家蠶熱休克蛋白HSP60相互作用蛋白篩選與鑒定

董戰旗，蔣亞明，潘敏慧,2

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家蠶熱休克蛋白HSP60相互作用蛋白篩選與鑒定

董戰旗1，蔣亞明1，潘敏慧1,2

（1西南大學家蠶基因組生物學國家重點實驗室，重慶 400716；2西南大學農業部蠶桑生物學與遺傳育種重點實驗室，重慶 400716）

【目的】HSP60是熱休克蛋白中重要的一員，在昆蟲先天性免疫過程中起重要作用，同時也是昆蟲生長發育的必要因子。前期研究證明家蠶BmHSP60參與家蠶核型多角體病毒（nucleopolyhedrovirus，BmNPV）入侵細胞過程，本研究通過鑒定BmHSP60相互作用蛋白，為其在家蠶先天性免疫中作用機制研究打下基礎?！痉椒ā坷妹庖吖渤恋砗豌y聯-質譜分析技術（LC-MS/MS），首先構建BmHSP60過表達載體并融合Flag標簽，轉染到家蠶細胞中48 h后，收集蛋白，進行免疫共沉淀，用Flag抗體孵育磁珠調取相互作用蛋白，銀染處理后，能夠檢測到明顯的差異條帶，把差異條帶切膠保存在-80℃，然后質譜分析差異條帶的多肽；根據質譜結果和差異條帶的大小與NCBI數據庫進行比對，篩選到候選相互作用蛋白。最后，構建候選相互作用蛋白的克隆載體并融合HA標簽，分別和BmHSP60表達載體共轉到家蠶細胞，免疫共沉淀和熒光共定位驗證BmHSP60和候選蛋白之間的相互作用。并通過Mito-Tracker-Green分析BmHSP60候選相互作用蛋白與線粒體的共定位?！窘Y果】免疫共沉淀銀染結果顯示BmHSP60相互作用蛋白在110、90、75、60和35 kD附近有5條明顯的差異條帶，將這5條條帶混成蛋白池進行質譜分析，通過銀聯-質譜分析結果和家蠶基因組數據庫以及NCBI數據庫進行比對分析共鑒定到32個差異蛋白，根據多肽數量和蛋白分子量的大小共篩選到5個相互作用候選蛋白與銀染結果差異條帶一致，分別為ADP/ATP translocase(ANT)、Actin、Alpha-tubulin、Elongation factor 1-alpha(EF1)和HSP90。構建BmHSP60候選相互作用蛋白克隆表達載體并融合HA標簽，與BmHSP60共同轉染到家蠶細胞，免疫共沉淀immunoprecipitated（IP）用-Flag抗體孵育，immunoblotting（IB）再用-Flag抗體孵育，均能夠檢測到BmHSP60表達。而IB用-HA抗體孵育顯示只有BmANT和BmHSP90能夠檢測到相應的條帶，而Alpha-tubulin和EF1與BmHSP60沒有檢測到相應的條帶，說明只有BmANT和BmHSP90與BmHSP60具有直接的相互作用，而Alpha-tubulin和EF1與BmHSP60沒有相互作用。通過熒光共定位進一步分析表明BmANT和BmHSP90能夠與BmHSP60共定位在細胞質中。線粒體標記物Mito-Tracker-Green共定位結果顯示BmHSP60、BmANT和BmHSP90均能夠與線粒體共定位到一起。【結論】鑒定到家蠶熱休克蛋白BmHSP60能夠與BmANT和BmHSP90相互作用，并共定位于線粒體，可用于研究BmHSP60在家蠶抗病毒免疫中的作用機制。

