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培養液勻漿人參發根抗氧化、抗黑色素瘤作用

2018-09-26 09:38:34郜玉鋼何忠梅張連學
食品科學 2018年17期
關鍵詞:質量

王 璐,郜玉鋼*,郭 陽,劉 楊,陳 思,臧 埔*,何忠梅,趙 巖,張連學

癌癥嚴重威脅人類健康,每3 例確診癌癥病例中就有1 例是皮膚癌,全世界每年發生200多萬例皮膚癌病例,其中惡性黑色素瘤的致死率極高[1-2]。紫外線的輻射是皮膚癌發生的重要因素之一[3]。隨著臭氧層的破壞,越來越多的紫外線到達地面,研究表明人體長期暴露在紫外光,尤其是中波紫外線下,會引起皮膚衰老、DNA損傷、光老化甚至癌變[4]。人參皂苷可通過抑制自由基的生成,減少氧化損傷[5],達到抗氧化、抗紫外線、抗腫瘤等作用[6]。但人參及其提取物中的重金屬、農藥和溶劑殘留等會帶來安全風險[7],人參生長過程緩慢且大面積占用森林土地,為解決伐林栽參、老參地問題,科研人員以人參莖葉為外植體誘導出人參發根,工廠化生產人參皂苷[8]。目前人參發根研究多集中于發根誘導、培養條件優化、生產次生代謝產物[9],鮮見人參發根對黑色素瘤的作用研究。本實驗選擇富含人參皂苷成分、而無農藥、無重金屬、質量穩定的生物反應器人參發狀根及其培養液為原料[10],對其進行抗氧化、抗黑色素瘤功效評價,以期為黑色素瘤的預防和治療提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

人參發根及其培養液由本實驗室采用1/2 MS液體培養基,在25 ℃、110 r/min的恒溫搖床中繼代培養30 d所得。人參(Panax ginseng C. A. Mey.),為吉林撫松4 年生人參。

CuSO4、乙醇 北京化工廠;鄰苯二酚紫 上海源葉生物科技有限公司;抗壞血酸、焦兒茶酚 國藥集團化學試劑有限公司;總抗氧化能力檢測試劑盒、細胞周期試劑盒 碧云天生物技術公司;人黑色素瘤細胞A375 北納創聯生物技術有限公司;DMEM培養基、胰蛋白酶 美國GE公司;胎牛血清 杭州四季青生物工程材料有限公司;細胞凋亡試劑盒 美國BD公司;其他試劑均為國產分析純。

1.2 儀器與設備

LC-2010A高效液相色譜儀(配有LC-2010A型液相色譜泵、LC-2010A型自動進樣器、CLASS-VP色譜工作站) 日本島津公司;Infinite Pro 200全波長酶標儀瑞士TECAN公司;HHS-6s電子恒溫水浴鍋 余姚市上通溫控儀表廠;101A-2E烘箱 上海實驗儀器廠有限公司;GXZ智光照培養箱 寧波江南儀器廠;Guava?easyCyte流式細胞儀 德國默克密理博公司;E000327 CO2培養箱 青島Haier公司。

1.3 方法

1.3.1 細胞培養及樣品溶液的制備

于150 mL發根培養瓶中加入50 mL pH 6.0的1/2 MS液體培養基,每瓶接種1 g鮮人參發根,30 d繼代培養1 次,第30天取鮮人參發根10 g與培養液以1∶6(m/V)勻漿,于烘箱中60 ℃烘至質量恒定,待降至室溫,置于-20 ℃儲存備用,培養液勻漿人參發根用FG表示。

精確稱取FG粉、人參粉0.5 g于10 mL離心管中,加入5 mL體積分數70%乙醇溶液超聲108 min,離心取上清液,稀釋至系列梯度質量濃度,做抗氧化能力測定,其余揮干乙醇,干燥至質量恒定,密封冷藏以備后續實驗用。

人黑色素瘤細胞A375用含10%胎牛血清的DMEM培養基,于37 ℃、5% CO2培養箱中培養,液氮中凍存。

醇提的FG、人參(用RS表示)及達卡巴嗪(用DK表示)分別用DMEM培養基溶解后稀釋成100、200、400、600、800 μg/mL的含藥培養液。

1.3.2 人參皂苷含量的測定

取FG粉0.5 g加入5.0 mL色譜甲醇溶液,室溫下超聲提取30 min,4 000 r/min離心20 min,取上清液過0.45 μm濾膜備用[11]。每個樣品設3 個平行。色譜條件參照本實驗室建立的同時測定20 種人參皂苷的方法[12]。

1.3.3 Cu2+螯合能力的測定

取160 μL 0.1 mg/mL CuSO4溶液,加入40 μL 4 mmol/L的鄰苯二酚紫溶液,再加入80 μL不同質量濃度的樣品溶液后混勻,室溫反應20 min后于632 nm波長處測吸光度。以同質量濃度VC作為陽性對照,實驗重復3 次[13-14]。螯合率根據下式計算。

