水稻幼苗酵母雙雜交cDNA文庫的構建及鑒定

朱佳慧， 徐秋芳， 袁平平， 倪海平， 周益軍， 蔣選利， 杜何為

(1.長江大學生命科學學院，湖北荊州 434025； 2.江蘇省農業科學院植物保護研究所，江蘇南京 210014；3.貴州大學農學院，貴州貴陽 550025)

水稻黑條矮縮病是一種重要的水稻病毒病害，病原為水稻黑條矮縮病毒(rice black streaked dwarf virus，RBSDV)，主要通過介體灰飛虱以持久增殖型方式傳播。水稻感染RBSDV后的典型癥狀為病株矮縮、葉色濃綠、葉片僵直，莖稈、葉背和葉鞘處出現瘤狀突起。該病害自20世紀60年代和90年代在我國流行危害后，曾一度銷聲匿跡，2006年以來由于灰飛虱蟲量上升和帶毒率提高，水稻黑條矮縮病在江蘇、浙江、安徽等地麥輪作區的水稻上普遍發生，2009年僅江蘇省的發病面積達3.33×105hm2，造成巨大的經濟損失[1-2]。當前生產上栽培的水稻品種對黑條矮縮病的抗性較差，大部分為感病品種，尚未鑒定到高抗品種[3-4]。

水稻不同生育期對RBSDV的敏感性存在差異，3～4葉期幼苗最易感病[5]。苗期感病后，植株矮小、心葉短小而僵直，不能抽穗，嚴重的則出現枯死現象。分蘗期和抽穗期發病，出現包穗，部分分蘗能抽穗，但穗小或包穗，結實差[6]。水稻感染黑條矮縮病毒后細胞壁結構發生改變[7]，病毒感染后引起的矮縮癥狀可能與纖維素合成酶及類纖維素合成酶基因及木質素相關基因表達有關[8-9]，病毒影響水稻育性可能是由于病毒的P7-1蛋白的表達抑制了花藥中木質素合成，導致植株花藥開裂異常，不能結實[9]。然而，病毒如何影響寄主植物因子進而表現癥狀的機制還不是非常清楚。

酵母雙雜交系統是由Fields等于1989年首次提出并建立的[10]，是篩選已知蛋白互作因子的有效系統。為解析RBSDV與寄主水稻的互作機制，篩選水稻中與病毒互作的寄主蛋白，本研究以易感RBSDV的水稻品種日本晴為材料，取水稻敏感生育期3～4葉時的組織樣本構建酵母雙雜交cDNA文庫，為病毒致病相關寄主因子的篩選提供基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

水稻品種日本晴(OryzasativaL.japonica. cv. Nipponbare)于實驗室光照培養箱中培養至3～4葉期，取除根外的組織樣品作為試驗材料。試驗取樣時間為2014年8月，地點為江蘇省農業科學院植物保護研究所。

Trizol、CloneMiner Ⅱ cDNA Library Construction Kit、LR ClonaseTMⅡ Enzyme Mix、載體pDONRTM222、pDEST22、FastTrack?MAG mRNA isolation Kit均購自Invitrogen(USA)；載體pGADT7-DEST購自Clontech(USA)。

1.2 方法

1.2.1 總RNA提取 用液氮研磨水稻幼苗樣品，按照0.1 g樣品加入1 mL Trizol的比例提取總RNA，具體操作方法參照Trizol試劑說明書進行。采用Nanodrop 2000核酸分析儀檢測總RNA的質量及濃度，用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測總RNA的完整性。

1.2.2 mRNA分離純化 利用FastTrack?MAG mRNA isolation Kit分離并純化總RNA中的mRNA，具體步驟參照其說明書進行。分離純化后的mRNA采用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測其質量。

1.2.3 cDNA初級文庫構建 cDNA初級文庫的構建試驗方法參照CloneMiner Ⅱ cDNA Library Construction Kit文庫構建說明書進行。取分離純化后的mRNA，加入Biotin-attB2-Oligo(dT) Primer 和SuperScript Ⅲ RT酶進行反轉錄，合成cDNA第1條鏈，再以cDNA第1條鏈為模板，在大腸桿菌(Escherichiacoli) DNA Ligase、大腸桿菌DNA Polymerase Ⅰ、大腸桿菌RNase H以及T4DNA Polymerase的作用下合成cDNA第二鏈。將雙鏈cDNA與三框attB1重組接頭連接后，進行cDNA分級分離并且收集。純化后的cDNA通過重組反應連入pDONR222載體，反應產物電轉化大腸桿菌DH10B后，加入SOC培養基，置于37 ℃，225～250 r/min搖床培養 1 h。培養結束后，取10 μL菌液用于庫容量鑒定，剩余培養物加入甘油至終濃度為20%存于 -80 ℃，此即為初級文庫菌液。