家蠶；BmHSP60; 相互作用蛋白；免疫共沉淀；BmANT1；BmHSP90

0 引言

【研究意義】熱休克蛋白（heat shock protein，HSP）最早在果蠅（）中被發現[1]。生物體不僅在熱激條件下能夠產生熱休克反應，在受到其他物理、化學或生物刺激下，也能夠發生相關應答，提高熱休克蛋白的表達[2]。熱休克蛋白可幫助蛋白質正確折疊、在各種應激條件下調節蛋白質穩態，因此在保護細胞免受氧化壓力、極端溫度和凋亡損傷中發揮重要作用，在組織中也可消除由疾病引起的損傷[1]。熱休克蛋白廣泛存在于各種生物中，根據分子大小，可分為Hsp110（HspH）、Hsp90（HspC）、Hsp70（HspA）、Hsp40（DNAJ）和小分子熱休克蛋白（HspB）以及伴侶家族HspD/E（Hsp60/Hsp10）[3]。Hsp60是熱休克家族重要成員，廣泛參與先天性免疫和細胞凋亡過程，前期研究證明BmHSP60作為線粒體蛋白在家蠶核型多角體病毒（nucleopolyhedrovirus，BmNPV）侵染過程中為病毒提供能量促進病毒增殖復制，但BmHSP60在家蠶個體發育及BmNPV入侵過程中具體的作用機制仍然未知[4]。因此，鑒定BmHSP60相互作用蛋白對解析其在先天性免疫中的功能以及病毒和宿主相互作用機制解析具有重要意義。【前人研究進展】HSP60功能強大，參與宿主很多途徑，并參與病原入侵的過程。人乙肝病毒（，HBV）聚合酶已被證明能夠與HSP60發生相互作用，利用了HSP60分子伴侶的功能，確保聚合酶折疊成活化形態，ATP也輔助參與了這個過程，抑制HSP60表達能夠有效抑制HBV的復制。在此前的研究中，HBV轉錄反式激活蛋白也被證明能夠與線粒體HSP60形成一個復合物，促進病毒的感染[5]。同時，在對人乳頭瘤病毒（，HPV）引起的宮頸癌的治療中，DNA疫苗編碼的HSP60能夠與HPV16的E6和E7抗原結合，并將其呈遞到特異型的CD8+ T細胞，免疫效果比單純的抗原呈遞明顯，促進了體液免疫[6]。除了直接與病毒蛋白質發生相互作用，HSP60也能夠直接與病毒的基因組發生相互作用，在小鼠肝炎病毒（，MHV）侵染過程中，HSP60連同HSP70、HSP40共同作用，與MHV的RNA 3′末端42個核苷酸結合，形成RNA-蛋白質復合結構，該結構被認為與RNA病毒的復制相關[7]。此外，病毒也能夠利用HSP60所在的通路，如人丙肝病毒（，HCV）核心蛋白能夠與HSP60相互作用，提高了細胞活性氧含量，使之對腫瘤壞死因子-（tumor necrosis factor-，TNF-）變得更加敏感，反之，過表達HSP60能夠在一定程度恢復細胞對TNF-的耐受力[8]。熱休克蛋白HSP60廣泛存在于各種昆蟲中，在昆蟲各個時期、各種組織中均有表達[1]。HSP60與昆蟲個體發育息息相關，伴隨著組織的分解與再生，對保持蛋白質的正確折疊和維持細胞蛋白質穩態非常重要[2]。西方蜜蜂（）在社會化發展過程中，蜂王幼蟲中HSP60表達高于工蜂幼蟲，從而造成蜂王和工蜂的卵巢發育程度不同[9]；在果蠅中，HSP60參與了Caspase介導的細胞凋亡，作為果蠅細胞線粒體抗氧化、抗衰老以及重建蛋白質平衡的標志，為昆蟲適應極端環境提供了一定的分子基礎[10]。【本研究切入點】筆者課題組前期研究已經證明桿狀病毒晚期表達因子11（late expression factor 11，LEF-11）蛋白能夠劫持宿主ATPase家族BmATAD3A和伴侶蛋白BmHSP60促進病毒增殖復制，干涉BmHSP60后能夠顯著抑制病毒增殖復制[4]。但是BmHSP60促進病毒增殖復制的調控機制仍然未知?！緮M解決的關鍵問題】通過篩選和鑒定BmHSP60具有直接相互作用的蛋白，找到與BmHSP60在病毒感染過程中相互作用蛋白，為其在家蠶先天性免疫中作用機制研究打下基礎，為家蠶抗病育種研究提供靶標基因。

