趙園園, 孟金柱
(銅仁學院烏江學院,貴州 銅仁 554300)
miRNAs 通常都是通過與靶基因 mRNAs 按序列配對的方式結合來抑制靶基因的表達,由于堿基種類少,種子序列個數少(約 8 個堿基),所以出現同樣序列的概率極高,因此 miRNAs 與 mRNAs 的配對是“一對多,多對一”的方式[1],因此 miRNAs 的生物學功能極其復雜。探究 miR-27a 與 干細胞因子(SCF) 的靶向關系,有助于通過已知的 SCF 的功能,推測和探究 miR-27a 生物學功能,為 miR-27a 功能的研究開辟新方向。研究結果表明,miR-27a 參與多種細胞的增殖分化、凋亡,血管生成,黑色素生成,脂肪形成等生物學過程[2-7]。還與多種癌癥(乳腺癌、胃癌和宮頸癌等)的發生、發展和預后密切相關[8-11]。而SCF通過與 c-kit 結合參與造血干細胞、生殖細胞、黑色素細胞和肥大細胞的遷移、存活及增殖等生物學過程[12]。隨著越來越多的 miRNAs 被發現,miRNAs 功能的研究及其作用機理的探究越來越受到人們的關注,miRNAs 不編碼蛋白質,是通過作用于靶基因來發揮作用的,因此,尋找 miRNAs 的靶基因尤其關鍵。研究者發現,在淺色哺乳動物皮膚中 miR-27a 表達量顯著高于深色皮膚[7, 13],因此,推測 miR-27a 可能作用于促進黑色素生成的基因,而SCF在黑色素生成中通過與 c-kit 結合發揮促進作用,因此,本試驗假設SCF基因是 miR-27a 的靶基因之一。利用生物信息學預測及雙熒光素酶報告基因檢測系統等,驗證miR-27a 與SCF之間是否存在靶向關系,為進一步探究和完善miR-27a的生物學功能提供依據。
本試驗所用 C57BL/6 小鼠和 HEK 293 T 細胞及 pMSCV 和 pmirGLO 載體均來自山西農業大學羊駝生物工程實驗室,分別選 2 月齡的棕色和灰色小鼠各3只,取皮膚組織,用于提取總 RNA,同時收集鼠尾,用于提取基因組 DNA。
本試驗所用的 PrimeScriptTM RT Master Mix (Perfect Real Time) kit 和 SYBR? PrimeScriptTMⅡ RT-PCR Kit 以及限制性內切酶均購自大連寶生物公司,Site-Directed Gene Mutagenesis Kit 購自上海碧云天生物技術有限公司,DMEM 培養基購自 Gibco 公司,胎牛血清購自杭州四季青生物工程材料有限公司,轉染試劑 lipofectamine 2000 reagent 購自 Invitrogen 公司,雙熒光測定試劑盒 Promega Dual Luciferase Assay Kit 購自 Promega 公司。
本試驗中總 RNA 提取采用 TRIzol 法,設計并合成 miR-27a 和SCF的引物(表1),分別以18S和U6為看家基因。反轉錄用 PrimeScriptTM RT Master Mix (Perfect Real Time) kit,熒光定量 PCR 用 SYBR? PrimeScriptTMⅡ RT-PCR Kit,每次試驗進行 4 次重復。
在 PicTar (http://pictar.mdc-berlin.de/), TargetScan (http://www.targetscan.org/) and DIANA-microT (http://www.microrna.gr/microT) 3個數據庫中對 miR-27a 的靶基因進行預測。
從 NCBI(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)中搜索小鼠pri-miR-27a 序列(NR_029746.1),在此基礎上,從 UCSC(http://genome.ucsc.edu/)中搜索其上下游各延伸 100 bp 的序列,以此為參考,設計引物(表1),并在上下游引物的5′端分別加上XhoⅠ和EcoRⅠ酶切位點序列和保護堿基,以小鼠基因組 DNA(酚氯仿法提取)為模板進行 PCR 擴增,將產物克隆到 pUC-T 載體上,分別用XhoⅠ和EcoRⅠ限制性內切酶對 pUC-T 載體和 pMSCV PIG 載體進行雙酶切,純化產物,T4 連接酶 16 ℃過夜連接,構建重組載體 pMSCV-pri-miR-27a,經轉化、LB 固體培養基培養、液體培養基搖菌,質粒提取(去內毒素),獲得大量重組質粒,測序鑒定重組效果,-80 ℃保存備用。