1.2.4 酵母雙雜交cDNA文庫構建 將初級文庫菌液接種至100 mL含有卡那霉素(Kan)的LB(LB/Kan)培養基中，采用PureLink?HiPure Plasmid Filter Midiprep Kit(Invitrogen)提取初級文庫質粒，稀釋至300 ng/μL，在LR ClonaseTMⅡ Enzyme Mix的作用下與pGADT7-DEST(Invitrogen)載體進行重組反應。重組反應體系為：1 μL文庫質粒(300 ng/μL)、1 μL p GADT7-DEST(300 ng/μL)、4 μL LR Clonase II Mix、14 μL ddH2O，混勻后置于25 ℃恒溫培養箱中反應16～20 h。反應結束后電轉化DH10B感受態細胞，加入3 mL SOC培養基培養，獲得酵母雙雜交cDNA文庫菌液。取10 μL菌液鑒定庫容量，其余菌液加甘油至終濃度為20%，-80 ℃保存。

1.2.5 文庫重組率、文庫滴度和插入片段大小分析

1.2.5.1 文庫滴度分析方法 將10 μL文庫菌液稀釋1 000倍后，從中取出50 μL涂布含有相應抗性的LB平板，過夜培養后計算1 mL文庫菌液中的庫容量，即文庫滴度=平板上的克隆數/平板上涂布菌液的體積(μL)×稀釋倍數×1 000 μL。

1.2.5.2 重組率和插入片段長度分析 在鑒定庫容量的平板上隨機挑取24個克隆進行菌落PCR，初級文庫的PCR引物為pDNOR222載體2端的通用引物M13正向引物(5′-GTAAAACGACGGCCAG-3′)及M13反向引物(5′-CAGGAAACAGCTATGAC-3′)。酵母cDNA文庫的PCR所用引物為pGADT7載體的通用引物T7(5′-TAATACGACTC ACTATAGGGCGAGCGCCGCCATG-3′)和3′AD(5′-GTGA ACTTGCGGGGTTTTTCAGTATCTACGATT-3′)。PCR擴增條件為：94 ℃預變性5 min；94 ℃變性30 s，58 ℃ 退火30 s，72 ℃ 延伸90 s，35個循環；72 ℃延伸10 min。用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產物，分析擴增片段大小和擴增得到的基因片段數，計算重組率。

1.2.6 候選基因篩選水稻幼苗cDNA酵母文庫 利用RBSDV編碼的非結構蛋白P7-1作為候選基因篩選本研究所構建的水稻幼苗cDNA酵母文庫，以檢測cDNA文庫質量。pGADT7-RBSDV P7-1誘餌載體由實驗室構建保存，文庫篩選方法和步驟參照Clontech文庫篩選說明書進行。

2 結果與分析

2.1 總RNA的提取及mRNA的分離純化

采用Trizol提取水稻幼苗總RNA后測定濃度并進行質量分析，結果顯示，總RNA濃度為1 921.7 ng/μL，D260 nm/D280 nm=2.08(圖1)。總RNA經1%凝膠電泳分離可以看到3條清晰的條帶，分別為28S、18S和5S。28S亮度高于18S，且5S條帶清晰，沒有彌散，表明提取的RNA質量完好，沒有降解(圖2-A)。

利用試劑盒FastTrack?MAG mRNA isolation Kit分離純化并獲得mRNA。電泳結果顯示純化所得的mRNA是一條彌散的條帶，條帶最亮部分的范圍在較大的分子量范圍內(1～3 kb)(圖2-B)，表明分離純化的mRNA未發生降解，可用于cDNA文庫構建。

2.2 cDNA初級文庫的構建及分析

取10 μL初級文庫菌液稀釋1 000倍后，從中取出50 μL涂布LB/Kan平板，37 ℃培養過夜并計數平板上克隆數(圖 3-A)。根據“初級文庫滴度(CFU/mL)=平板上的克隆數/平板上涂布菌液的體積(μL)×稀釋倍數×1 000 μL，文庫容量(庫容)=CFU/mL×文庫菌液總體積(mL)”的計算公示，得初級文庫滴度為6.6×106CFU/mL，庫容為1.9×107CFU。隨機挑取24個克隆進行菌落PCR鑒定，檢測文庫重組率和cDNA插入片段大小，根據重組率=(有插入片段的反應個數/反應總數)×100%，計算得初級文庫重組率>95%，插入片段大小除有2個克隆大小在650～850 bp外，其余克隆插入片段大小都在1 kb以上(圖3-B)，符合初級文庫的高質量需求。

2.3 酵母雙雜交cDNA文庫的構建與分析

提取初級文庫質粒后，將初級文庫質粒與載體pGADT7-DEST進行LR重組反應，重組后轉化DH10B，獲得酵母雙雜交cDNA文庫。取10 μL文庫菌液稀釋1 000倍后，分別取出50 μL涂布LB/Amp(氯芐西林)平板，37 ℃培養過夜并計數平板上克隆數(圖4-A)。結果顯示，文庫滴度為4.5×106CFU/mL，庫容為1.3×107CFU。從文庫中隨機挑選24個克隆，用pGADT7載體的通用引物T7和3′AD進行PCR擴增，分析插入不同大小片段。凝膠電泳結果顯示，24個單克隆均可擴增到1個單一的條帶，重組率>95%，其中23個克隆插入片段大小>1 kb(圖4-B)。以上結果表明，構建的cDNA酵母文庫的庫容、重組率和插入片段大小達到標準cDNA文庫要求，可用于病毒互作基因的篩選。

