梁巧蘭 魏列新 柳利龍 吳瓊 徐秉良
摘要
為了解甘肅省裸仁美洲南瓜白粉菌對己唑醇敏感性及抗性產生情況,采用小株噴霧法對采自蘭州、武威、景泰等地的20個南瓜白粉菌菌株對己唑醇的敏感性進行了測定,利用紫外誘導、藥劑馴化、先紫外后藥劑馴化三種方法對敏感菌株進行了抗藥性誘導,并對抗性突變菌株的生物學性狀及其對丙環唑、氟硅唑、腈菌唑和戊唑醇的交互抗性進行了研究。結果表明20個南瓜白粉菌菌株對己唑醇的敏感性存在一定差異,EC50值在17.77~285.54 μg/mL范圍內;與其他兩種誘導方法相比藥劑馴化方法獲得的抗性突變菌株的抗性倍數最高,為 8.94倍。敏感菌株和抗性突變菌株孢子萌發的最佳時間分別為36 h和48 h;抗性突變菌株產孢量和致病力明顯高于敏感菌株;適合度測定表明抗性突變菌株與敏感菌株之間存在競爭力,孢子萌發率、芽管個數之間差異顯著,菌絲分支數、產孢量之間差異不顯著;抗性突變菌株在抗性突變菌株和敏感菌株混合比例為80∶20的群體中,存在頻率比較穩定,連續培養7代后仍占85.69%;己唑醇抗性突變菌株對丙環唑、氟硅唑、腈菌唑和戊唑醇4種藥劑未表現出交互抗性。研究結果可為甘肅省防治南瓜白粉病提供理論依據。
關鍵詞
裸仁美洲南瓜; 白粉菌; 己唑醇; 抗性誘導; 抗性菌株; 生物學性狀; 交互抗性
中圖分類號:
S 481.4
文獻標識碼: A
DOI: 10.16688/j.zwbh.2017152
Resistance induction of Podosphaera xanthii in pumpkin to hexaconazole and
biological characterization of its resistant strains in Gansu
LIANG Qiaolan, WEI Liexin, LIU Lilong, WU Qiong, XU Bingliang
(College of Plant Protection, Gansu Agricultural University, Biocontrol Engineering Laboratory of
Crop Diseases and Pests of Gansu Province, Lanzhou 730070, China)
Abstract
To understand the sensitivity and resistance of the pathogen powdery mildew in hullless pumpkin to hexaconazole in Gansu Province, the sensitivity of 20 Podosphaera xanthii strains collected from the fields of Lanzhou, Wuwei, Jingtai and other places to hexaconazole were measured in pumpkin seedling leaves by smallseedling spray method; the resistance of sensitive strain to hexaconazole was induced by using three kinds of UVinduction, fungicide screening, UVinduction before fungicide screening methods and biological characterization of the resistant strains and its crossresistance to propiconazole, myclobutanil, flusilazole, tebuconazole were also studied. The results indicated that there were some differences in the susceptibility of the 20 strains of Podosphaera xanthii to hexaconazole, with EC50 value from 17.77 μg/mL to 285.54 μg/mL. Compared with the other two methods, the resistance fold of the resistant mutant strains obtained by hexaconazole screening in the laboratory was the highest (8.94 fold). The optimum times for spore germination of sensitive strains and resistant mutant strains were 36 h and 48 h, respectively. The sporulation and pathogenicity of resistant strains were higher than those of sensitive strains, and there were significantly differences in conidial germination percentage and the number of germ tubes between resistant mutant strains and sensitive strains; however, the difference in their mycelial branch and sporulation rate were not significant. Resistant mutant strains were more stable in the mixed ratio of resistant and susceptible strains of 80:20, and still accounted for 85.69% after continuous cultivation for 7 generations. Resistant mutant strains to hexaconazole exhibited no crossresistance among the 4 kinds of triazole fungicides, i.e. propiconazole, myclobutanil, flusilazole, and tebuconazole. The results provided a theoretical basis for the efficient application of hexaconazole for the control of pumpkin powdery mildew in the field in Gansu Province.