從 NCBI 中搜索小鼠SCF3′UTR 序列(NM_013598.2),設計引物(表1)擴增包含 miR-27a 結合位點的片段,以小鼠 cDNA(TRIzol 法提取)為模板,上下游引物的5′端分別加上SacⅠ和XbaⅠ酶切位點序列和保護堿基,將pUC-T 載體和 pmirGLO 載體進行雙酶切、重組、測序,最后獲得 pmirGLO-SCF-wt-3′UTR,-80 ℃保存備用。
以 pmirGLO-SCF-wt-3′UTR 為模板,設計結合位點4個連續堿基突變的引物(表1),用Site-Directed Gene Mutagenesis Kit 進行突變,將突變過的載體轉化、培養,提取質粒,測序,最終保留突變成功的載體,即為 pmirGLO-SCF-mut-3′UTR。
HEK 293 T 細胞為實驗室保存,培養在添加 10% 胎牛血清的 DMEM 培養基中。轉染分3組進行:pMSCV-pri-miR-27a + pmirGLO-SCF-wt-3′UTR,pMSCV-pri-miR-27a + pmirGLO-SCF-mut-3′UTR,pMSCV NC(空載體)+ pmirGLO-SCF-wt-3′UTR。轉染比例:24孔細胞培養板每孔150 μg pmirGLO-SCF-wt-3′UTR 或 pmirGLO-SCF-mut-3′UTR + 250 μg pMSCV-pri-miR-27a 或 pMSCV NC(空載體)。轉染 48 h后,收集細胞,用 Promega Dual Luciferase Assay Kit 處理,用 GLOMAXTM 96 Microplate Luminometer 測定熒光活性。
表1所有引物序列及用途
Table1Primersusedinthisstudy
引物名稱 引物序列(5′→3′) 用途SCFFGTCATTGTTGGCTACGAGARealtimePCRSCFRCACGAGGTCATCCACTATTTTRealtimePCRSCF3′UTRFCGAGCTCTGTTACCTTCGCACAGTGGCLuciferasereporter?wtSCF3′UTRRGCTCTAGAGCTCCACCGCATGGATAGAALuciferasereporter?wtSCF?3′UTR?mutFGGAGCAGAGTGCTTCGCACACAACCCTGCACTGAATTALuciferasereporter?mutSCF?3′UTR?mutRTAATTCAGTGCAGGGTTGTGTGCGAAGCACTCTGCTCCLuciferasereporter?mutmiR?27aFACACTCCAGCTGGGTTCACAGTGGCTAAGRealtimePCRUniversalPrimerTGGTGTCGTGGAGTCGRealtimePCRU6FCTCGCTTCGGCAGCACARealtimePCRU6RAACGCTTCACGAATTTGCGTRealtimePCRmiR?27aRCTCAACTGGTGTCGTGGAGTCCGGCAATTCAGTTGAGGCGGAACTRealtimePCRMir?27aF?XhoⅠAAGCTCGAGCTGTCGCCAAGGATGTCTGTPCR?CloneMir?27aR?EcoRⅠGGAATTCAGGAGGCAGAGCAGGGTGPCR?Clone18S?FCTAAGGAGAAGGGCCAGTCCRealtimePCR18S?RCTCAAGTTGGGGGACAAAAARealtimePCR
熒光定量 PCR 數據采用 2-△△Ct計算法,熒光活性值 = 螢火蟲熒光值 / 海腎熒光值,最終數據分析均用 SPSS 軟件進行,數據用平均值±標準差表示。