1 材料與方法

試驗于2015—2017在西南大學家蠶基因組生物學國家重點實驗室完成。

1.1 細胞和培養基

家蠶胚胎細胞系BmN-SWU1細胞和BmNPV病毒為西南大學家蠶基因組生物學國家重點實驗室保存，BmN-SWU1細胞用含10%（V/V）胎牛血清TC-100培養基，在27℃條件下恒溫培養[11-12]。

1.2 質粒構建

以pIZ/V5-His為空載，通過PCR獲得家蠶、和開放閱讀框（open reading frame，ORF），分別通過酶切、連接構建不同的帶有Flag和HA標簽的質粒。所有構建質粒都經測序分析，所用引物見表1。

1.3 免疫共沉淀

當細胞鋪滿80%左右時，按照4 μg質粒，12 μL轉染試劑，在離心管中輕柔逐滴混勻50次左右，靜止30 min，然后滴加到細胞瓶中。轉染48 h，添加BmNPV 48 h后，用PBS輕輕潤洗兩次，在細胞瓶中加入1 mL含有PMSF的Western及IP細胞裂解液，冰上裂解30 min。取兩只滅菌的1.5 mL離心管，分別加入50 μL DynabeadsTMProtein A磁珠，安置在磁力架上，棄去液體，加入少許PBS混勻清洗，重復一次，然后加入200 μL PBS，一只加入3 μL Flag標簽抗體，另外一只加入等量的小鼠IgG，做好標記，并安裝在翻轉儀上，在4℃環境中，與磁珠孵育1 h。將抗體孵育完成的磁珠安裝在磁力架上，棄去液體，同時將細胞裂解產物取100 μL作為Input樣品，放在冰上，剩下產物各取450 μL，分裝到兩管，與磁珠輕柔混勻后，放置在翻轉儀上，4℃環境中孵育1 h。將與磁珠孵育完成的樣品從翻轉儀上取下，安裝在磁力架上，棄去液體后，加入300 μL左右PBS，輕輕混勻，清洗磁珠，并在磁力架上分離液體與磁珠，棄去液體，如此重復兩次，最后棄去洗液。然后每只離心管加入60 μL含有PMSF的Western及IP細胞裂解液，再加入15 μL的5×SDS-PAGE蛋白上樣緩沖液，最后將樣品沸水浴10 min。將沸水浴后的樣品安裝在磁力架上，分離液體和磁珠，將液體轉移至新的離心管中，做好標記，和Input樣品一同保存在-20℃。

表1 本試驗所用引物

粗體代表酶切位點，下劃線代表融合標簽The restriction enzyme sites are marked in bold, the underline represents the fusion tag

1.4 Western blot

制備12%的SDS-PAGE膠，將蛋白樣品輕輕加入到點樣孔中，同時點好相應的蛋白Marker，開始時濃縮蛋白用7 mA/塊膠，待到蛋白完全通過濃縮膠后，將電流提高到15 mA/塊，保持電流穩定電泳3 h左右，待藍色染料剛好跑出即可停止電泳[13-14]。電泳完成后，把濃縮膠及以上部分切掉，并將分離膠從玻璃板上剝下，放置在事先加入dH2O的玻璃皿中輕搖，清洗一次。倒掉洗液，向玻璃皿中加入適量銀染固定液，使其能夠浸沒膠塊，在搖床上慢速輕搖1 h。倒掉固定液，向玻璃皿中加入適量銀染清洗液，脫色搖床上輕搖1 h。倒掉清洗液，避光條件下，向玻璃皿中加入適量銀染致敏液，增感2 min，然后倒掉致敏液，再向里面加入適量dH2O，潤洗20 s后倒掉，重復dH2O清洗3次。避光條件下，向玻璃皿中加入適量銀染染色液，在水平搖床上輕搖30 min，然后倒掉染色液，如上方法，用dH2O潤洗20 s，重復3次。清洗完成后，向玻璃皿中倒入適量銀染顯色液，時刻觀察膠塊上條帶染色情況，若染色完成，立即將膠塊轉移至裝有適量銀染終止液的玻璃皿中，終止顯色反應。將顯色完成后的膠塊平放在掃描儀上，輕輕趕走產生的氣泡，根據軟件提示，掃面膠塊并保存結果。根據差異條帶位置，用甲醛消毒過的刀切掉差異條帶，-80℃保存。