Key words
hullless pumpkin; Podosphaera xanthii; hexaconazole; resistance induction; resistant strain; biological characterization; crossresistance of triazole fungicide
裸仁美洲南瓜Cucurbita moschata Duch. ex Lam.為葫蘆科南瓜屬一年生草本植物。因其種子有種仁而無種皮,故而又稱無殼南瓜,是一種比較罕見的變異類型。由于其營養豐富、用途廣泛、經濟效益高而發展非常迅速[1]。目前,裸仁美洲南瓜在全國各地均有種植,產量約180萬t,占世界總產量的1/3[2],對提高農民收入和帶動本地經濟發展起到了重要作用。但是,白粉病Podosphaera xanthii的發生日趨嚴重,已成為我國乃至國外生產綠色南瓜的主要制約因素[34]。南瓜白粉病不僅能降低植株的光合利用率,嚴重時還能使整株黃萎干枯,早衰死亡,最終導致南瓜產量和果實品質下降[56]。目前,南瓜白粉病的防治主要采用化學藥劑,化學藥劑具有防治迅速、見效快等特點。三唑類殺菌劑是我國農業生產中防治瓜類白粉病的高效藥劑,其中又以己唑醇防效最為突出[7],具有高效、低毒、廣譜和內吸活性,對多種真菌引起的病害具有保護和鏟除作用[8]。該藥劑于2004年在我國登記用于防治黃瓜白粉病,具有用量少、對植株相對安全性高的特點,應用潛力較大。但由于三唑類殺菌劑具有共同的作用位點,長期、大量使用易使病原菌產生抗藥性[9]。1984年用該類藥劑防治瓜類白粉病菌表現出藥效下降的現象[10]。另據報道,三唑類殺菌劑還存在抗藥性風險以及同類藥劑之間的交互抗性問題[11]。
目前針對瓜類白粉菌抗藥性的研究,僅在黃瓜白粉病菌對己唑醇的抗性、室內采用離體葉片接種法連續2次使用己唑醇防治南瓜白粉病菌后,病原菌對5%己唑醇ME產生了輕度抗性的報道[7,9,1213],而己唑醇等三唑類藥劑尚未在南瓜田廣泛應用,所以有必要對其抗藥性風險進行評估。本研究測定了采自甘肅省不同地方的20株南瓜白粉病菌對己唑醇的敏感性;采用藥劑馴化方法獲得了對己唑醇的抗性突變菌株,對抗性突變菌株和敏感菌株的生物學性狀、適合度進行了比較,并測定了己唑醇抗性突變菌株對4種三唑類殺菌劑的交互抗性。試驗結果對指導己唑醇在南瓜白粉病防治中的科學合理應用具有重要意義;同時,可為評估南瓜白粉病菌對己唑醇抗藥性風險以及制定科學的抗藥性治理措施奠定基礎。
1 材料及方法
1.1 材料
供試藥劑:95%己唑醇(hexaconazole)原藥,江蘇豐登農藥有限公司;95%腈菌唑(myclobutanil)原藥,漯河市新浩元農資有限公司;95%丙環唑(propiconazole)原藥,溫州綠佳化工有限公司;98%氟硅唑(flusilazole)原藥,常熟恒耀新材料有限公司;98%戊唑醇(tebuconazole)原藥,河南萬山化工產品有限公司。
供試菌種:供試菌株從南瓜種植田中感染白粉病的南瓜上采集,其中蘭州9株、武威5株、景泰4株,甘肅農業大學1株;甘肅農業大學農藥實驗室提供的室內培養的南瓜白粉病菌菌株(SY2)1株。