根據熒光定量 PCR 的結果,miR-27a 在灰色小鼠皮膚中的表達量極顯著高于棕色小鼠(P<0.01);而SCF在棕色小鼠皮膚中的表達量顯著高于灰色小鼠(P<0.05)(圖1),這種相反的表達趨勢說明 miR-27a 與SCF可能存在靶向關系,并且 miR-27a 可能抑制黑色素生成。
**表示差異極顯著(P<0.01);*表示差異顯著(P<0.05)。圖1 miR-27a 和 SCF 分別在棕色和灰色小鼠皮膚中的表達量Fig.1 Expression of miR-27a and SCF mRNA in brown and gray mouse skin
經測序發現,小鼠 pri-miR-27a 和SCF3′UTR 分別成功重組到 pMSCV PIG和pmirGLO載體上,插入片段分別為186 bp和658 bp,并且測序結果與 NCBI 上的參考序列完全一致,無突變、變異等,可用于后續研究。同時,載體成功突變,與野生型相比,存在 4 個連續堿基的突變,即位于SCFcDNA 1 202~1 205 bp 的 TGTG 突變為 ACAC,與引物設計時的突變堿基的位置和種類一致,可用于后續研究。
通過3個數據庫的分析發現,SCF是 miR-27a 的靶基因,并且結合位點位于SCFcDNA的1 200 ~1 207 bp,并且物種間序列保守(圖2)。
圖2 SCF 3′UTR上miR-27a的結合位點、突變位點及物種間的保守性Fig.2 The binding site and mutation site of miR-27a on the SCF 3′UTR and the conservatism across different species
通過觀察發現,HEK 293 T細胞生長良好,轉染 48 h 后,在熒光顯微鏡下觀察細胞,結果(圖3)顯示,綠色熒光蛋白表達良好,視野內熒光密度及廣度都很好,說明轉染效果良好,可用于測定雙熒光活性。
A為共轉染 miR-27a 過表達載體和SCF 3′UTR 雙熒光報告載體的 HEK 293 T 細胞(×100)白光照片; B為共轉染 miR-27a 過表達載體和SCF 3′UTR 雙熒光報告載體的 HEK 293 T 細胞(×100)熒光照片。圖3 轉染效率Fig.3 Transfection efficiency
2種質粒共轉染 HEK 293 T細胞 48 h 后,收集細胞,測定細胞中的螢火蟲熒光和海腎熒光的活性值,其比值即為熒光活性,結果顯示,共轉 pMSCV-pri-miR-27a和 pmirGLO-SCF-wt-3′UTR 的細胞中,熒光活性值為 7.38±0.43,而其他兩組分別為 13.18±2.06和 12.97±1.65,熒光活性下降約 44%,下降效果顯著(P<0.05)(圖4)。
a:pMSCV+SCF-3′UTR wt;b:pMSCV-miR-27a+SCF-3′UTR wt;c:pMSCV-miR-27a+SCF-3′UTR mut。*表示差異顯著(P<0.05)。圖4 3組轉染中的相對熒光值Fig.4 Relative luciferase value in three groups
miRNAs 是短片段 RNA,通常只有18~25 nt,不能編碼蛋白質,通過與靶基因 mRNAs 3′UTR或 5′UTR 的不完全匹配抑制 mRNAs 翻譯成蛋白質或通過降解 mRNAs 發揮抑制作用[1, 14-18]。隨著研究的深入,人們還發現一些 miRNAs 也可以與靶基因的 CDS 區結合來發揮作用[19]。本研究中,miR-27a 就是與靶基因SCF的3′UTR 結合的,miRNAs 對靶基因有抑制作用,因此其在組織細胞中的表達趨勢可能是相反的,而本研究中 miR-27a 與SCFmRNA 在不同顏色小鼠的皮膚中的表達趨勢正是呈現這種相反的現象,這就為我們的假設提供基礎。