1.5 質譜分析

通過硝酸銀染色獲取的凝膠樣品管中加入200—400 μL脫色液（30% ACN/100 mmol·L-1NH4HCO3），清洗脫色至透明，吸棄上清，凍干；加入100 mmol·L-1DTT，56℃孵育30 min；吸棄上清，加入200 mmol·L-1IAA，暗處孵育20 min。吸棄上清，加入100 mmol·L-1NH4HCO3，室溫孵育15 min。吸棄上清，加入100% ACN，5 min后吸棄凍干，加入2.5—10 ng·μL-1Trypsin溶液，在37℃條件下反應20 h左右。轉移酶解原液至新的EP管中，之后凝膠中加入100 μL抽提液（60% ACN/0.1% TFA），超聲15 min后將提取液與酶解原液合并，凍干后取出。加入0.1% FA水溶液60 μL進行復溶，再用0.22 μm過濾管過濾后待用。色譜柱以95%的0.1%甲酸的水溶液平衡后，樣品由自動進樣器上樣至Trap柱。色譜梯度：0—50 min，0.1%甲酸的乙腈水溶液（乙腈為84%）線性梯度從4%—50%；50—54 min，0.1%甲酸的乙腈水溶液線性梯度從50%—100%；54—60 min，0.1%甲酸的乙腈水溶液維持在100%。多肽和多肽碎片的質量電荷比按照下列方法采集：每次全掃描（full scan）后采集10個碎片圖譜（MS2 scan）。質譜測試原始文件（raw file）用Mascot2.2軟件檢索相應的數據庫，最后得到鑒定的蛋白質結果。

1.6 免疫熒光

按照1.3所述方法轉染48 h后，用1×PBST輕洗細胞3次，每次5 min。加入4%的多聚甲醛溶液，室溫固定15 min，1×PBST同上輕洗。然后加入300 μL 1% Triton X-100，室溫打孔15 min。PBS清洗兩次后，加入500 μL封閉液，于37℃培養箱中封閉1 h。吸去封閉液，每孔加入配好的1﹕200的Flag/HA一抗，37℃孵育1 h?；厥找豢梗靠准尤脒m量PBS，在水平搖床上輕搖清洗，5 min更換一次PBS，重復6次。根據一抗來源，向孔里加入500 μL 1﹕500稀釋的熒光標記二抗，37℃孵育1 h。向孔中加入100 μL DAPI染色液或者1﹕500稀釋的 Mito-Tracker Green，37℃孵育15 min。吸取染色液，重復清洗步驟。用帶鉤的針頭挑出扒片，將細胞一面平鋪到滴有甘油的載玻片上，用指甲油封片。用熒光共聚焦顯微鏡進行觀察。

2 結果

2.1 免疫共沉淀釣取BmHSP60相互作用候選蛋白

將新提取的pIZ-BmHSP60Flag質粒轉染到生長狀態良好的細胞中，轉染后加入BmNPV 48 h后收取蛋白。根據免疫共沉淀收方法用Flag抗體孵育蛋白細胞提取液，然后進行蛋白質電泳和銀染。生物學重復兩次，選取兩次試驗同時具有差異的條帶，分別在110、90、75、60和35 kD位置處選取5個差異條帶進行切膠，命名為差異條帶A、B、C、D和E（圖1）。把各差異條帶混在一起-80℃保存，以備質譜分析。

2.2 LC-MS/MS分析BmHSP60候選相互作用蛋白

為了篩選不同分子量的BmHSP60相互作用蛋白，將兩次重復同時具有差異條帶的5條特異條帶混為蛋白池，進行LC-MS/MS質譜分析，將質譜分析多肽與家蠶數據庫以及NCBI數據庫進行比對。根據候選相互作用蛋白相對分子質量大小和多肽的數量進行排序，共找到5個潛在的相互作用蛋白，分別為ADP/ATP translocase （ANT）、Actin、Alpha-tubulin、Elongation factor 1-alpha（EF1）和HSP90，命名為BmANT1、BmActin、BmTubulin、BmEF-1和BmHSP90（表2）。

