齊興菊,馮 杰
(貴州省人民醫院兒科,貴陽 550002)
急性淋巴細胞白血病(ALL)是兒童期常見的惡性腫瘤,發病數占兒童惡性腫瘤的25%~35%[1]。絕大多數ALL患兒單純依靠化療就能獲得長期的無病生存狀態[2-3]。甲氨蝶呤(MTX)、6-巰基嘌呤(6-MP)是治療兒童ALL的重要化療藥物,但其不良反應會影響患兒化療的順利進行。亞甲基四氫葉酸還原酶(MTHFR)是葉酸代謝中的限速酶,巰嘌呤甲基轉移酶(TPMT)是6-MP代謝分解的重要酶之一。二者單核苷酸基因多態性(SDP)對于MTX及6-MP化療的不良反應有一定相關性[4-5]。對MTHFR及TPMT單核苷酸基因多態性(SDP)的研究,可以為ALL患兒個體化治療提供依據。
1.1一般資料 選擇2014年1月至2016年10月在本院兒內血液科確診并住院治療的漢族ALL患兒98例為研究對象。其中,男64例,女34例,年齡(5.36±2.14)歲。所有ALL患兒的診斷均符合全國兒童ALL診療建議[6]。根據臨床危險度對患兒分組[7]:高危組16例,男11例,女5例,年齡(6.03±2.26)歲;中危組39例,男27例,女12例,年齡(5.94±2.64)歲;標危組43例,男26例,女17例,年齡(5.76±2.38)歲?;純航浨捌趶娀办柟讨委煻家堰_完全緩解后進入維持治療。本研究獲醫院倫理評審委員會批準,所有患兒家長均知情同意。
1.2方法
1.2.1治療方案 根據兒童CCLG-ALL2008方案,全部患兒均行大劑量(HD)-MTX+醛氫葉酸(CF)+6-MP方案化療,MTX行24 h靜脈滴注,先以10%突擊劑量在0.5 h內快速靜滴,其余90%在23.5 h內均勻滴入。中危與高危組MTX劑量為5 g/m2,標危組為3 g/m2。突擊量MTX滴后2 h內,中危與高危組以MTX、地塞米松及阿糖胞苷等三聯藥物進行1次鞘內注射,標危組以MTX進行1次鞘內注射。MTX開始42 h后以劑量為15 mg/m2的CF解救,給藥間隔為6 h,給藥頻次為6~8次。HD-MTX前5 d以大劑量水化堿化(液體總量如下:中高危3 000~4 000 mL·m-2·d-1,標危2 000~3 000 mL·m-2·d-1,總堿量130 mL·m-2·d-1)。與此同時,每天臨睡前頓服6-MP 25 mg/m2。治療期間監測24 h水量出入,并使尿pH值維持在7.0~8.0。化療時常規保護重要臟器、胃腸道與口腔黏膜。
1.2.2基因分型檢測
1.2.2.1主要試劑與儀器 QIAamp RNA Blood Mini Kit試劑盒購自天根生化科技有限公司,Reverse Transcriptase XL逆轉錄試劑盒購自大連Takara公司,瓊脂糖購自西班牙Pharmerisco公司,所有引物均由華大基因科技公司合成。主要儀器為梯度PCR檢測儀(德國Biometra公司)、核酸電泳系統(美國Bio-Rad公司)。
1.2.2.2RNA提取及cDNA制備 抽取患兒外周血2 mL,EDTA抗凝并于-70 ℃保存。使用QIAamp RNA試劑盒提取總RNA,并采用Reverse Transcriptase XL逆轉錄試劑盒制備cDNA,均按試劑盒說明書操作。
1.2.2.3引物設計 自Genbank獲取MTHFR及TPMT的核苷酸序列,MTHFR C677T、MTHFR A1298C的引物設計依據伍艷鵬等[8]文獻,TPMT A719G、TPMT G460A 的引物設計分別參照ASHAVAID等[9]與ZHANG等[10]的文獻。
1.2.2.4PCR擴增 MTHFR C677T與MTHFR A1298C的總反應體系為50.00 μL:去離子水17.00 μL,正向與反向引物(10 μmol/L)各2.00 μL,Mix(2×)25.00 μL,DNA模板4.00 μL。反應條件均為:95 ℃預變性2 min;94 ℃變性30 s,54 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,共進行36個循環;之后72 ℃ 延伸5 min。TPMT A719G、TPMT G460A的總反應體系為50.00 μL:去離子水35.75 μL、正向與反向引物(10 μmol /L)各1.00 μL,dNTP Mix 4.00 μL,Taq 0.25 μL,緩沖液8.00 μL。反應條件均為95 ℃預變性3 min;95 ℃變性30 s,54 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,共40個循環;之后72 ℃ 延伸4 min。