miRNAs 與其靶基因的靶向關系的確定主要通過2種方法,一種是生物信息學預測,另一種是試驗驗證,二者結合,效果最佳。生物信息學預測通常是基于種子序列的互補配對、保守性、自由能及結合位點的開放性等[20]。試驗驗證也主要為雙熒光報告試驗和過表達/敲除試驗,前者從序列配對層面進行驗證,后者從生物學功能層面進行驗證。
本研究利用3個 miRNAs 數據庫進行生物信息學預測,因3個數據庫的算法略有差異[20],保證了預測的準確性,結果顯示,SCF是 miR-27a 的靶基因,并且結合位點(種子序列)位于SCFmRNA 3′UTR,這符合 miRNAs 作用于靶基因的原理,同時為我們的假設提供了理論依據。
最后,通過構建 miR-27a 的過表達載體及靶基因SCF3′UTR 的雙熒光報告載體,并將其共同轉染 HEK 293 T 細胞,測定熒光活性,從而確定miR-27a 與SCF之間的靶向關系。這一試驗是從序列匹配方面對 miRNAs 與靶基因的匹配關系進行驗證,其原理是:當過表達載體表達的 miRNAs 與雙熒光報告載體上的靶基因 3′UTR 序列配對并結合時,就阻斷雙熒光報告載體上螢火蟲熒光蛋白的表達,從而使熒光活性降低。
研究結果表明, miR-27a 參與細胞增殖、分化、凋亡和腫瘤發生等多種生物學過程。miR-27 促進胎兒成骨細胞增殖,內皮細胞增殖,血管生成,抑制脂肪細胞的分化和脂肪形成,也促進小鼠黑色素生成[2-7]。此外,miR-27a 還與多種癌癥的發生、發展和預后密切相關,如乳腺癌、胃癌和宮頸癌等[8-11]。研究結果表明 miR-27a-3p 與 Wnt3a 在不同毛色的小鼠皮膚中也表現出完全相反的表達趨勢[7]。除此之外,本課題組之前在羊駝上的研究結果也表明,miR-27a-3p 在白色羊駝皮膚中的表達量是棕色羊駝皮膚中的5.99倍[13],因此,推測 miR-27a 在黑色素生成過程中可能發揮抑制作用。
通過與 c-kit 結合,SCF可以間接影響黑色素細胞的遷移、增殖及存活等生物學過程[12]。當哺乳動物的皮膚黑色素細胞和成黑素細胞中有 c-kit 存在時,SCF介導黑色素細胞遷移、分化、生存、凋亡及黑色素生成等[21]。SCF有兩種亞型,即膜結合型和可溶型,在缺乏膜結合型 SCF 的小鼠中,成黑色素細胞可以被檢測到,但其不能遷移到皮膚組織,導致其毛色呈白色[22-23]。此外,表皮中 SCF 水平降低或者其對 c-kit 的競爭增強均會導致毛干不著色;相反,過表達膜結合型 SCF 會導致毛囊和表皮色素沉著過多[21]。
因此,我們推測,miR-27a 可能通過靶向SCF影響哺乳動物皮膚中的黑色素細胞及黑色素生成。
參考文獻:
[1] BARTEL D P. MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism, and function [J]. Cell, 2004, 116:281-297.
[2] WANG T,XU Z. miR-27 promotes osteoblast differentiation by modulating Wnt signaling [J]. Biochem Biophys Res Commun, 2010, 402: 186-189.
[3] CARMEN URBICH, DAVID KALUZA. MicroRNA-27a/b controls endothelial cell repulsion and angiogenesis by targeting semaphorin 6A [J]. Blood, 2012, 119: 1607-1616.
[4] QIN L M, CHEN Y S, NIU Y N , et al. A deep investigation into the adipogenesis mechanism: profile of microRNAs regulating adipogenesis by modulating the canonical Wnt/β-catenin signaling pathway [J]. BMC Genomics, 2010, 11(1): 320.