2.3 免疫共沉淀驗證BmHSP60相互作用蛋白

克隆BmHSP60相互作用候選蛋白基因，構建到含有HA標簽的pIZ/V5-His載體上，與pIZ-BmHSP60Flag共同轉染到家蠶細胞，48 h后收取蛋白。因為Actin可能為細胞骨架蛋白，在多次免疫共沉淀中均有發現，因此暫不考慮。免疫共沉淀結果顯示immunoprecipitated（IP）用-Flag抗體孵育，immunoblotting（IB）再用-Flag抗體孵育，均能夠檢測到BmHSP60表達，說明免疫共沉淀試驗操作成功。如果IB用HA抗體進行孵育，均不能測到BmTubulin、BmEF-1，但是能夠檢測到BmHSP90、BmANT1（圖2）。上述結果說明BmHSP60不與BmTubulin、BmEF-1結合，但可與BmHSP90、BmANT1結合。

2.4 熒光共定位驗證BmHSP60相互作用蛋白

為了進一步探究BmHsp60及其相互作用蛋白BmHsp90、BmANT1在細胞中共定位情況，共轉后通過免疫熒光步驟進行處理，熒光共定位結果顯示，過表達BmANT1、BmHSP90 與BmHSP60在細胞中能夠完全重疊，綠色代表HA標簽，紅色代表Flag標簽，藍色DAPI代表細胞核，共定位顯示紅色幾乎和綠色完全重合，并且全部分布在細胞質中（圖3），進一步說明它們之間可能存在相互作用。

A：通過Western blot分析BmHSP60相互作用蛋白表達The expression of candidate interaction proteins of BmHsp60 by Western blot；B—E：通過Western blot分析BmHSP60相互作用蛋白。BmN-SWU1細胞共同轉染BmHSP60和BmTubulin、BmEF-1α、BmHSP90、BmANT1。轉染96 h后，收集細胞用Flag抗體共沉淀蛋白，靶蛋白用HA抗體檢測。每個相互作用頂部表示免疫沉淀所用抗體，右側標記顯示Western blot分析所用抗體Co-immunoprecipitation of BmHSP60 examined by Western blot. BmN-SWU1 cells are co-transfected with BmHSP60 and candidate BmTubulin, BmEF-1α, BmHSP90, BmANT1 protein. At 96 hours after transfection, cells are lysed and immunoprecipitation performed with α-FLAG, and use α-HA to detect the bound of target protein. The label on the top of each panel shows the antibodies used for immunoprecipitation. The label on the right of each panel shows the antibodies used for analysis of Western blot

2.5 線粒體共定位分析

為了探究BmHSP60及其相互作用蛋白BmANT1和BmHSP90亞細胞定位情況，分別轉染后，通過免疫熒光步驟進行處理，同時對線粒體用Mito-Tracker- Green染成綠色，目的蛋白染成紅色，熒光結果顯示，過表達BmHSP60、BmANT1細胞中，紅色幾乎和綠色共定位在一起；過表達BmHSP90中，紅色與綠色大部分共定位在一起，說明而BmHSP60、BmANT1參與線粒體代謝過程，BmHSP90也與線粒體代謝相關（圖4）。

3 討論

本研究采用免疫共沉淀和熒光共定位技術，篩選了BmHSP60在BmNPV感染過程中的相互作用候選蛋白，并驗證了BmHSP60與BmHSP90和BmANT1具有相互作用，這為后期研究BmHSP60在家蠶個體發育中的功能及其在BmNPV增殖復制中作用機制提供了基礎數據。

