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PCR過程中生成引物二聚體回收再利用的研究

2018-10-24 03:53:52陳琪劉曉峰
江西醫(yī)藥 2018年8期

陳琪,劉曉峰

(江西省九江市第一人民醫(yī)院,九江 332000)

在聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng) (Polymerase Chain Reaction,PCR)過程中,引物的 3’端不依賴模版相互作用生成大量非特異性產(chǎn)物,尤其是引物二聚體[1]。有研究報道,在兩引物的3’端只要有一個堿基互補(bǔ)配對,30個循環(huán)即可生成引物二聚體[2]。許多實驗通過引物的優(yōu)化設(shè)計、控制反應(yīng)條件、熱啟動和酶的優(yōu)化等方法來減少引物二聚體的生成[3,4],但引物濃度較高時,這些方法不能減少引物二聚體的生成。因此,引物二聚體被認(rèn)為是PCR反應(yīng)過程中的必然產(chǎn)物,嚴(yán)重干擾實時熒光定量PCR、反轉(zhuǎn)錄酶-聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng) (reverse transcriptionpolymerase chain reaction,RT-PCR)等實驗結(jié)果[5-7]。然而引物二聚體是否具有一定的功能,縱觀國內(nèi)外文獻(xiàn)卻鮮有報道。本實驗組利用粉塵螨1類變應(yīng)原基因的重組質(zhì)粒pET28a(+)-ProDer f 1為模版,以ProDer f 1特異性引物形成的二聚體為引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,成功擴(kuò)增出ProDer f 1基因,驗證了回收的引物二聚體依然具有特異性引物的功能,現(xiàn)將詳細(xì)結(jié)果報告如下。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 質(zhì)粒、菌株和引物 含有粉塵螨1類變應(yīng)原基因的重組質(zhì)粒pET28a(+)-ProDer f 1和大腸埃希菌 (Escherichia colin,E.coli)DH5α 感受態(tài)細(xì)胞本實驗室自制并保持;根據(jù)GenBank公布的ProDer f 1(AB034946.1)基因序列設(shè)計特異性引物,ProDer f 1-F:TATGGATCCCGTCCAGCTTCAAT CAAAACT,ProDer f 1-R:GGCCTCGAGTCACATG ATTACAACATATGG,理論擴(kuò)增出目的基因為912bp。

1.1.2 主要試劑和儀器 SK2072即用PCR擴(kuò)增試劑盒 (Taq)、SanPrep柱式 DNA膠回收試劑盒、SanPrep柱式PCR產(chǎn)物純化試劑盒、250bp DNA Marker(SM0311)、50bp DNA Marker(BSM0371)均購自生工生物工程 (上海)有限公司;ABI2720型PCR儀、Beckman高速冷凍離心機(jī)、Bio-Rad水平電泳儀、SYNGENETM凝膠電泳成像分析系統(tǒng)。

1.2 方法

1.2.1 引物二聚體的生成與回收 生成引物二聚體PCR 體 系 (27μl):10 ×PCR Buffer 2.5μl,MgCl2(25mmol/L)2μl,dNTPs (2mmol/L)2.5μl,ProDer f 1正、 反向引物各 0.5μl,Taq DNA 聚合酶(5U/μl)0.5μl,ddH2O 18.5μl,蘸取含有 pET28a(+)-ProDer f 1的陽性菌落吹打混勻。反應(yīng)條件:94℃ 5min,94℃30sec、55℃ 30sec、72℃ 30sec,35 個 循 環(huán) ,72℃10min。PCR產(chǎn)物行 1%瓊脂糖凝膠電泳(90V,50min)并拍照。按SanPrep柱式DNA膠回收試劑盒說明書切膠回收引物二聚體。

1.2.2 以回收的二聚體為引物的PCR PCR體系(40μl):10×PCR Buffer 5μl,MgCl2(25mmol/L)2μl,dNTPs (2mmol/L)2.5μl, 回收的引物二聚體 10μl,Taq DNA 聚合酶(5U/μl)0.5μl,ddH2O 20μl,蘸取含有pET28a(+)-ProDer f 1的陽性菌落吹打混勻。反應(yīng)條件:94℃ 5min,94℃ 30sec、55℃ 30sec、72℃30sec,35個循環(huán),72℃ 10min。同樣反應(yīng)體系條件下以DH5α陰性菌為模板和未加引物二聚體的陽性菌做模板的PCR產(chǎn)物為陰性對照。PCR產(chǎn)物行1%瓊脂糖凝膠電泳 (90V,50min)并拍照。按SanPrep柱式PCR產(chǎn)物純化試劑盒純化PCR產(chǎn)物。