[5] LIN Q, GAO Z, ALARCON R M, et al. A role of miR-27 in the regulation of adipogenesis [J]. FEBS J, 2009, 276(8): 2348-2358.
[6] KIM S Y, KIM A Y, LEE H W, et al. miR-27a is a negative regulator of adipocyte differentiation via suppressing PPARgamma expression [J]. Biochem Biophys Res Commun, 2010, 392(3): 323-328.
[7] ZHAO Y, WANG P, MENG J, et al. MicroRNA-27a-3p inhibits melanogenesis in mouse skin melanocytes by targeting Wnt3a [J]. International Journal of Molecular Sciences, 2015, 16(5):10921-10933.
[8] SUN Q, GU H, ZENG Y, et al. Hsa-mir-27a genetic variant contributes to gastric cancer susceptibility through affecting miR-27a and target gene expression [J]. Cancer Science, 2010, 101(10): 2241-2247.
[9] SCOTT G K, MATTIE M D, BERGER C E, et al. Rapid alteration of microRNA levels by histone deacetylase inhibition[J]. Cancer Research, 2006, 66(3):1277-1281.
[10] TSUCHIYA Y, NAKAJIMA M, TAKAGI S, et al. MicroRNA regulates the expression of human cytochrome P450 1B1.[J]. Cancer Research, 2006, 66(18):9090-9098.
[11] MYATT S S, WANG J, MONTEIRO L J, et al. Definition of microRNAs that repress expression of the tumor suppressor geneFOXO1 in endometrial cancer[J]. Cancer Research, 2010, 70(1):367-377.
[12] WILLIAMS D E, DE V P, NAMEN A E, et al. The steel factor.[J]. Developmental Biology, 1992, 151(2):368-376.
[13] TIAN X, JIANG J, FAN R, et al. Identification and characterization of microRNAs in white and brown alpaca skin [J]. BMC Genomics, 2012, 13: 555-567.
[14] 陳 蓉,應詩家,陳 哲,等. 兩品種鴨下丘腦 miRNA 的鑒定及其表達驗證分析[J].江蘇農業學報,2017,33(5):1093-1098.
[15] 王 欣,陳 晨,范洋洋,等.對絲腺細胞因子SGF-1具有調控作用的家蠶miRNAs功能研究[J].江蘇農業科學,2016,44(3):53-58.
[16] LYTLE J R, YARIO T A, STEITZ J A. Target mRNAs are repressed as efficiently by microRNA-binding sites in the 5′UTR as in the 3′UTR [J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2007, 104(23):9667-9672.
[17] 李洪振 ,宋金鵬 ,劉東升,等. 小麥miRNA研究進展[J].山東農業科學,2016,48(6):147-151.
[18] 奚 琦,許志茹,王 琪,等.植物銅穩態相關miRNAs的研究進展[J].江蘇農業科學,2017,45(9):5-10.
[19] HAUSSER J, SYED A P, BILEN B, et al. Analysis of CDS-located miRNA target sites suggests that they can effectively inhibit translation [J]. Genome Research, 2013, 23(4):604-615.
[20] PETERSON S M, THOMPSON J A, UFKIN M L, et al. Common features of microRNA target prediction tools [J]. Frontiers in Genetics, 2014, 5:23-33.
[21] KUNISADA T, LU S Z, YOSHIDA H, et al. Murine cutaneous mastocytosis and epidermal melanocytosis induced by keratinocyte expression of transgenic stem cell factor[J]. Journal of Experimental Medicine, 1998, 187(10):1565-1573.
[22] WEHRLEHALLER B, WESTON J A. Soluble and cell-bound forms of steel factor activity play distinct roles in melanocyte precursor dispersal and survival on the lateral neural crest migration pathway[J]. Development, 1995, 121(3):731-742.
[23] WEHRLE HALLER, B WESTON, J A. Altered cell-surface targeting of stem cell factor causes loss of melanocyte precursors in Steel17H mutant mice [J]. Dev Biol, 1999, 210(1): 71-86.