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冠狀動脈CT成像不同管電壓對外周血淋巴細胞DNA雙鏈斷裂影響的研究

2018-05-23 03:16:38林竹瀟張龍江周長圣周帆顧海峰鮑雪芹盧光明
放射學實踐 2018年5期
關鍵詞:劑量研究

林竹瀟, 張龍江, 周長圣, 周帆, 顧海峰, 鮑雪芹, 盧光明

冠狀動脈CT成像(coronary CT angiography,CCTA)已成為疑似冠心病患者的首選影像檢查方法[1-3],但是伴隨而來的是人群輻射暴露的增加。目前有多種技術,如降低管電壓和管電流、適當的前置濾過器、ECG調制電流技術、增加螺距及層面厚度等可用于降低CCTA的輻射劑量[4-7],其中降低管電壓是降低輻射劑量最有效的方法。

輻射劑量的評估常用有效劑量(effective dose,ED)、CT容積劑量指數(volume CT dose index,CTDIvol)、劑量長度乘積(dose-length product,DLP)及水當量體型特異性劑量估算值(water equivalent size specific dose estimate,water equivalent SSDE)等指標,其對人體輻射的評價存在±40%的不確定性,而生物學指標更能直接地反映輻射風險[8]。在生物學評價指標中,DNA雙鏈斷裂(double strand breaks,DSBs)是反映輻射的生物學損傷最有價值的表現[9]。DNA損傷信號反應通路存在多種蛋白,其中磷酸化的H2AX(γ-H2AX)蛋白和共濟失調毛細血管擴張突變(ataxia telangiectasia-mutated,ATM)蛋白可以作為DNA雙鏈斷裂的標記物[10]。目前大部分研究采用免疫熒光顯微鏡作為檢測γ-H2AX焦點的方法,但流式細胞儀分析DNA雙鏈斷裂的結果更客觀、實驗周期更短[11]。本研究旨在利用流式細胞儀評價不同管電壓的CCTA對DNA雙鏈斷裂的影響。

材料與方法

1.研究對象

本研究采用前瞻性設計,選取2016年4月-2017年7月間行CCTA檢查的患者120例,隨機分為A、B、C、D四組,分別行管電壓為120 kV、100 kV、80 kV及70 kV的CCTA掃描。研究對象納入標準:年齡大于18周歲、體質量指數<25 kg/m2、未患淋巴瘤或白血病、6個月內未行放射治療或化療、1周內未接受X線或核醫學檢查。因樣本保存條件欠佳,排除3例患者后,最終117例患者納入本組研究。本研究已通過倫理委員會審查許可,研究對象均簽署知情同意書。

2.檢查方法

所有納入患者的CT掃描均采用第二代雙源CT掃描儀(Somatom Definition Flash,Siemens Healthineers,Forchheim,Germany)。CT掃描經定位像確定掃描范圍后,利用Lrich雙筒高壓注射器向患者外周靜脈內注射非離子對比劑優維顯60 mL(370 mg I/mL),注射流率5 mL/s;延遲時間應用人工智能觸發掃描系統確定,將興趣區投至升主動脈,當CT值達到100 HU即可觸發掃描。A、B、C、D四組管電壓分別為120 kV、100 kV、80 kV、70 kV;其余參數保持一致:管電流280 mA,機架旋轉時間0.28 s;四組掃描范圍相同。

3.血樣處理

每位患者于檢查前及檢查后20 min分別抽取血液2 mL裝入肝素抗凝管,并用磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)1:1稀釋。將稀釋的血液置于外周血淋巴細胞分離液(MP Biomedicals,Solon,OH)之上,在離心機內以2100 rpm離心30 min后,用吸管洗出淋巴細胞層,并用PBS清洗2遍。將細胞密度調整為1×106個/ml,4%多聚甲醛4℃固定過夜。用PBS洗去固定液(1200 rpm離心,5 min)后,以0.1% Triton X-100冰上處理細胞5 min,并再用PBS洗滌細胞2次(1200 rpm離心,5 min)。最后使用FITC-CD3抗體(BD Biosciences,Franklin Lakes,NJ)、APC-γ-H2AX抗體(BD Biosciences,Franklin Lakes,NJ)及PE-ATM抗體(Millipore,Billerica,MD)孵育重懸細胞,室溫下避光保存30 min。

4.流式檢測

用流式細胞儀(FACScanto,BD Bioscience)對樣品進行檢測。首先圈出CD3+T淋巴細胞群體,再根據陰性管設置閾值,并對APC及PE兩種熒光進行補償調整;每管樣品均計數104個CD3+T淋巴細胞,最后分別計算標記了γ-H2AX及ATM兩種蛋白的細胞占CD3+ T淋巴細胞的百分比。