1.2.2.5PCR產物電泳及測序 取待測PCR產物5.0 μL及Marker 7.5 μL,加入3%瓊脂糖凝膠孔內,電泳60 min,電壓為60 mV,凝膠成像系統拍照。有異常條帶的樣本原液送華大基因科技公司純化后直接測序。
1.2.3不良反應評價 參照美國國立癌癥研究所常規毒性判定標準(NCI-CTC)[11]記錄研究對象化療過程中發生的不良反應,觀察指標為:黏膜損傷表現為口腔炎;胃腸道反應以腹瀉、嘔吐為主;肝臟毒性主要表現為丙氨酸氨基轉移酶及天門冬氨酸基轉移酶升高;骨髓抑制主要以血小板及血紅蛋白下降,外周血中性粒細胞降低。分級大于Ⅱ級為化療不良反應。

2.1MTHFR基因型分布 98例ALL患兒MTHFR C677T位點:CC野生型33例(33.67%),CT雜合型46例(46.94%),TT純合型19例(19.39%)。A1298C位點:AA野生型54例(55.10%),AC雜合型32例(32.65%),CC純合型12例(12.24%)。C677T及A1298C各位點基因型在不同臨床分組中比較差異均無統計學意義(P>0.05),見表1。ALL患兒MTHFR C677T和A1298C的突變率分別為66.33%和44.90%。

表1 ALL患兒各基因型分布[n(%)]
2.2TPMT基因型分布 98例ALL患兒TPMT A719G位點:AA野生型86例(87.76%),AG雜合型7例(7.14%),GG純合型5例(5.10%)。TPMT G460A位點:GG野生型89例(90.82%),GA雜合型5例(5.10%),AA純合型4例(4.08%)。A719G及G460A各位點基因型在不同臨床分組中比較差異均無統計學意義(P>0.05),見表2。

表2 ALL患兒TPMT A719G、G460A基因型分布[n(%)]
2.3MTHFR基因型與化療不良反應的關系 98例ALL患兒中,出現血小板減少、血紅蛋白降低和中性粒細胞減少的分別有14例(14.29%),51例(52.04%)和78例(79.59%),發生黏膜損傷25例(25.51%),肝臟毒性21例(21.43%)及胃腸道反應36例(36.73%)。C677T各SNP相關化療后不良反應比較差異均無統計學意義(P>0.05);A1298AC出現血小板減少的比例(28.13%)高于A1298AA基因型(7.41%)與A1298CC基因型(8.33%),A1298AA發生黏膜損傷的比例(9.26%)低于A1298AC基因型(43.75%)與A1298CC基因型(50.00%),比較差異均有統計學意義(P<0.05),其余不良反應與A1298C各SNP比較差異均無統計學意義(P>0.05),見表3。
2.4TPMT基因型與化療不良反應的關系 A719G各SNP相關化療后不良反應比較差異均無統計學意義(P>0.05),G460A各SNP各相關不良反應比較差異均無統計學意義(P>0.05),見表4。

表3 MTHFR C677T、A1298C基因多態性與化療后不良反應的關系(n)

表4 TPMT A719G、G460A基因多態性與化療后不良反應的關系(n)
