)、抗酒石酸酸性磷酸酶(tatrate-resistant acid phosphatase,TRACP)、組織蛋白酶 K(cathepsink,Cath-K)是骨吸收過程中重要的骨基質降解酶,脫氧吡啶啉(deoxypyridinoline,DPD)是骨I型膠原的降解產物。以上3種酶及尿DPD都是骨吸收的特異性生化指標,能客觀、特異、準確反映破骨細胞的功能活性,顯示骨組織代謝中的骨吸收狀況。本研究通過動物實驗觀察補腎傳統良方青娥方對去卵巢大鼠血清中 MMP-9、TRACP5b、Cath-K 含量和尿液 DPD/Cr的影響,結合骨組織形態結構改變,進一步探討青娥方的作用機制。
1.1 實驗動物 120只3月齡SPF級雌性SD大鼠,體質量(305±15)g,由上海斯萊克實驗動物有限責任公司提供,許可證號:SCXK(滬)2012-0002;由福建中醫藥大學實驗動物中心SPF級動物房飼養,許可證號:SYXK(閩)2014-0001。
1.2 實驗藥物 青娥方藥物組成:杜仲(鹽炒)480 g,補骨脂(鹽炒)240 g,核桃仁(炒)150 g,大蒜 120 g。購自福建省國醫堂,由福建中醫藥大學求真樓中藥平臺加工成浸膏,每克浸膏含生藥5.79 g。骨疏康顆粒購自遼寧康辰藥業有限公司。
1.3 實驗試劑 TRACP、MMP-9、Cath-K、DPD ELISA試劑盒(上海西塘生物技術有限公司);肌酐檢測試劑盒(南京建成生物研究所);乙二胺四乙酸二鈉(上海博亞生物技術公司)。
1.4 實驗儀器 酶標儀(美國Hologic公司,ELx 800);切片機(德國 LEICA 公司,RM2135);超低溫-80℃冰箱(日本SANYO公司,MDF-382E);生物組織自動包埋機(湖北泰維醫療科技有限責任公司,TB-718E);電動離心機(金壇市恒豐儀器廠,YJ80-2);光學顯微鏡(日本OLYMPUS光學工業株式會社)。
2.1 造模和干預 120只大鼠在動物房適應性飼養1周后,用隨機數字表法按1∶2的比例分為假手術組和卵巢摘除組。卵巢摘除組行雙側卵巢摘除術,將大鼠仰臥位固定,取腹部正中切口,鈍性分離暴露腹腔,找出雙側卵巢,完全結扎并切除,術后肌肉注射青霉素(每次8萬單位/d),連續注射3 d。假手術組也取腹部正中切口但不切除雙側卵巢,其余步驟同卵巢摘除組。術后卵巢摘除組再用隨機數字表法按1∶1∶1的比例分為生理鹽水組、青娥方組和骨疏康組。實驗大鼠均于術后第3天開始藥物干預。給藥劑量根據人和動物間體表面積折算的等效劑量比值表計算,并根據大鼠體質量變化實時調整給藥劑量。青娥方組按3.6 g/(kg·d)的劑量灌服青娥方生藥,骨疏康組按 1.8 g/(kg·d)的劑量灌服骨疏康顆粒,假手術組、生理鹽水組每天予灌服生理鹽水2 mL/只。各組分別于干預4、8、12周時分批處死取材。
2.2 取材 取材前1天,將各組大鼠按1只/籠置于代謝籠中,予禁食不禁水處理,收集24 h尿液,離心取上清液,分裝后儲存于-80℃冰箱;腹主動脈取血,充分靜置,2 000 r/min,離心 20 min,分裝后置于-80℃冰箱凍存;分離大鼠左側脛骨上段,固定后脫鈣。
2.3 觀察指標及方法
2.3.1 血清生化指標及尿DPD含量檢測 從-80℃冰箱中各取出1份分裝好的血清和尿液樣品,室溫下平衡30 min,確定酶標板中的上樣孔數。參照ELISA試劑盒說明書,在波長450 nm處讀取A值,并根據A值繪制標準曲線,計算樣本血清MMP-9、TRACP5b、Cath-K及尿DPD的含量。
2.3.2 尿肌酐檢測 -80℃冰箱取出1份尿液,用純水按1∶200比例稀釋,參考肌酐生化試劑盒說明書,以波長510 nm檢測各管吸光值,并計算DPD/Cr比值。
2.3.3 骨組織HE染色及骨小梁面積百分比 分離大鼠左脛骨上段,將周圍軟組織剃凈,多聚甲醛固定,10%EDTA/PBS(pH7.4)脫鈣,石蠟包埋切片,HE染色后鏡下觀察脛骨干骺端的形態結構。應用數碼醫學圖像分析系統(Motic Med 6.0),測定骨小梁面積百分比(Tb.Ar%)。
骨小梁面積百分比(Tb.Ar%)=視野測量框內骨小梁的面積(Tb.Ar) /測量框總面積(T.Ar)×100%
2.4 統計學方法 采用SPSS 21.0統計軟件進行數據處理,計量資料符合正態分布以()表示,采用單因素方差分析。
卵巢摘除過程中,因腹腔出血等原因死亡的大鼠共7只,其中干預4周假手術組、生理鹽水組、青娥方組、骨疏康組和干預8周生理鹽水組、青娥方組、骨疏康組每組各1只,共取材113只。
3.1 4組不同干預時間血清 MMP-9、TRACP5b、Cath-K變化比較 見圖1~圖3。
3.2 4組不同干預時間尿DPD/Cr比較 見圖4。
3.3 骨組織形態學變化情況 卵巢摘除后,3個時間點假手術組骨小梁形態大致相同,骨小梁分布均勻,排列規則,交織呈網狀。生理鹽水組骨小梁改變明顯,出現不同程度的變細、變形,呈碎片、斷裂現象。青娥方組和骨疏康組骨小梁完整性不及同期假手術組,但骨小梁數目、排列以及結構完整性均優于同期生理鹽水組。骨小梁面積百分比檢測結果與光鏡下所見基本一致。見圖5、圖6。

