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轉Bt基因抗蟲棉卡那霉素和PCR檢測研究

2019-04-29 00:00:00趙靜邰紅忠何宗玲盧金寶
鄉村科技 2019年2期

[摘 要] 本文通過對30個陸地棉品系的卡那霉素檢測,最終發現有18個品系為非轉基因棉,2個品系為轉基因棉,10個品系是混合材料。混合材料分別為品系6、9、16、19、21、24、25、27、29和30。再經過PCR驗證,混合材料中品系25、27為非轉基因棉花,其他品系為轉基因Bt棉,其中品系6、19、29植株體內轉入的基因是Cry1A(b)基因。

[關鍵詞] 陸地棉品系;卡那霉素;PCR檢測

[中圖分類號] S562 [文獻標識碼] A [文章編號] 1674-7909(2019)02-101-3

在棉花育種中,轉基因植株的鑒定和篩選具有至關重要的作用。通過常規育種雜交獲得一批棉花植株后,通常要對其后代進行基因純合和遺傳穩定性的研究、農藝和經濟性狀的篩選,甚至還要進行基因的轉育、產業化過程中的種性保持等一系列工作。卡那霉素處理棉花葉片篩選轉基因植株從理論上講是可行的。但在試驗過程中發現,影響卡那霉素處理效果的因素有很多,首先棉花葉片對卡那霉素存在一定的抗性,不同部位葉片的抗性水平表現了顯著差異,葉齡愈小的葉片對卡那霉素處理的反應愈敏感,其與葉片的生長速率表現出了明顯的相關性。但不同的生育期,棉花葉片對卡那霉素抗性也表現了很大的差異[1]。隨著生育期的延長,植株對卡那霉素的抗性逐漸加強。因此,通過卡那霉素檢測的不一定就是非轉基因棉花,單純的卡那霉素檢測存在局限性。聚合酶鏈式反應(PCR)為轉基因植物的篩選提供了一種簡便、快速的方法[2]。PCR技術只需設計一對特異引物,提取組織DNA,并以此為模板進行PCR擴增特異性條帶即可[3]。Southern雜交、Nouthern雜交、Westhern雜交分別從整合、轉錄和翻譯水平上檢測外源基因的說服力強,但技術要求高、操作煩瑣、費用大,不利于大批量檢測樣品。而PCR檢測技術能有效克服這些不足,且檢測靈敏度高、迅速,所需樣品量少,檢測不受時間、取樣部位限制,是一種應用前景極廣的轉基因植物檢測方法。將卡那霉素檢測與PCR技術結合使用,能準確地檢測大批量的轉基因棉花品系,在棉花育種上能廣泛使用且可有效節省成本。

1 材料與方法

1.1 材料和試劑來源

供試棉花為第一師農業科學研究所2號實驗地陸地棉育種品系材料,共30個,每個品系材料行長5 m,重復3次,編號為1~30,由第一師農業科學研究所提供。DNA marker 1、6×loading-buffer、dNTP Mixture、Taq DNA Polymerase和Taq PCR Mastermix均為天根生物科技公司產品,瓊脂為Sigma公司產品,其他試劑購自天根生物科技公司,PCR引物由上海生工公司合成。

1.2 試驗方法

1.2.1 卡那霉素涂抹葉片試驗。用3 000 mg/L卡那霉素涂抹棉株植株的頂部葉片,7 d后觀察葉片對卡那霉素的反應。葉色正常的為抗卡那霉素植株,為轉基因棉花;葉色變黃的為卡那霉素敏感植株,為非轉基因棉花。

1.2.2 PCR檢測。根據農業部1485號公告《轉基因植物及其產品成分檢測抗蟲轉Bt基因棉花定性PCR方法》[4]進行。

一是DNA提取。稱取3 g新鮮葉片于研缽中,加液氮并迅速研磨成粉,轉移至1.5 mL離心管,并加入800 μL已預熱的CTAB裂解液(65 ℃),混勻后置于65 ℃水浴30 min,并且每10 min緩慢顛倒混勻一次。水浴后取出離心管,加入800 μL氯仿∶異戊醇(24∶1),反復顛倒多次,直至不分層為止,12 000 rpm離心10 min,用帶無尖的槍頭吸取上清并轉移至另一個2 mL的離心管中。加入等體積的預冷異丙醇,顛倒多次,直至有絮狀白色物質生成,靜置30 min,用小槍頭吸取下層液體至1.5 mL離心管中,加入70%乙醇洗2次,無水乙醇洗1次,置超凈工作臺干燥2 h,加無菌水溶解DNA,4 ℃保存待用。