供試品種:裸仁美洲南瓜感病品種‘天然,由武威金蘋果種業有限公司提供。
試驗材料:光學顯微鏡、毛筆、紫外燈、燒杯、小型噴霧器、考馬斯亮藍、十二烷基硫酸鈉(sodium dodecyl sulfate, 簡稱SDS)。
1.2 方法
1.2.1 南瓜白粉病菌對己唑醇敏感性測定及敏感菌株的獲得
用環己酮和二甲基甲酰胺將農藥原藥溶解,然后加乳化劑E l10和1602#,配制成有效成分質量分數為5%的微乳劑,噴施時直接用水稀釋至使用濃度。病害調查參考賈忠明的方法[7]。采用小株噴霧法測定南瓜白粉病菌對己唑醇敏感性,將采自不同地方的南瓜白粉病菌孢子用毛筆刷下溶于5 mL含0.1%SDS的溶液中,接種在實驗室盆栽的健康南瓜植株上(兩葉期)。發病后將病原菌制成臨時玻片在顯微鏡下觀察病原菌形態,確定為南瓜白粉病病原后,取單個病斑接種到健康南瓜植株上進行白粉菌擴繁,將擴繁得到的白粉菌配成孢子懸浮液,孢子濃度為50~60個分生孢子/視野(10×10倍),采用涂抹法接種健康南瓜植株,3 d后噴施系列濃度的己唑醇水稀釋液(濃度分別為:1 000、500、250、125、62.5 μg/mL、CK)。每濃度處理10株,重復3次,放置在室溫下(25℃)培養7 d,按下列分級標準調查病斑(表1),并按下式計算病情指數和防治效果[14]。
1.2.2 南瓜白粉病菌抗藥性突變菌株的獲得
南瓜白粉菌對己唑醇抗性的誘導參考楊連來等[12]的方法進行,略有修改。根據1.2.1毒力測定的結果,選取對己唑醇極敏感的菌株在實驗室內接種培養作為敏感菌株,將其分生孢子配制成懸浮液,孢子濃度為50~60個分生孢子/視野(10×10倍),采用涂抹法接種在南瓜葉片上,在25℃、RH 60%、4 400 lx光照12 h/d的培養箱內培養3 d后,備用。
1.2.2.1 紫外誘導
接種敏感菌株后培養3 d的南瓜幼苗放在功率為30 W的紫外燈(波長254 nm)下分別照射(預熱30 min,距離南瓜子葉30 cm)2、3、4、5.5、10 min后,放置在培養箱內20℃黑暗條件下培養24 h后轉移到25℃、RH 60%、4 400 lx光照12 h/d的培養箱內繼續培養,待產生大量孢子堆后,用毛筆掃下,配成孢子懸浮液再次接種,3 d后用小型噴霧器均勻噴施系列濃度的己唑醇水稀釋液,晾干后繼續在培養箱內培養7 d,有明顯可見病斑后檢查并記錄葉片發病情況。按1.2.1中的方法檢查病斑個數并計算藥劑防治效果,求其EC50,將紫外照射后獲得的菌株EC50與敏感菌株EC50相比,計算抗性突變菌株的抗性倍數,抗性類別參考慕立義害蟲抗藥性類別制定,略有修改(表2)[15]。評價室內誘導的抗性突變菌株的抗性水平,確定紫外線最佳誘導時間;選擇抗性水平最高的菌株以篩選出的最佳誘導時間再通過紫外照射,連續誘變7代,記錄第1、3、5、7代的抗性水平。孢子懸浮液濃度和培養條件同上。
抗性倍數RF=抗性菌株EC50/敏感菌株EC50。
1.2.2.2 藥劑馴化