5.統計學分析

結 果

1.人口學特征

A、B、C、D四組間的年齡、性別、身高、體重及體質量指數差異均無統計學意義(P值分別為0.195、0.836、0.998、0.947及0.204,表1)。

2.組內比較結果

在不同管電壓下,檢查后與檢查前相比,A、B、C、D四組γ-H2AX和ATM陽性細胞百分比均升高,四組檢查后與檢查前結果比較差異均有統計學意義(P值均<0.05)。經CCTA檢查后,四組γ-H2AX陽性細胞百分比改變值的中位數分別為2.2%、1.6%、0.8%、1.9%,ATM陽性細胞百分比改變值的中位數分別為2.6%、2.2%、2.3%、4.7%(表2,圖1)。

表1 A、B、C、D四組間的人口學特征

表2 A、B、C、D四組間γ-H2AX及ATM陽性細胞百分比及檢查前、后差值

圖1 不同管電壓條件下,CCTA檢查后與檢查前相比,γ-H2AX 與ATM陽性細胞百分比均升高,表示P<0.05。a) CCTA檢查前、后γ-H2AX陽性細胞百分比; b) CCTA檢查前、后ATM陽性細胞百分比。

3.組間比較結果

隨著管電壓由120 kV降低至80 kV,γ-H2AX陽性細胞百分比的差值逐漸下降,進一步降低至70 kV,γ-H2AX陽性細胞百分比的差值上升;兩兩比較結果顯示,除A組與C組(P=0.007)、B組與C組之間(P=0.003)差異有統計學意義外,其余組間差異均無統計學意義(P值均>0.05),D組的陽性細胞百分比的差值與其他三組間差異均無統計學意義。管電壓為70 kV時,ATM陽性細胞百分比的差值最大,管電壓為100 kV時,ATM陽性細胞百分比的差值最小,四組間陽性細胞百分比的差值的差異無統計學意義(P=0.381,表2,圖2)。

討 論

本研究結果證實CCTA管電壓降低至80 kV能夠有效減少DNA雙鏈斷裂。另外,管電壓由120 kV降低至100 kV后未見DNA雙鏈斷裂顯著減少;同時,70 kV管電壓的應用并沒有明顯降低DNA雙鏈斷裂。

圖2 四組間CCTA檢查后與檢查前γ-H2AX及ATM陽性細胞百分比的差值比較,表示P<0.05。γ-H2AX陽性細胞百分比的差值,除A組與C組(P=0.007)、B組與C組間(P=0.003)差異有統計學意義外,其余組間差異均無統計學意義(P值均>0.05)。四組間ATM陽性細胞百分比的差值的差異均無統計學意義(P值均>0.05)。

CCTA檢查后γ-H2AX水平會升高[12],有研究表明,即使是非常低的輻射劑量(約1 mGy),也可以誘導細胞中DSBs的發生[13]。因此在實際檢查過程中,通常會采用多種技術降低CCTA的輻射劑量;其中,降低管電壓是降低輻射劑量的主要方法[14-16],目前已經實現最低至70 kV的CCTA掃描[17-18]。有研究認為,盡管管電壓的降低會造成圖像噪聲的增加,但在同時采取其他措施(如自動曝光控制、重建方法等[19-21])的條件下,最終沒有引起圖像質量的明顯降低。然而,管電壓的降低使射線穿透力下降,被人體吸收的散射線增加。有研究證實,相比于高管電壓(140 kV),低管電壓(80 kV)引起了DNA雙鏈斷裂增加[22]。本研究結果顯示,管電壓為80 kV時,發生DNA雙鏈斷裂的細胞最少,隨著管電壓進一步降低至70 kV,發生DNA損傷的細胞增多。兩項研究結果存在差異的原因可能是掃描條件和檢測手段的不同;前者在降低管電壓的同時提高管電流,與后者保持管電流一致相比,可能會造成輻射損傷的增加。雖然多數研究采用免疫熒光顯微鏡進行DNA雙鏈斷裂的檢測,而且敏感性可能高于流式細胞術;但已有文獻證實,流式細胞術的敏感性可滿足臨床上DNA損傷的檢測要求[23];Nguyen等[10]也認為,應用流式細胞儀檢測T淋巴細胞中發生DNA雙鏈斷裂的細胞比例變化同樣能夠反映DNA損傷與輻射劑量的關系,并且檢查前后ATM陽性細胞百分比改變程度高于γ-H2AX的結果也與文獻報道一致。本研究結果進一步證實,γ-H2AX較ATM更能檢測不同管電壓之間的區別,是一種檢測DNA雙鏈斷裂更敏感的指標。

綜上所述,本研究結果顯示經流式細胞儀檢測發現將管電壓降低至80 kV時,DNA雙鏈斷裂降至最低;而進一步降低管電壓至70 kV,DNA雙鏈斷裂出現上升趨勢。因此,通過降低管電壓的方法降低CCTA的輻射劑量,應將管電壓降低至80 kV為宜。

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