以BmHSP60為誘餌蛋白釣取的相互作用蛋白中，BmHSP90和BmANT1均為機體的管家蛋白，HSP90作為另一類熱休克蛋白，同其他熱激蛋白家族一樣，與病毒有著復雜的關系[15-16]。HSP90既能通過信號轉導途徑影響病毒的復制增殖，也能直接作用于病毒的蛋白[17-18]。研究表明，HSP90通過抑制牛痘病毒核心蛋白4a的活性抑制其復制，HSP90通過結合流感病毒PB2蛋白調節病毒聚合酶的活性促進其復制[19-20]。HSP90也能夠幫助流感病毒DNA聚合酶的組裝，并且能協助其入核[19,21]。目前報道與HSP90相關的病毒涉及雙鏈DNA病毒、單鏈DNA病毒、RNA病毒等，對于不同的病毒HSP90所起作用也不盡相同，有促進病毒增殖的作用，也有起免疫作用的[17]。先前已被報道與HSP60能夠一起作為分子伴侶形成一個大的復合物，抑制細胞線粒體凋亡[22]，因此它們可能在病毒入侵時通過抑制宿主細胞凋亡，進而共同調控BmNPV入侵。筆者課題組前期研究也同樣證明LEF-11能夠劫持宿主ATPase家族BmATAD3A和BmHSP60促進自身增殖復制，這些結果都暗示BmHSP60在家蠶抗病毒免疫的熱休克反應和線粒體代謝過程具有一定的作用[23]。

在BmN-SWU1細胞中轉染BmHSP60和BmHSP90、BmANT1 48 h后，用Alexa 555標記抗Flag，FITC標記抗HA和Hoechst33258染色。紅色熒光表示Flag，綠色熒光表示HA，藍色熒光表示細胞核。比例尺Scale bar：5 μm

在BmN-SWU1細胞中轉染BmHSP60、BmANT1和BmHSP90 48 h后，用Alexa 555標記，線粒體示蹤和Hoechst33258染色。紅色熒光表示BmHSP60、BmANT1和BmHSP90，綠色熒光表示Mito-Tracker，藍色熒光表示細胞核。比例尺Scale bar：5 μm

包括家蠶在內的很多昆蟲都具有兩個ANT同源基因，分別命名為ANT1和ANT2，ANT1在各組織中均有高量表達，而ANT2只特異地在精巢中表達，與生殖細胞的形成有關[24]。已有報道宿主的ANT1能夠和病原的相關蛋白發生相互作用。豬繁殖與綜合呼吸征病毒包膜蛋白E、對蝦白斑綜合癥病毒VP12以及人類免疫缺陷病毒Vpr均能和宿主ANT1相互作用，控制線粒體膜通透性[25-26]。此外，研究表明病毒的RNA也能干涉宿主ANT基因，人類巨細胞病毒miR-UL36-5P與ANT-3的mRNA作用，下調ANT-3的表達從而抑制凋亡[27]。BmNPV IE-2相互作用蛋白鑒定中，同樣發現IE-2相互作用候選蛋白包括ANT1，為ANT1參與BmNPV復制進一步提供了依據[28]，因此，筆者推測BmANT1也很有可能與病毒蛋白直接相互作用調控病毒增殖復制。不同昆蟲的ANT1存在相似的結構，即含有3個線粒體跨膜結構域，錨定在線粒體內膜中，與電壓依賴性陰離子通道（voltage- dependent anion channel，VDAC）一同構成了線粒體膜孔復合物，參與調節線粒體內膜通透性，電化學平衡和氧化磷酸化鏈，甚至參與細胞凋亡途徑[28]，因此根據它們定位于線粒體，可以推測家蠶BmHSP60和BmANT1在BmNPV誘導線粒體凋亡信號通路中具有非常關鍵的作用，從而促進病毒增殖復制。

BmHSP90和BmANT1蛋白均能夠定位在線粒體上，這與BmHSP60在線粒體中的功能相吻合[29]。下一步將集中于研究BmHSP90和BmANT1蛋白如何影響病毒增復制以及與病毒直接的調控關系，為BmNPV劫持宿主能量代謝提供更深入的研究，完善病毒和宿主相互博弈網絡。

4 結論

通過免疫共沉淀和細胞共定位鑒定出BmHSP60相互作用蛋白為BmHSP90和BmANT1，這兩個蛋白與BmHSP60共定位在細胞線粒體，為研究BmHSP60在家蠶抗病毒免疫中的作用機制打下了基礎。