式中:Ai為加入樣品的反應液吸光度;A0為用醇替代樣品的反應液吸光度;A1為樣品對照組的吸光度。

1.3.4 PPO活力的測定

準確量取100 μL pH 7.4磷酸鹽緩沖液,向其中緩慢加入50 μL 2 mol/L的焦兒茶酚溶液,混勻后,置于37 ℃恒溫培養箱預熱15 min后加入50 μL各個質量濃度的樣品、對照品溶液,于525 nm波長處分別測定第0、0.5、1.0分鐘時的吸光度。定義1 min內1 g人參發根樣品使A525nm改變0.01為1 個多酚氧化酶(polyphenol oxidase,PPO)活力單位[15]。

1.3.5 總抗氧化能力的測定

根據總抗氧化能力檢測試劑盒建立FeSO4·7H2O標準曲線,求出線性回歸方程。用試劑盒對人參發根的總抗氧化能力在593 nm波長處進行測定,OD值代入回歸方程求出FG的抗氧化能力[16-17]。

1.3.6 流式細胞術檢測黑色素瘤細胞A375凋亡

根據細胞凋亡檢測試劑盒說明書,將對數期的A375細胞以1×106個/mL,接種于6 孔板內加藥孵育24 h收集細胞,加V-FITC孵育15 min取1×104個細胞用配有GuavaSoft 3.1系統的流式細胞儀對每個樣品進行分析。

1.3.7 流式細胞術檢測細胞周期分布

根據細胞周期試劑盒說明書,將對數期的A375細胞以1×106個/mL,接種于6 孔板內加藥孵育24 h收集細胞,于預冷體積分數70%乙醇溶液中4 ℃固定過夜。PI染色后,重懸細胞,37 ℃避光溫浴30 min。用配有GuavaSoft 3.1系統的流式細胞儀在激發波長488 nm波長處檢測紅色熒光,同時檢測光散射情況。對細胞DNA含量和光散射進行分析。

1.4 數據分析方法

用SPSS 17.0軟件進行ANOVA單因素方差分析,數據用 ±s表示,并進行Duncans’差異顯著性分析,以P<0.05表示差異顯著。

2 結果與分析

2.1 FG中人參皂苷含量

表1 FG中20 種人參皂苷單體含量Table 1 Contents of 20 ginsenosides in ginseng hairy root culture

圖1 FG高效液相色譜圖Fig. 1 High performance liquid chromatogram of ginsenosides in ginseng hairy root culture

如表1、圖1所示,采用20 種皂苷含量測定方法對FG進行測定,共檢測出13 種人參皂苷。Rg1、Re含量較高,皂苷含量加和值為(0.160 7±0.011 0)%。

2.2 Cu2+螯合能力

圖2 FG及VC對Cu2+螯合率Fig. 2 Cu2+-chelating rates of VC and ginseng hairy root culture

如圖2所示,VC的Cu2+螯合率先增加后緩慢降低,FG對Cu2+的螯合率隨著質量濃度的增大顯著增加(P<0.05),其中40 mg/mL時螯合率已達到50.73%,100 mg/mL時螯合率為66.51%,顯著高于FG的其他組(P<0.05),雖低于同質量濃度的VC,但差異不顯著(P>0.05)。

2.3 FG的PPO活力

圖3 多酚氧化酶活力Fig. 3 Polyphenol oxidase activity in the presence of VC or ginseng hairy root culture

如圖3所示,在PPO活力測定中VC與FG呈現相同趨勢,酶活力隨著質量濃度的增加逐步提高,呈現較好的量效關系。在5、10、20 mg/mL時FG活力均顯著低于同質量濃度VC(P<0.05),40、60、80、100 mg/mL時FG的PPO活力分別為2.19、3.36、4.66、5.16 U/g,低于同質量濃度VC,但差異不顯著(P>0.05)。

2.4 FG的總抗氧化能力

圖4 FG總抗氧化能力Fig. 4 Total antioxidant capacity of ginseng hairy root culture

參照總抗氧化能力試劑盒說明書建立FeSO4·7H2O標準曲線,線性回歸方程:y=3.169 8x-0.284 97,吸光度在0.13~0.55范圍內線性關系良好R2=0.997 2。如圖4所示,在發根的總抗氧化能力測定中,隨著質量濃度的增大抗氧化能力逐漸增加,除10 mg/mL與20 mg/mL總抗氧化能力差異不顯著外,其余各組間均差異顯著(P<0.05),當質量濃度升高到100 mg/mL時,FG的總抗氧化能力高達0.877 4 mmol FeSO4/g,顯著高于其他組(P<0.05)。

2.5 FG對黑色素瘤細胞A375凋亡的影響

圖5 FG對黑色素瘤細胞A375凋亡圖Fig. 5 Flow cytometric analysis of apoptosis in A375 cells exposed to ginseng hairy root culture

表2 FG對黑色素瘤細胞A375凋亡的影響Table 2 Effect of ginseng hairy root culture on apoptosis in A375 cells