1.2.3 PCR產(chǎn)物的序列比對 ProDer f 1特異性引物PCR產(chǎn)物和二聚體為引物的PCR產(chǎn)物純化后進(jìn)行測序(由生工生物工程有限公司完成),并用DNAMAN軟件進(jìn)行序列比對分析。

2 結(jié)果

2.1 引物二聚體的生成與回收 ProDer f 1特異性引物的菌落PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳,目的基因在1000bp左右出現(xiàn)特意條帶,同時生成的引物二聚體(Primer Dimer,PD)也出現(xiàn)模糊條帶(圖1A)。切膠回收引物二聚體,回收產(chǎn)物在50bp~200bp之間出現(xiàn)模糊條帶(圖1B)。

2.2 以二聚體為引物的PCR 以二聚體為引物的菌落 (陽性)PCR產(chǎn)物和以ProDer f 1特異性引物的菌落PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳,兩者在相同位置出現(xiàn)特意條帶,且和ProDer f 1基因一致;而以二聚體為引物的陰性菌落PCR未出現(xiàn)特異條帶(圖 2)。

圖1 A:ProDer f 1特異性引物的菌落PCR過程中生成的引物二聚體

圖2 1:ProDer f 1 基因,2:ProDer f 1特異性引物的陽性菌落PCR產(chǎn)物,3:以二聚體為引物的陽性菌落PCR 產(chǎn)物,4:ProDer f 1特異性引物陰性菌落PCR產(chǎn)物,5:以二聚體為引物的陰性菌落PCR產(chǎn)物

2.3 序列比對ProDer f 1特異性引物PCR產(chǎn)物和二聚體為引物的PCR產(chǎn)物的序列經(jīng)DNAMAN軟件比對,同源性達(dá)98.68%,兩者同ProDer f 1基因比對,同源性達(dá)99.56%,但以二聚體為引物的PCR產(chǎn)物序列3’端的CGT和5’端的CAT 3個堿基缺失,具體原因有待進(jìn)一步研究。

3 討論

螨性變應(yīng)原是引起哮喘等過敏性疾病的主要變應(yīng)原[8-10],螨性變應(yīng)原基因一直以來是研究的熱點[11,12],而特異性引物是變應(yīng)原基因擴(kuò)增和鑒定的重要試劑,引物二聚體的生成不僅嚴(yán)重影響實驗的結(jié)果,也是對實驗試劑的浪費(fèi)。本實驗利用回收的二聚體為引物,對目的基因進(jìn)行PCR擴(kuò)增,成功擴(kuò)增出目的基因,并通過序列比對證明其PCR產(chǎn)物與特異性引物的PCR產(chǎn)物同源性高達(dá)98.68%。分析其原因可能為:⑴引物二聚體是PCR過程中形成的非特異性產(chǎn)物,大小不一(多為50-250bp),其中可能含有特異性引物的序列片段;⑵引物二聚體解鏈溫度要低于目的基因[13],部分二聚體解鏈后發(fā)揮引物作用。同時我們也看到,以二聚體為引物PCR產(chǎn)物的條帶較特異性引物PCR產(chǎn)物的條帶暗,且較傾向于生成較多的引物二聚體;由此推論,引物二聚體可能具有正反饋作用,以鏈?zhǔn)叫?yīng)促進(jìn)更多二聚體的生成。

引物二聚體的形成干擾實驗結(jié)果的報道很多,但其也具有一定的功能效應(yīng)。吳崇軍[14]等利用引物二聚體形成的原理,建立了一種新的克隆目的基因的方法;本實驗以回收的二聚體為引物,PCR擴(kuò)增出目的基因,且和特異性引物的PCR產(chǎn)物具有高度的同源性,證明其具有引物功能。因此,我們可以認(rèn)為,引物二聚體既可以作為目的基因擴(kuò)增的模版,同時還具有特異性引物的功能。

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