隨著眾多基因的SNP位點的發現,ALL患兒的用藥個體化與基因多態性的關系正日益得到關注,影響ALL患兒化療藥物代謝的基因多態性已被作為ALL化療不良反應與預后的預測因素??谷~酸劑MTX是治療ALL的重要藥物,MTX經膜葉酸受體及還原葉酸載體進入細胞內,再經合成酶催化多聚谷氨酸化形成MTXPGs,從而發揮競爭性抑制二氫葉酸還原酶(DHFR)的作用,使DNA復制所必需的dTMP合成受抑制而發揮抗腫瘤作用。MTHFR是葉酸代謝相關酶,能催化亞甲基四氫葉酸轉變為甲基四氫葉酸,其催化的代謝途徑能被MTX抑制,因而MTX的不良反應及藥理作用與MTHFR的多態性關系密切[12]。6-MP是治療兒童ALL的抗嘌呤代謝藥物,通過抑制嘌呤合成途徑,競爭性抑制次黃嘌呤的轉變,并阻礙DNA合成,使淋巴細胞增殖受到抑制,是維持治療的重要藥物,但6-MP必須經過代謝生成硫鳥嘌呤核苷酸(TGNs)后才能發揮抗腫瘤活性。TPMT能將6-MP催化轉變為無活性的甲基化代謝物,從而降低穩態TGNs水平。研究顯示對6-MP敏感性低的ALL患兒在使用標準劑量藥物后因抑制作用不充分而易復發,而敏感性高的患兒則易出現不良反應,導致藥物效應差異的主要原因是藥物代謝酶基因的差異[5]。TPMT是6-MP代謝過程的關鍵酶,其基因多態性與ALL患兒的個性化劑量及不良反應也受到高度關注。
研究顯示,不同地區和種族的人群MTHFR、TPMT各SNP的突變情況及頻率有所不同。本研究結果表明,本地區ALL患兒MTHFR C677T和A1298C的突變率分別達66.33%和44.90%,與鄭苗苗等[13]、伍艷鵬等[8]研究相似。本研究TPMT A719G、G460A的突變率分別為12.24%及9.18%,高于謝茜等[5]及陳小文等[14]研究,提示中國不同地區人群可能具有特征性的基因變異。由于MTHFR在MTX與葉酸的代謝中起重要的作用,MTHFR C677T和A1298C 2個基因位點的變異可改變酶的活性,從而影響MTX的化療效應[15]。目前對于MTHFR C677T和A1298C與MTX化療不良反應的關系具有不同的觀點,LIU等[16]研究顯示677CT/TT基因型會使ALL患兒出現血小板降低的風險增加,而677TT基因型相對于677CC野生型,導致黏膜損害及肝臟毒性的風險也出現升高[17]。本研究顯示C677T各基因型出現MTX化療不良反應的差異無統計學意義,與鄭苗苗等[13]、廖清船等[18]研究一致。本研究發現A1298AC出現血小板減少的風險增加(P<0.05),KANTAR等[19]研究顯示1298AC/CC基因型使肝毒性及骨髓抑制的風險上升。推測MTHFR A1298C多態性代謝過程中亞甲基四氫葉酸分流至DNA合成補救途徑較低,使DNA合成受到抑制,并在細胞內與MTX共同抑制二氫葉酸轉化為四氫葉酸,阻斷胸腺嘧啶核苷酸和嘌呤核苷酸合成,從而導致較為嚴重的不良反應。但也有研究報道A1298C SNP與MTX不良反應無顯著相關[20]。本研究顯示A1298AA出現黏膜損傷的風險下降(P<0.05),與伍艷鵬等[8]研究一致。MTHFR A1298AA基因突變時可能將谷氨酸錯譯為丙氨酸,并增加產生胸腺核苷酸酶作用物,可合成更多的DNA從而降低不良作用。本研究顯示,TPMT A719G、G460A各SNP與化療后不良反應的出現均無明顯關聯,與謝茜等[5]研究結果一致。提示不同地區的TPMT的基因多態性可能存在差異。此外,只對2個TPMT的位點多態性進行檢測可能無法評價其與6-MP的不良反應的關系。
綜上所述,MTHFR A1298C的基因多態性可能影響ALL患兒化療出現的不良反應,臨床治療時可依據對MTHFR A1298C SNP的檢測預測患兒MTX化療后不良反應。同時,可考慮對TPMT其他基因多態性進一步檢測,明確TPMT與6-MP化療不良反應的關系,以指導ALL患兒的個體化治療??紤]到基因多態性對ALL化療可能具有的綜合影響,還需進一步擴大樣本量,進行更加深入地研究。
[1]陳洋,夏江寶,何曉東,等.MTHFR基因多態性在MTX治療急性淋巴細胞白血病過程中毒性反應的Meta分析[J].中華疾病控制雜志,2015,19(8):811-815.
[2]葉啟東,顧龍君.兒童急性淋巴細胞白血病的個體化治療-TPMT和MTHFR基因多態性[J].中國實用兒科雜志,2016,31(4):286-291.
[3]PUI C H,EVANS W E.Treatment of acute lymphoblastic leukemia[J].N Engl J Med,2006,354(2):166-178.