由圖5、表2可知,不同質量濃度(200、400、600 μg/mL)的FG、RS、DK對A375細胞的增殖具有明顯的抑制作用,且隨藥物質量濃度的增加,細胞的抑制率明顯增加,呈劑量依賴性。200 μg/mL時FG組的早期凋亡率顯著高于RS組、DK組(P<0.05);400 μg/mL時FG組早期凋亡與DK組差異不顯著,晚期凋亡與RS差異不顯著(P>0.05);600 μg/mL FG組晚期凋亡率顯著高于RS組、DK組(P<0.05),RS組與DK組早期凋亡顯著高于FG(P<0.05)。

2.6 FG對A375細胞周期的影響

表3 FG對A375細胞周期的影響Table 3 Effect of ginseng hairy root culture on cell cycle in A375 cells

圖6 FG對A375細胞周期圖Fig. 6 Flow cytometric analysis of cell cycle in A375 cells

如表3、圖6所示,200 μg/mL時FG組、DK組與對照組相比G0/G1期細胞比例降低,G2/M期細胞比例增加,說明200 μg/mL時FG、DK可將細胞阻滯在G2/M期。400 μg/mL時與對照組相比,FG組S期細胞比例顯著增加,FG、RS、DK組G2/M期細胞比例顯著增加,說明400 μg/mL時FG可將細胞阻滯于S、G2/M期,RS、DK可將細胞阻滯于G2/M。600 μg/mL時FG、RS、DK組與對照組相比G0/G1期細胞比例顯著降低,S、G2/M期細胞比例顯著增加,S期DK細胞比例最高,G2/M期RS細胞比例最高,FG的S、G2/M期細胞比例為29.82%、28.70%,顯著高于對照組。說明600 μg/mL時FG、RS、DK可將A375細胞阻滯于S期、G2/M期,進而誘導細胞凋亡。

3 討 論

人體長期暴露在紫外光下,尤其是中波紫外線,會引起皮膚過敏、衰老、DNA損傷、光老化甚至癌變。黑色素瘤是一種侵襲性皮膚癌,傳統療法對其無效[18]。主要由紫外線輻射使皮膚層產生黑色素,黑色素在合成過程中產生的親氧化狀態使其易受到氧化應激,氧化應激水平升高導致細胞的生長、分裂失控,入侵臨近的機體組織而成癌[19]。氧化應激能誘導DNA、蛋白質、線粒體等細胞成分損傷并影響細胞內信號轉導途徑[20-21]。線粒體為細胞中水平最高的抗氧化劑,在維護細胞的氧化還原狀態中起著重要的作用[22]。研究報道黑色素瘤的發生都伴有抗氧化酶活性降低或其表達下調、氧化與抗氧化作用失衡[23-24]。抗氧化酶可保護細胞免受氧化應激損傷,抗氧化酶活性和表達的失調與黑色素瘤發生密切相關,是黑色素瘤發生發展的重要影響因素[25-26]。人參[27-28]、人參發根[29]抗氧化活性顯著。而關于FG的抗氧化能力未知,因此選用Cu2+、PPO、總抗氧化能力3 種方法對FG的抗氧化能力進行測定。由實驗結果可知隨著質量濃度的增大,FG的Cu2+螯合率逐漸接近VC,在100 mg/mL時FG的Cu2+螯合率達到66.5%與VC差異不顯著;FG與VC有相同的酶活力清除趨勢,大于40 mg/mL時兩者差異不顯著;FG的總抗氧化能力在100 mg/mL時達到0.877 4 mmol FeSO4/g。

研究發現,中草藥提取物產生抗腫瘤作用的主要機制是阻滯細胞周期、誘導細胞凋亡,在腫瘤細胞中細胞周期阻滯能夠抑制細胞增殖和誘導細胞凋亡[30]。主要抑制細胞周期蛋白、細胞周期蛋白依賴性蛋白激酶及其抑制因子等3大類與細胞周期有關的分子的表達對細胞進行調控,從而誘導細胞周期阻滯并抑制腫瘤細胞增殖[31]。主要表現為藥物作用于細胞干預DNA復制或者造成DNA損傷及有絲分裂所必需的蛋白質合成,細胞周期進程就會發生停滯,若不能及時進行修復,就會抑制細胞增殖,甚至誘導細胞產生凋亡[32]。與對照組相比,FG組、RS組、DK組均出現明顯的凋亡細胞,FG組較RS組、DK組晚期凋亡率高,這種作用可能是將皮膚癌細胞周期阻滯在S、G2/M期實現的。人參發根與人參具有相似的化學成分[33-34],可通過減少氧化損傷、阻滯細胞周期進程、誘導黑色素瘤細胞凋亡產生抗皮膚癌作用,其具體促凋亡機制有待進一步研究。綜上,人參發根具有抗氧化、抗黑色素瘤作用。本研究為人參發根產品開發提供了理論依據。

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