用小型噴霧器向接種敏感菌株后培養3 d的南瓜幼苗均勻噴施系列濃度的己唑醇水稀釋液,晾干后在培養箱內繼續培養7 d,檢查并記錄葉片發病情況。計算其EC50。用毛筆掃下發病的孢子堆配成孢子懸浮液再次接種南瓜葉片,培養3 d后噴施濃度為EC50值的己唑醇水稀釋液,發病后獲得的白粉菌孢子作為藥劑馴化的第1代,如此連續馴化7代后,測定每一代的EC50和抗性水平。孢子懸浮液濃度、培養條件和計算方法同上。
1.2.2.3 先紫外誘導后藥劑馴化
按上述篩選出最佳誘導時間紫外誘導結束后,將產生的孢子堆配成孢子懸浮液接種在南瓜葉片上,以第1次藥劑馴化所測得的敏感菌株EC50作為藥液濃度噴施處理接種發病的南瓜幼苗后,產生的白粉菌作為第1代誘導菌株,再用第1代誘導菌株接種南瓜幼苗,培養3 d后用紫外線照射相同的時間,然后噴施己唑醇水稀釋液(濃度為第1代誘導菌株的EC50),重復上述步驟,共誘導7代,測定每一代的EC50和抗性水平。孢子懸浮液濃度、培養條件和計算方法同上。
1.2.3 南瓜白粉病菌抗性突變菌株的生物學特性
1.2.3.1 抗性突變菌株的抗性穩定性測定
將上述藥劑馴化獲得的抗性突變菌株在不施藥的情況下連續培養5代后,噴施系列濃度的己唑醇(濃度同1.2.1),計算每代的EC50,比較抗性水平的變化。
1.2.3.2 抗性突變菌株的生物學性狀
選取對己唑醇極敏感的菌株在實驗室內接種培養作為敏感菌株,以藥劑馴化的為抗性突變菌株,觀察兩者的孢子萌發,將敏感菌株和抗性突變菌株的孢子懸浮液分別涂抹接種于南瓜葉片,在25℃、RH 60%、4 400 lx光照12 h/d的培養箱內培養,于接種后不同時間打取葉子圓片后按照Kuzuyal等[16]所描述的方法觀察并計算孢子萌發率,每12 h檢查1次結果,試驗重復3次,按下式計算孢子萌發率。
孢子萌發率=萌發的孢子數/孢子總數×100%。
敏感菌株和抗性突變菌株致病力和產孢量測定參考楊連來方法[12]進行。接種的南瓜植株放置于25℃、RH 60%、4 400 lx光照12 h/d的培養箱內培養,7 d后按表1中的分級標準調查發病情況,分別計算敏感菌株和抗性突變菌株的發病率和病情指數,重復3次。
1.2.4 抗性突變菌株適合度及其與敏感菌株的競爭力測定
參考楊連來等[9]的方法進行,略有修改。將相同濃度的敏感菌株和抗性突變菌株孢子懸浮液(1×105個/mL)分別涂抹接種在南瓜葉片上培養,于接種40、52、96 h、發病10 d后顯微鏡下對抗性菌株和敏感菌株的分生孢子萌發率、分生孢子芽管數目、菌絲體的分支數目和病斑中分生孢子的數量進行適合度測定;競爭力測定中,將敏感菌株和抗性突變菌株的分生孢子懸浮液(1×105個/mL),分別按照20∶80,50∶50和80∶20體積比混合后,涂抹接種南瓜葉片,14 d后收集分生孢子接種下一代,如此重復1、3、7代后,再將收集到的第7代分生孢子配制成懸浮液接種南瓜葉片,發病后用打孔器將單個病斑取下,漂浮在對敏感菌株具有最小抑制作用濃度(10 μg/mL)的己唑醇藥液中。然后放在光照培養箱中培養7 d,觀察病斑擴大情況,記錄其數量,按下式計算抗藥性菌株頻率。以上數據均采用SPSS 19.0進行LSD法統計分析,P<0.05。
抗藥性菌株頻率=病斑擴大的數量/打取葉片的總數量×100%。