圖1 4組不同干預時間血清MMP-9含量比較

圖2 4組不同干預時間血清TRACP5b含量比較

圖3 4組不同干預時間血清Cath-K含量比較

圖4 4組不同干預時間尿DPD/Cr含量比較

圖5 4組大鼠干預12周后骨組織HE染色圖(×50)
骨骼塑造完成后,隨著年齡的增長,生物力學環境發生改變,骨骼通過不斷的老骨移除和新骨替換來維持骨的正常功能。“活化—吸收—形成”是骨重建過程的特點,在所有骨重建表面,都要經過骨吸收、骨形成及靜止幾個階段[1]。破骨細胞在骨重建中有著啟動作用,其骨吸收功能的發揮首先需要向骨基質遷移、粘附,然后破骨細胞極化,使皺褶緣、封閉區與骨基質表面形成一個密閉的空間,構成骨吸收裝置,在富含H+及相關降解酶的環境下溶解骨質[2]。骨基質的降解產物由細胞內吞并經跨胞漿轉運空泡,從皺褶緣運送到功能性分泌結構域,進而釋放到細胞外環境,被血液運輸到腎臟,經腎小球濾過隨尿液排出體外。

圖6 用藥后不同時間各組Tb.Ar%比較
MMP-9在破骨細胞中特異性高表達,主要降解Ⅳ、Ⅴ、Ⅹ型膠原。研究發現隨著絕經后婦女血清MMP-9水平的升高,骨基質降解,骨密度逐漸降低[3-7]。 Bolton 等[5]認為 MMP-9 在骨吸收過程中發揮著重要的作用,其實驗研究顯示血清中MMP-9濃度與BMD值呈負相關,證實了他的觀點。TRACP5b是TRACP的同工酶,特異性高表達于破骨細胞,也是血中TRACP5b的主要來源[6],并在一定程度上反映了破骨細胞的功能活性[8-9]。Cath-K在靜止的破骨細胞中主要以不活躍的Cath-K前體形式存在,Cath-K前體是一條未糖基化的多肽單鏈,在酸性環境下可轉換為具有活性的Cath-K[10]。Cath-K在破骨細胞中顯著表達,能降解骨基質中的Ⅰ型膠原蛋白、骨橋接素和骨連接素,是骨吸收過程中的一個關鍵酶[11-14]。本實驗結果顯示卵巢切除后,3個時間點的生理鹽水組血清MMP-9、TRACP5b、Cath-K的含量均高于同期假手術組(P<0.01,P<0.05),表明卵巢切除后,隨著雌激素水平的下降,血清中骨基質降解酶的含量逐漸升高,骨吸收增強。干預后青娥方組血清MMP-9、TRACP5b、Cath-K的含量均低于同期生理鹽水組(P<0.01,P<0.05),說明青娥方能夠降低血清中骨基質降解酶的含量,進而抑制破骨細胞對骨基質的降解。
DPD是骨膠原纖維的代謝產物,僅存于骨和牙的Ⅰ型膠原纖維中,而后者含量甚微,故尿液中DPD幾乎來源于骨骼,能準確反應骨膠原纖維的分解代謝[15-16]。本實驗結果發現生理鹽水組尿DPD/Cr比值均高于同期假手術組(P<0.01,P<0.05),提示卵巢切除后,破骨細胞對骨Ⅰ型膠原的降解作用加強;而青娥方組尿DPD/Cr比值均低于同期生理鹽水組(P<0.01,P<0.05),表明青娥方能夠降低破骨細胞的功能活性,抑制其對骨Ⅰ型膠原的降解。同時,骨組織形態結果顯示生理鹽水組骨小梁數目、排列以及結構完整性明顯不及同期假手術組,Tb.Ar%在8、12周均明顯低于同期假手術組(P<0.01,P<0.05),提示卵巢切除后,骨吸收增強,骨組織形態遭到破壞;青娥方組骨小梁數目、排列以及結構完整性均優于同期生理鹽水組,Tb.Ar%在8、12周均明顯高于同期生理鹽水組(P<0.05),進一步說明青娥方能有效地抑制破骨細胞骨吸收功能,減少對骨基質的吸收破壞,發揮護骨的作用。
綜上所述,中藥青娥方可以通過降低血清MMP-9、TRACP5b、Cath-K的含量,來抑制破骨細胞的功能活性,減少對骨基質的吸收破壞,最終發揮護骨強骨之功。
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