一種西瓜葉片DNA快速提取方法

周賢達 孫輝 丁康芬 王鳳辰 王浩波

摘 要： 為了解決田間西瓜葉片提取DNA雜質較多及逐個樣品提取效率低的問題，建立了基于96孔PCR擴增板，每次提取96個樣，并調整提取液改善西瓜葉片DNA質量優化的方法，經超微量分光光度計檢測，提取的DNA濃度為287～573 ng·?L-1，OD260/OD280在1.96左右，OD260/OD230為1.6～1.9，表明蛋白質、酚類及小分子雜質很少，DNA質量較高；普通引物聚丙烯凝膠電泳檢測表明DNA質量穩定、擴增條帶清晰。此方法與目前常用的植物基因組DNA提取方法相比具有通量高、速度快、成本低的優點，是適宜于種子企業西瓜分子標記檢測相關工作的較好方法。

關鍵詞： 西瓜； DNA提取； PCR

Abstract： In order to solve the problem of extracting more DNA impurities and low efficiency of single sample extraction in field watermelon leaves， a method based on 96-well PCR amplification plate to extract 96 samples at a time was established and the extract was adjusted to improve the DNA quality of watermelon leaves in this study. The concentration of DNA that extracted by spectrophotometer was 287-573 ng·μL-1， OD260/OD280 was around 1.96， and OD260/OD230 was 1.6-1.9， which indicated that there were few impurities in protein， phenols and small molecules， and the DNA quality was high. Polyacrylamide gel electrophoresis detection of common primers showed that the quality was stable and the amplified bands were clear. Compared with the commonly used plant genomic DNA extraction methods， this method had the advantages of high flux， high speed and low cost， it was a better method which was suitable for seed acid related molecular markers in seed enterprises.

Key words： Watermelon； DNA extraction； PCR

使用分子標記手段可以大幅減輕田間育種和質量檢測的工作強度，提高工作效率。隨著種子產業和分子生物學的不斷發展，SSR等分子標記手段已越來越普遍地應用于種子室內純度測定、品種真實性鑒定和分子標記輔助育種等環節中[1-2]。SSR分子檢測的前提是高效提取符合質量要求的DNA，而不同來源的材料對提取的DNA質量有一定影響。正常的室內純度檢測所需DNA一般取材于發芽后的下胚軸或芽尖，DNA質量較高，但提取通量低、速度慢[3-6]。如果是對田間種植的西瓜品種進行純度鑒定抽檢，則只能用葉片提取；當開展分子標記輔助育種時，要保證有標記的單株正常在田間生長，由于室內發芽提取DNA損壞了單株，顯然不適合采用該方法，也需要以田間生長的葉片作為提取DNA的材料，而西瓜葉片提取的DNA往往含有大量的酚類物質等雜質[5-7]，達不到后續試驗的質量要求。另外，在實際商業化應用中，逐個樣品提取DNA也不適應規模化應用分子標記檢測。筆者的研究目的是在不影響DNA提取質量的前提下，盡可能將DNA提取過程與后期PCR擴增使用的96孔板配套起來，以提高工作效率；這種基于96孔PCR板的西瓜葉片DNA快速提取方法，在條件允許下也可以與移液工作站相配套，進一步提高自動化程度。

1 材料與方法

1.1 供試材料

試驗于2018年7月19日從安徽省長豐縣合肥豐樂種業西瓜試驗基地的‘黑優美西瓜品種上取樣，取樣標準為西瓜蔓頭部生長2～3 d的幼嫩葉片，共采集96個單株。樣品使用1.5 mL離心管保存，取樣后當天常溫下送至合肥豐樂種業國家企業技術中心分子實驗室，-20 ℃冰箱保存。

1.2 DNA提取

1.2.1 快速提取西瓜葉片DNA步驟 ①每片葉片取約0.5 cm×0.5 cm組織，按順序放入96孔板中，每片葉片放1孔；②將裝有葉片的96孔板底部浸泡在裝有液氮的泡沫盒中2 min，期間使用3 mm十字螺絲將葉片研磨成干粉；③每樣品孔加入提取液100 ?L（0.1 mol·L-1 Tris-HCL，pH 8.0；1.4 mol·L-1 NaCl；20 mmol·L-1 EDTA；2.5%（φ） SDS；1.5%（φ） PVP），迅速混勻，65 ℃水浴20 min，期間每10 min劇烈震蕩1次；④每孔加入苯酚︰氯仿︰異戊醇為25︰24︰1的混合液100 ?L，顛倒混勻至液體顏色變成均勻綠色，5 000 r·min-1離心6 min；⑤將上清液轉移至新96孔板，每孔加入冰凍無水乙醇100 ?L，輕輕倒置混勻，-20 ℃靜置10 min；5 000 r·min-1離心2 min，棄上清液；⑥用70%乙醇洗滌2次，室溫下倒置，干燥沉淀；加入50 ?L TE溶解沉淀，5 000 r·min-1離心3 min，取上清液，4 ℃保存備用[6-15]。