1.3 己唑醇抗性突變菌株對4種三唑類殺菌劑的交互抗性
配制己唑醇F7代抗性突變菌株和敏感菌株的分生孢子懸浮液,涂抹接種于南瓜葉片上, 96 h后分別噴系列濃度的氟硅唑、丙環唑、戊唑醇和腈菌唑等藥液,每處理重復4次,噴藥7 d后調查統計南瓜葉片上的病斑數目,計算防治效果及抗性菌株和敏感菌株的EC50,并進行比較,求出抗性倍數(公式同1.2.2.1中抗性倍數計算公式),按表2中標準確定抗藥性水平。
2 結果與分析
2.1 南瓜白粉病菌己唑醇敏感菌株的獲得
對采自蘭州市、武威、景泰和甘肅農業大學校園等不同地區的南瓜白粉菌19個菌株和SY2對己唑醇的敏感性進行了測定,結果表明這20個菌株對己唑醇敏感性存在一定差異,其中采自武威的菌株EC50最高達285.54 μg/mL,甘肅農業大學的菌株EC50最低,為17.77 μg/mL,相差15.07倍,其余各菌株的EC50介于兩者之間;將采自甘肅農業大學的菌株ND1經室內接種南瓜幼苗培養擴繁5代后,測定其對己唑醇的EC50后發現,與SY2菌株的EC50相接近,為此以SY2作為己唑醇敏感菌株(表3)。
2.2 南瓜白粉菌對己唑醇抗性的獲得
2.2.1 紫外照射不同時間對南瓜白粉菌抗性突變體的誘導
通過紫外線對以上敏感性測定獲得的南瓜白粉病菌敏感菌株SY2照射不同時間后,獲得了南瓜白粉病菌抗性突變菌株,且隨著紫外線照射時間的增加,南瓜白粉病菌對己唑醇抗性倍數呈現先升后降的變化趨勢,其中以照射2 min時所獲得的抗性倍數最低,為1.39,照射3 min所獲得的抗性倍數最高,為2.53,其他照射時間的抗性倍數均低于2.53,分別為1.81、1.73和1.67,而且照射時間超過3 min后南瓜幼苗死亡嚴重,因此,紫外線最佳照射誘導時間為3 min(圖1)。
2.2.2 抗性突變菌株誘導方法比較
通過對三種方法誘導南瓜白粉病菌SY2菌株對己唑醇產生抗性的比較,發現三種方法均能獲得抗性突變菌株(每種方法誘導獲得1株),隨著抗性誘導代數的增加, 抗性倍數逐漸增大,其中藥劑馴化方法獲得的抗性突變菌株的抗性倍數最高,且與其他兩種方法誘導產生的抗性突變菌株抗性倍數之間存在極顯著差異(表4)。
2.3 南瓜白粉病菌抗性突變菌株穩定性測定
通過對己唑醇藥劑馴化獲得的抗性突變菌株抗性穩定性測定,結果表明將抗性突變菌株(F7,RF=8.94)連續培養5代后(F8、F9、F10、F11、F12),其抗性倍數相對于F7菌株的抗性倍數差異不大,表明抗性穩定性較好(圖2)。
2.4 南瓜白粉菌抗性突變菌株生物學性狀研究
2.4.1 南瓜白粉菌敏感菌株和抗性突變菌株孢子萌發觀察
通過對己唑醇藥劑馴化獲得的抗性突變菌株(F7,RF=8.94)孢子萌發率測定,結果表明敏感菌株(SY2)和抗性突變菌株均在接菌8 h后開始萌發;其萌發的最佳時間分別為36 h和48 h,孢子萌發率分別達到13.58%和16.26%。方差分析表明,抗性突變菌株和敏感菌株孢子萌發率在48 h差異極顯著,其他時間差異不顯著(圖3,表5)。
2.4.2 敏感菌株和藥劑馴化菌株致病力和產孢量的測定