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Screening and identification of candidate proteins interacting with BmHSP60 in the silkworm ()

DONG ZhanQi1, JIANG YaMing1, PAN MinHui1,2

(1State Key Laboratory of Silkworm Genome Biology, Southwest University, Chongqing 400716;2Key Laboratory for Sericulture Functional Genomics and Biotechnology of Ministry of Agriculture, Southwest University, Chongqing 400716)

【Objective】HSP60 is an important member of heat shock proteins, which plays an important role in the innate immunity of insects, and is also an essential factor for insect growth and development. Previous studies have proved that BmHSP60 is involved in the invasion process ofnucleopolyhedrovirus (BmNPV). The objective of this study is to identify the interaction proteins of BmHSP60, and to provide a basis for further exploring the mechanism in the innate immunity of.【Method】 BmHSP60 overexpression vector was constructed and fused with the Flag tag for co-immunoprecipitation and silver-linked-mass spectrometry (LC-MS/MS). After transfected into thecells for 48 h, the cell lysates was collected for co-immunoprecipitation. The antibody was incubated with the magnetic beads to capture the interaction proteins. After silver staining, the distinct bands could be detected. The differential strips were stored at -80℃, and then the differentially expressed peptides were analyzed by mass spectrometry. The size of the bands was aligned with the NCBI database to screen for candidate interaction proteins according to the mass spectrometry results. Finally, the cloning vector of candidate interaction proteins was constructed and fused with HA tag, and transferred intocells with BmHSP60, respectively. Co-immunoprecipitation and fluorescence co-localization confirmed the interaction between BmHSP60 and candidate proteins. The co-localization of BmHSP60 candidate interaction proteins with mitochondria was analyzed by Mito-Tracker-Green.【Result】Mass spectrometry showed that there were 5 distinct bands in the vicinity of 110, 90, 75, 60 and 35 kD. a total of 32 differentially expressed proteins were identified by comparing the results of silver-linked mass spectrometry with those of silkworm genome database and NCBI database. The 5 bands were mixed into a protein pool for mass spectrometry, and 5 interaction proteins were screened consistent with the differential bands in silver staining according to the number of peptides and molecular weight of proteins. Candidate proteins were ADP/ATP translocase (ANT), Actin, Alpha-tubulin, Elongation factor 1-alpha (EF-1) and HSP90, respectively. The BmHSP60 candidate interaction protein clone expression vector was constructed and fused with HA tag, and co-transfected with BmHSP60 intocells.Immunocoprecipitation (IP) was incubated with-Flag antibody, immunoblotting (IB) was incubated with-Flag antibody, and BmHSP60 expression was detected by IP. IB incubated with-HA antibody showed that only BmANT and BmHSP90 could detect the corresponding bands, while Alpha-tubulin and EF1did not detect the corresponding bands with BmHSP60, indicating that only BmANT and BmHSP90 had direct interaction with BmHSP60, and Alpha-tubulin and EF1had no direct interaction with BmHSP60. Further analysis of fluorescence co-localization showed that BmANT and BmHSP90 could co-locate with BmHSP60 in cytoplasm. Mitochondrial marker Mito-Tracker-Green co-localization results showed that BmHSP60, BmANT and BmHSP90 were co-localized with mitochondria.【Conclusion】Heat shock protein BmHSP60 ofwas identified to interact with BmANT and BmHSP90, and co-localized in mitochondria. It can be used to study the mechanism of BmHSP60 in antiviral immunity of.

; BmHSP60; interaction protein; co-immunoprecipitation; BmANT1; BmHSP90

10.3864/j.issn.0578-1752.2019.02.016

2018-08-08；

2018-09-06

國家自然科學基金（31872427）、國家蠶桑產業技術體系（CARS-18）、中國博士后科學基金面上項目（2018M633309）、重慶市博士后特別資助項目（XmT2018020）

董戰旗，E-mail：zqdong@swu.edu.cn。通信作者潘敏慧，E-mail：pmh047@126.com

（責任編輯 岳梅）