2.4 篩選文庫鑒定

為進一步分析所構建的水稻幼苗cDNA文庫是否可用于篩選互作蛋白，以RBSDV編碼的非結構蛋白P7-1為誘餌，篩選本試驗所構建的cDNA文庫。將誘餌載體pGADT-P7-1轉化酵母菌AH109后，制備感受態，提取cDNA文庫質粒后進行轉化，涂布SD/-His/-Leu/-Trp平板，挑選生長良好的酵母菌落至SD/-His/-Leu/-Trp-Ade/X-α-Gal培養基培養，可篩選獲得變藍的酵母菌落(圖5)，表明本研究所構建的水稻日本晴幼苗cDNA文庫能用來篩選RBSDV與水稻互作的蛋白。

3 討論與結論

酵母雙雜交技術能在真核細胞狀態下檢測蛋白質之間的互作，具有操作簡便、靈敏度高等特點，已成為研究蛋白質之間相互作用的有效手段。該技術可用于檢測已知蛋白質之間的互作、建立基因組編碼蛋白間的相互作用圖譜、篩選藥物作用位點，還可以從cDNA文庫中以某個已知蛋白為誘餌進行大規模篩選，尋找與已知蛋白相互作用的未知蛋白，在多個研究領域中均有廣泛應用[11]。

在植物與病毒互作機制研究方面，以病毒蛋白為誘餌篩選寄主植物cDNA文庫，對于快速獲取寄主植物體內的互作蛋白，進而研究互作蛋白在病毒致病過程中的功能具有重要意義。以水稻矮縮病毒與水稻的互作研究為例，Zhu等以水稻矮縮病毒外殼蛋白P2為誘餌篩選cDNA文庫時發現，P2蛋白能夠與水稻體內赤霉素合成途徑關鍵酶貝殼杉烯氧化酶發生互作，導致赤霉素合成量下降，植物出現矮縮癥狀[12]。P2蛋白還能與水稻中生長素通路Aux/IAA家族蛋白OsIAA10相互作用，通過與OsIAA10的互作阻斷OsIAA10與OsTIR的互作，抑制26S蛋白酶體介導的OsIAA10降解，使OsIAA10蛋白的穩定和積累量增多，導致生長素通路響應受阻，進而有利于RDV的復制侵染[13]。此外，RDV非結構蛋白Pns11篩選水稻cDNA文庫發現， Pns11能與OsSAMS1互作，增強OsSAMS1的活性，導致乙烯含量增加，進而有利于病毒侵染[14]。此外，酵母雙雜交系統還用于研究植物蛋白與病毒的運動蛋白、病毒復制酶類蛋白等之間的互作研究。本研究以高感RBSDV的水稻品種日本晴為材料，取RBSDV最為敏感的3～4葉期組織構建了高質量酵母雙雜交cDNA文庫，并用RBSDV P7-1進行篩選可獲得陽性克隆，為研究水稻黑條矮縮病毒與水稻的互作奠定了基礎。

高質量cDNA文庫是進行有效篩選互作蛋白的基礎。評價cDNA文庫質量有2個重要指標，即cDNA文庫的代表性和重組序列的完整性[15-16]。文庫的代表性即文庫中含有的cDNA種類的完整性，可反映來源組織中表達信息(即mRNA)的完整性程度，是體現文庫質量的重要指標，可用庫容來衡量。庫容是指cDNA文庫中所包含的獨立重組子克隆數量。當文庫滴定濃度達到1.7×105CFU/mL時，即可認定為有效文庫，當文庫滴定濃度達到1×106CFU/mL時，可以滿足低豐度mRNA篩選要求[17]。本研究對提取的總RNA以及分離純化的mRNA進行了質量評價，所提總RNA和mRNA完整性好，未發生降解，構建的酵母cDNA文庫庫容為1.3×107CFU，滴度為4.5×106CFU/mL，表明所構建的cDNA文庫中所含基因信息豐富，可滿足常規文庫篩選要求，可用于進一步篩選與病毒互作相關重要基因。

重組cDNA片段序列的完整性可從重組率及插入片段長度2個方面來評價。重組率反映的是文庫中所有克隆的陽性率，即文庫中含有重組cDNA片斷克隆的比率。平均插入片斷長度即將隨機的菌落PCR得到的產物片斷長度取平均值，其體現了文庫中重組的cDNA片斷的序列完整性。只有重組cDNA片段足夠長，才更有可能從文庫中分離獲得目的基因的完整序列。本研究構建的文庫重組率>95%，插入片段大小各異，平均插入片段在1 000 bp以上，表明所建文庫符合高質量文庫要求。用RBSDV的候選基因P7-1篩選所構建的酵母cDNA文庫可以篩選到陽性克隆，也說明所構建文庫可以用作病毒互作蛋白篩選。

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