通過致病力測定,結果表明隨著藥劑馴化次數的增加,誘導菌株的發病率和病情指數均高于敏感菌株,第1、3、5、7代藥劑馴化菌株的發病率分別比敏感菌株(SY2)提高了1.71%、16.00%、12.55%和15.65%;病情指數分別比敏感菌株的高3.16、7.31、5.95、13.48,表明藥劑馴化菌株的致病力隨著藥劑馴化次數的增加而增強。方差分析表明,第7代馴化菌株和敏感菌株的發病率和平均病情指數之間差異極顯著,其他各代的發病率和病情指數介于兩者之間(表6)。
對敏感菌株和藥劑馴化菌株產孢量測定結果表明,隨著藥劑馴化次數的增加抗性突變菌株后代的產孢量相對于敏感菌株(SY2)有所增加,接種10 d后第1、3、5、7代藥劑馴化的抗性突變菌株產孢量分別比敏感菌株高1.07×105、1.21×105、1.28×105、1.85×105個/mL。方差分析結果表明第7代藥劑馴化的抗性突變菌株(F7)產孢量與敏感菌株(SY2)的產孢量之間存在顯著差異,其他菌株產孢量介于兩者之間(表6)。
2.4.3 抗藥性菌株適合度的測定
通過己唑醇藥劑馴化第7代的白粉菌抗性突變菌株(F7,RF=8.94)適合度測定,結果表明抗性突變菌株在孢子萌發率、芽管個數、菌絲的分支數目和產孢量等方面均高于敏感菌株,其中藥劑馴化菌株和敏感菌株的孢子萌發率、芽管個數之間差異顯著,而菌絲的分支數目、產孢量差異不顯著(表7)。
2.4.4 敏感菌株和抗性突變菌株分生孢子競爭能力的測定
使用藥劑馴化后獲得的抗性突變菌株(F7,RF=8.94)和敏感菌株之間的競爭力測定結果表明,抗性突變菌株和敏感菌株等量混合培養中,抗性突變菌株的頻率在混合群體中逐漸下降,但培養7代后,仍然有30%的抗性突變菌株存在;混合比例在20∶80的處理培養7代后,只有2.47%的抗性突變菌株存在;混合比例在80∶20的處理中,抗性突變菌株的頻率在混合群體中變化趨勢是先上升后緩慢下降再上升,但變化幅度不大,培養7代后仍有85.69%的抗性突變菌株存在,表明抗性頻率基本保持穩定(表8)。
2.5 己唑醇抗性突變菌株對4種三唑類殺菌劑的交互抗性
己唑醇抗性突變菌株對丙環唑、氟硅唑、腈菌唑和戊唑醇的抗性水平分別為2.86、1.09、1.85和1.04,表明己唑醇抗性突變菌株對這4種藥劑未表現出交互抗性(表9)。
3 討論
南瓜白粉病是南瓜種植中發生和危害較重的病害之一,由于用藥頻繁,致使病原菌對藥劑產生了不同程度的抗性,防效大幅度降低。因此對白粉病菌進行抗藥性監測和篩選更高效藥劑是一項長期工作。在抗性試驗中,建立敏感基線最為重要,是抗藥性鑒別和監測的基礎。南瓜白粉病菌是專性寄生菌,無法離體培養,選擇合適的材料和方法最為重要,國外Bardin等[17]和Mcgrath等[18]采用固體培養基子葉葉盤法進行抗性測定,國內嚴紅等[19]采用子葉法監測了北京地區瓜類白粉病菌對三唑酮的抗性。為了明確蘭州市周邊地區南瓜白粉菌對己唑醇的敏感性現狀,分別采集、分離了19個南瓜白粉菌菌株,采用小株噴霧法測定了其對己唑醇的敏感性。結果表明19個白粉菌株對己唑醇表現為極敏感、敏感、低抗、中抗,EC50在17.77~285.54 μg/mL范圍內。對敏感菌株采用三種方法進行了抗藥性誘導,共獲得3株抗性突變菌株,其中藥劑馴化獲得的抗性突變菌株的抗性倍數最高,先紫外誘導后藥劑馴化的菌株抗性倍數最低,紫外誘導的菌株抗性倍數介于兩者之間,隨著誘導代數的增加,3種馴化方法誘導的菌株抗性倍數逐漸增大,其中藥劑馴化第7代的抗性倍數最大,為8.94,表現為低度抗性,這與在實驗室采用離體葉片法連續兩次使用5%己唑醇微乳劑后產生低度抗性的結果相一致[13]。