[4]D′ANGELO V,RAMAGLIA M,IANNOTTA A,et al.Methotrexate toxicity and efficacy during the consolidation phase in paediatric acute lymphoblastic leukaemia and MTHFR polymorphisms as pharmacogenetic determinants[J].Cancer Chemother Pharmacol,2011,68(5):1339-1346.
[5]謝茜,肖劍文,憲瑩,等.巰嘌呤治療兒童急性淋巴細胞白血病相關不良反應及其與TPMT基因多態性關系的研究[J].重慶醫科大學學報,2011,36(7):777-781.
[6]中華醫學會兒科學會血液組.兒童急性淋巴細胞白血病診療建議(第三次修訂草案)[J].中華兒科雜志,2006,44(5):392-395.
[7]LUO X Q,KE Z Y,GUAN X Q,et al.The comparison of outcome and cost of three protocols for childhood non-high risk acute lymphoblastic leukemiain China[J].Pediatr Blood Cancer,2008,51(2):204-209.
[8]伍艷鵬,賀湘玲,鄒潤英,等.急性淋巴細胞白血病患兒 MTHFR 基因多態性與大劑量甲氨蝶呤化療后不良反應的關系[J].廣東醫學,2015,36(3):413-416.
[9]ASHAVAID T F,RAGHAVAN R,SHAH S,et al.TPMT and DPD polymorphisms:efficient screening method for Indian patients considering taking Thiopurine and 5-FU drugs[J].Dis Markers,2009,27(5):231-238.
[10]ZHANG L R,SONG D K,ZHANG W,et al.Efficient screening method of the thiopurine methyltransferase polymorphisms for patients considering taking thiopurine drugs in a Chinese Han population in Henan Province (central China)[J].Clin Chim Acta,2007,376(1/2):45-51.
[11]謝偲,岳麗杰,丁慧,等.6-巰基嘌呤致急性淋巴細胞白血病患兒不良反應及其與TPMT基因多態性的關系[J].中國當代兒科雜志,2014,16(5):499-503.
[12]FRENCH D,YANG W J,CHENG C,et al.Acquired variation outweighs inherited variation in whole genome analysis of methotrexate polyglutamate accumulation in leukemia[J].Blood,2009,113(19):4512-4520.
[13]鄭苗苗,岳麗杰,陳小文,等.急性淋巴細胞白血病患兒MTHFR基因多態性與大劑量甲氨蝶呤不良反應的關系[J].中國當代兒科雜志,2013,15(3):201-206.
[14]陳小文,岳麗杰,李成榮.白血病患兒和
健康兒童TPMT基因多態性檢測分析[J].中華醫學遺傳學雜志,2009,26(4):457-460.
[15]CHIUSOLO P,GIAMMARCO S,BELLESI S A,et al.The role of MTHFR and RFC1 polymorphisms on toxicity and outcome of adult patients with hematological malignancies treated with high-dose methotrexate followed by leucovorin rescue[J].Cancer Chem Pharmacol,2012,69(3):691-696.
[16]LIU S G,LI Z G,CUI L,et al.Effects of methylenetetrahydrofolate reductase gene polymorphisms on toxicities during consolidation therapy in pediatric acute lymphoblastic leukemia in a Chinese population[J].Leuk Lymphoma,2011,52(6):1030-1040.
[17]TANTAWY A A,EL-BOSTANY E A,ADLY A A,et al.Methylene tetrahydrofolate reductase gene polymorphism in Egyptian children with acute lymphoblastic leukemia[J].Blood Coag Fibr,2010,21(1):28-34.
[18]廖清船,李曉蕾,劉思婷,等.MTHFR基因多態性及單體型與大劑量甲氨蝶呤化療毒性反應的相關性研究[J].中華流行病學雜志,2012,33(7):735-739.
[19]KANTAR M,KOSOVA B,CETINGUL N,et al.Methylenetetrahydrofolate reductase C677T and A1298C gene polymorphisms and therapy-related toxicity in children treated for acute lymphoblastic leukemia and non-Hodgkin lymphoma[J].Leuk Lymphoma,2009,50(6):912-917.
[20]ER?ULJ N,KOTNIK B F,DEBELJAK M,et al.Influence of folate pathway polymorphisms on high-dose methotrexate-related toxicity and survival in childhood acute lymphoblastic leukemia[J].Leuk Lymphoma,2012,53(6):1096-1104.