陳 驀, 王 武,李永東, 李明華
Willis環由兩側大腦前動脈起始段、兩側頸內動脈末端、兩側大腦后動脈借前、后交通動脈連通而成,其作用是調節血液分配,維持腦營養和功能活動。Willis環是顱內動脈瘤和腦缺血好發部位,顱內動脈瘤尤其好發于Willis環動脈分叉部[1]。小鼠因體型小、便于操作、價格便宜、轉基因種系多等優勢常用于腦動脈瘤、腦缺血、阿爾茲海默癥等[2-5]模型的Willis環建模。通過小鼠Willis環灌注成像了解其完整結構,可為小鼠腦動脈瘤和腦缺血模型提供有效的實驗證據。目前Willis環灌注方法多通過小鼠心尖處(左心室)進行心臟灌注,應用不同灌注劑(混合或不混合染液),最后取腦觀察Willis環。這些方法雖可觀察到Willis環結構,但多不完整或充盈不良,對微小腦動脈瘤就更難以清晰顯示。為解決這些問題,本實驗通過小鼠右側頸總動脈灌注對比劑Microfil顯示Willis環,旨在評價其成像可行性和效果。
清潔級C57BL/6小鼠20只(雄性,約14周齡,重約20 g)。本實驗設施環境條件符合中國國家標準《實驗動物環境及設施》(GB14925-2001)對屏障動物實驗設施的有關標準,動物飼養管理和動物實驗操作符合《上海市實驗動物管理條例》等法規要求。所有小鼠經標準實驗室飲食喂養。研究時間為2016年3月至2017年6月。
小鼠肌內注射肝素(500 U/kg),30 min后肌內注射氯氨酮稀釋液(1∶4)0.2 mL作麻醉;固定小鼠后解剖胸腔,依次自心尖灌注37℃0.9%氯化鈉溶液10 mL、4%多聚甲醛溶液和2%戊二醛溶液混合液(1∶1)15 mL;顯微鏡下分離右側頸總動脈,將24 g留置針從心尖插入右側頸總動脈起始部或中段,連接注射器后30 min內勻速緩慢推注Microfil(MV-130∶稀釋劑 ∶硬化劑=4∶5∶0.45)5 mL, 灌注操作示意圖見圖1;灌注后小鼠4℃過夜,從面部分離顱底骨后取腦,浸入4%甲醛中2~3 d,Stemi 508型和Axiocam 506 color型體視鏡(德國Carl Zeiss公司)下觀察。

圖1 小鼠灌注操作示意圖
將體視鏡下觀察到的Willis環定義為3種狀況:①完全充盈,即所有血管包括雙側頸內動脈、大腦中動脈和大腦前動脈充盈良好、灌注清晰,立體感強;②大部分充盈,即部分血管充盈良好、灌注清晰;③充盈不良,即僅有少部分血管充盈良好。
通過小鼠右側頸總動脈途徑Microfil灌注Willis環成像技術建立的小鼠Willis環形態結構見圖2。20只實驗小鼠全部灌注成功,總灌注成功率為100%。其中完全充盈11只(55%),大部分充盈4只(20%),充盈不良5只(25%)。大體觀察小鼠灌注后Willis環完整,染色血管顯示清晰;體視鏡下觀察小鼠Willis環清晰、充盈、立體。

圖2 小鼠Willis環形態結構
相比大型動物,小型動物(如鼠科、兔等)更常用于動脈瘤和腦缺血建模試驗[6]。其中鼠科動物體型小、價格便宜,且因轉基因技術發展有著廣泛種系,可進行復雜分子和細胞技術檢測[7],故最常用于動脈瘤和腦缺血實驗研究,而小鼠Willis環灌注常作為實驗環節一部分。
小鼠Willis環灌注前試驗已有學者報道,但方法與本研究有所不同。Lee等[8]對小鼠皮下注射肝素再麻醉30 min后,先灌注溫0.9%氯化鈉溶液和2%戊二醛,再以持續100 mmHg(1 mmHg=0.133 kPa)壓力向左心室灌注多聚甲醛固定血管,腦充盈后在55℃恒溫箱過夜聚合,再浸入15%氫氧化鉀溶液腐蝕,流水沖洗,浸入5%蟻酸15 min,冷凍干燥機中脫水48 h;脫水樣本覆蓋上離子涂層后于掃描電鏡(韓國COXEM公司)下觀察。此方法可觀察到清晰的動脈圖像,但灌注方法操作復雜,處理時間長,腐蝕劑存在一定危險性,且未經染色,觀察效果欠佳。李廣意等[9]在實驗小鼠麻醉后,體視顯微鏡下向左心室灌注填充劑(過氯乙稀10 g、乙酸乙脂90 mL、鄰苯二甲丁2.7 mL和紅色油料適量按比例配制),再將小鼠頭部分離并浸于鹽酸,對顱骨進行腐蝕軟化;待顱骨軟化后用手術器械剝離,于體視鏡下觀察。此方法優點是所取Willis環完整,缺點是取腦操作復雜,需要鹽酸反復腐蝕小鼠顱骨,還要再用器械修飾。Sugiyama等[10]在小鼠麻醉后左心室插管,先后注射0.9%氯化鈉溶液2 mL和預先混有Mogul L碳黑50 μL的乳膠復合物0.5 mL進行灌注。
通過左心室進行心臟灌注,Willis環不易完全充盈。為解決這一問題,本實驗在保留前實驗優點基礎上對某些步驟加以改進。首先,與之前學者研究的通過心尖-左心室-主動脈弓-頭臂干-右側頸總動脈-右側頸內動脈-Willis環行心臟灌注途徑不同,本實驗經右側頸總動脈-右側頸內動脈-Willis環途徑灌注,省去了心尖-左心室-主動脈弓-頭臂干這一中間環節,使得灌注血管充盈度更好,Willis環動脈顯像更加具有立體感。相比于其它研究者灌注后易于觀察Willis環血管外徑,本實驗灌注后更易于觀察Willis環血管內徑,達到MRA觀察效果。其次,本實驗選擇Microfil對比劑進行小鼠Willis環灌注。Microfil是由MV染劑、稀釋劑、硬化劑按一定比例混合而成的復合物。在生理注射壓力下灌注Microfil即能充滿小鼠微血管,并使其不透明;Microfil具有微小收縮性,可完全填充血管,提高血管灌注連續性,保證灌注后微循環在觀察時清晰生動;經Microfil灌注的組織顏色具有多樣化,便于顯微檢查和攝片[11]。再次,小鼠經灌注后從面部分離顱底骨取腦,無需腐蝕取腦。經過改進后,操作步驟得以簡化且更安全,試驗用時相應縮短。
實施本實驗需注意:①Microfil濃度配比。硬化劑濃度過高可能在未完全灌注前Microfil先凝固,不能完成灌注,濃度過低則長時間灌注也不凝固,導致血管充盈不充分。②0.9%氯化鈉溶液和固定劑推速可相對較快。Microfil灌注速度應緩慢勻速,流量過快可能造成小血管破裂,Willis環得不到完全灌注。但應注意Microfil要在30 min內灌注完成。
本實驗結論認為,通過小鼠右側頸總動脈途徑灌注Microfil顯示Willis環方法簡單、可行,不僅能使小鼠Willis環充盈良好,還能清晰顯示其立體結構,具有MRA成像效果。
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