敏感菌株、抗性突變菌株生物學特性測定表明其孢子萌發最佳時間分別為36 h和48 h;且抗性突變菌株的產孢量和致病力明顯高于敏感菌株,其適合度在孢子萌發率、芽管個數與敏感菌株的差異顯著;抗性突變菌株和敏感菌株之間的競爭力測定表明,在培養7代后抗性突變菌株的頻率在80∶20混合群體比較穩定,為85.69%, 在20∶80混合群體中(抗性菌株∶敏感菌株)不穩定,只有2.47%的抗性突變菌株存在;這與楊連來等報道的研究結果一致[9];實際生產中抗藥性能否產生與病原菌抗性突變體出現的頻率有關[20],本試驗也表明抗性突變菌株與敏感菌株的競爭力可能與它們各自在病原菌群體中的比例有關,當己唑醇抗性突變菌株在病原菌群體中占80%時,即使離開藥劑的選擇壓力,它仍然保持較高頻率。
目前,國內外對禾谷類作物白粉病菌Erysiphe graminis的抗藥性研究較多,結果均是由于病菌潛育期短、再侵染頻繁、流行速度快,同時,病原菌群體本身也具有很高的潛在適應力,對殺菌劑產生了抗性,表現出對三唑類殺菌劑的敏感性大幅度降低;另據Collins等[21]對禾谷類白粉病菌的研究發現,三唑類殺菌劑品種之間存在交互抗性,而在本研究中,己唑醇誘導的抗性菌株對丙環唑、氟硅唑、腈菌唑和戊唑醇均未表現出交互抗性,表明在南瓜生產中只要科學合理地使用上述5種三唑類殺菌劑不僅可以有效防治南瓜白粉病,同時還可延緩白粉菌抗藥性的產生,延長三唑類殺菌劑防治白粉病的使用壽命。
綜上所述,蘭州周邊不同地區19個南瓜白粉病菌株和SY2對己唑醇的敏感性存在一定差異,EC50值在17.77~285.54 μg/mL范圍內;通過己唑醇誘導敏感菌株SY2 7代后,獲得了抗性突變菌株,抗性突變菌株產孢量和致病力明顯高于敏感菌株;適合度測定表明抗性突變菌株與敏感菌株之間存在競爭力,兩者孢子萌發率、芽管個數差異顯著,而菌絲分支、產孢量差異不顯著;在抗性突變菌株和敏感菌株混合比例為80∶20的群體中,抗性菌株存在頻率比較穩定,連續培養7代后仍占85.69%;己唑醇抗性菌株對丙環唑、氟硅唑、腈菌唑和戊唑醇4種藥劑未表現出交互抗性。
本試驗采用室內盆栽試驗,僅對蘭州周邊的19個南瓜白粉病菌株及SY2對己唑醇的敏感性、抗性誘導方法和誘導獲得的抗性突變菌株生物學特性、己唑醇抗性突變菌株對4種三唑類殺菌劑交互抗性進行了測定,對于其他地區南瓜白粉病菌對己唑醇的敏感性、田間抗藥性試驗以及與其他農藥交互抗性等問題尚未涉及;另外三唑類殺菌劑由于作用位點相同,在實際生產應用中極易產生交互抗性,但本試驗中對己唑醇產生抗性的白粉菌并沒有對丙環唑、氟硅唑、腈菌唑和戊唑醇表現出抗性,有關這些問題還有待于進一步研究。
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