1.2.2 CTAB法西瓜葉片DNA提取步驟 參考《精編分子生物學實驗指南》中提供的方法[3]。

1.3 DNA濃度及純度測定

使用Nano Drop 2000C（ThermoFisherScientific Inc.）測定OD230、OD260、OD280及DNA濃度。

1.4 SSR分子標記檢測

1.4.1 供試SSR引物 選用《西瓜品種鑒定技術規程SSR分子標記法》（NY/T 2472—2013）[16]中推薦的BVWS01734、BVWS00358兩對引物，由安徽通用生物技術公司合成。

1.4.2 SSR擴增 參照周賢達等[12]的反應體系，具體如下：10×PCR Buffer（含Mg2+）1 μL；2 mmol·μL-1 dNTP 0.9 μL；5 U·μL-1 Taq DNA聚合酶 0.1 μL；10 μmol·μL-1正向引物0.25 μL；10 μmol·μL-1負向引物0.25 μL；20 ng·μL-1模板DNA 2 μL；用ddH2O補齊至總體積10 μL。反應程序：94 ℃預變性4 min；94 ℃變性15 sec，55 ℃退火15 sec，72 ℃延伸30 sec，35個循環；72 ℃延伸5 min；4 ℃保溫。

1.4.3 PCR擴增產物檢測 使用4%變性聚丙烯酰胺凝膠電泳檢測擴增產物：每10 μL PCR反應產物加入2 μL 1×溴酚藍上樣緩沖液，穩壓100 W電泳20 min，電泳結束后用硝酸銀染色觀察電泳條帶，拍照并記錄結果。

2 結果與分析

2.1 DNA提取時間比較

由DNA提取時間來看，使用西瓜葉片DNA快速提取法完成96個西瓜葉片的DNA提取每人共用時4 h，而使用CTAB法完成相同規模DNA提取則每人需要20 h [6]。

2.2 DNA質量檢測

從表1可以看到，西瓜葉片DNA快速提取法提取的DNA濃度在287～573 ng·?L-1，相比CTAB法提取的DNA濃度是明顯低一些；OD260/OD280值在1.96左右，與CTAB的值2.0左右接近，說明提取的DNA中的RNA含量小，基本沒有蛋白質和酚污染；OD260/OD230值約1.6～1.9，與CTAB法提取的比值1.8～2.0也接近，說明小分子污染很輕，不會對后續PCR擴增產生不利影響；DNA產率在7.18～14.34 ng·mg-1，雖然明顯低于CTAB法的產率，但完全可以滿足室內西瓜種子測純及后續分子試驗的要求。

2.3 SSR擴增檢測

從圖1和圖2對比可以發現，全部48個單株的帶型在2種DNA提取方法擴增的BVWS01734引物擴增的帶型除無擴增單株外完全一致，西瓜葉片DNA快速提取法擴增的結果相比CTAB法提取的條帶亮度稍顯暗淡，但主要帶型表現無差異。圖3和圖4對比可以發現，全部48個單株在BVWS00358引物擴增帶型完全一致，2者條帶亮度也無明顯區別。

在與CTAB法提取的西瓜全基因組DNA擴增結果的比較中可以發現，2種方法之間在擴增片段大小和非特異性擴增上無區別，西瓜葉片DNA快速提取法完全可以滿足田間采集的西瓜葉片進行常規PCR擴增的需求。

3 討 論

針對田間采集的西瓜葉片中酚類物質極高，在葉片轉運、保存過程中易由于細胞破裂導致酚類物質污染，進而導致后期DNA褐化而抑制PCR擴增的情況，筆者使用PVP-40結合酚類物質，后期經離心去除；試驗結果表明，該方法提取的西瓜基因組DNA質量與濃度均較高，可以滿足后續試驗要求，且與CTAB法相比，因為PVP-40的加入，可以有效避免西瓜葉片在采集、轉運過程中因機械力作用導致細胞破碎進而產生的酚類物質污染問題，明顯提高成熟西瓜葉片的DNA提取質量[6-7，14]。

筆者充分利用96孔PCR板的通量高、普及化程度高的特點，將DNA提取與后續PCR擴增步驟同步對應，相較傳統方法可以節省3/4的時間，從而大大提高了整體檢測效率；而且由于整體過程在標準96孔PCR擴增板內進行，也方便后期通過綜合運用96孔組織勻漿機、自動移液工作站繼續提高效率、擴大規模，從而滿足種業公司西瓜室內大規模檢測工作的要求。

從電泳圖中可以看到，使用西瓜葉片DNA快速提取方法提取的西瓜全基因組DNA擴增產物還是存在擴增量較低的情況（圖1），在特殊情況下會出現擴增失敗的情況，如圖1中的6號、8號10號及23號單株，這種情況的出現一方面與西瓜品種本身有一定關系，另一方面也與引物的擴增能力有關，需要進一步探討、研究。

在試驗進行過程中發現，提取時樣品研磨時間對提取效果有較大影響，操作人員的熟練程度直接決定了樣品研磨時間，并最終對提取質量和DNA產率產生影響，因此熟練操作至關重要。

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