二是PCR反應。PCR反應在Gene AMP 240 PCR儀上進行,25.0 μL PCR反應液中含Taq酶0.5 μL、dNTP 2.0 μL、上下引物各1.0 μL、buffer 2.0 μL,DNA模板1.0 μL以及ddH2O 18.5 μL。采用變性溫度94 ℃預變性5 min,94 ℃ 30 s,T=50~65 ℃,72 ℃ 30 s,并在此退火溫度下進行30次循環,最后72 ℃延伸4 min。Sad1基因Sadl-F:5‘一CCAAAGGAGGTGCCTGTTCA-3',Sadl-R:5‘-TTGAGGTGAGTCAGAATGTTGTTC-3’,預期片段大小為107 bp。Bt基因特異性序列Bt-F:5‘-GAAGGTTTGAGCAATCTCTAC-3’,Bt-R:5‘-CGATCAGCCTAGTAAGGTCGT-3’,預期擴增片段大小為301 bp。Bt基因特異性序列Cry1A(b)-F:5‘-CTGGTGGACATCATCTGGGGCATCTTCG-3’,Cry1A(b)-R:5‘-TTGGTA-3',預期擴增片段大小為142 bp,Maker為M1061。

三是電泳。采用0.8%瓊脂糖凝膠平板電泳,UVP成像系統照相。

2 結果與分析

2.1 棉花卡那霉素檢測

棉葉經卡那霉素處理7 d后,一部分棉苗葉片處理部位葉色正常(標記為卡檢陽性)為綠色,而另一部分棉苗葉片處理部位褪綠、變黃(標記為卡檢陰性),如圖1所示。葉片上的反應一致,因此可以排除其他干擾(機械損傷、病蟲害等)的可能性,處理結果真實可靠[5-6]。

如表1所示,經卡那霉素檢測,陸地棉30個品系中,共有18個品系可以確定為陰性,無Bt基因轉入,為非轉基因棉;2個品系為轉基因品系,為品系13、28;10個品系為混合材料(品系6、9、16、19、21、24、25、27、29和30),不能確定是否為轉基因棉,需要進一步驗證。

2.2 PCR檢測

2.2.1 內標基因Sad1的PCR擴增。經過內標基因Sad1的PCR擴增,泳道3、11的DNA模板分別為品系25、27,無PCR產物產生,說明品系25、27為非轉基因棉花;品系9、16、19、21、24、29、30和6作為模板,有PCR產物產生,說明其為轉基因棉花,如圖2所示。

2.2.2 Bt基因的PCR擴增。經過Bt基因的PCR擴增,泳道5、9表現為陰性,無PCR產物,DNA模板分別為品系9、24,表明植株中所轉的基因為非Bt基因;泳道3、4、6、7、8和10表現為陽性,DNA模板分別為品系6、16、19、21、29和30,表明品系6、16、19、21、29和30所轉的基因均為Bt基因,如圖3所示。

2.2.3 Cry1A(b)基因的PCR擴增。經過Cry1A(b)基因的PCR擴增,泳道5、6、7對應的DNA模板為品系16、21、30,均為陰性,無PCR產物,表示植株體內無Cry1A(b)基因的轉入,轉入的基因可能為其他基因,也有可能為Bt基因的其他類型。泳道2、3、4有PCR產物,DNA模板分別為品系6、19和29,表示植株體內轉入的基因是Cry1A(b)基因,如圖4所示。

3 討論

3.1 棉花對卡那霉素的抗性

研究表明,棉花對卡那霉素具有一定的抗性,其抗性大小主要與葉齡和棉株生育時期有關。葉齡越小,其抗性越低,表現在對低濃度卡那霉素(<500 mg/L)敏感,葉片褪綠速度快(<3 d)[7];生育期越后,其抗性越強,蕾期棉花在5 000 mg/L卡那霉素處理下5 d不出現明顯變化。真葉較子葉敏感,老化的葉片對卡那霉素則變得極不敏感,新展開的葉片對卡那霉素較敏感,越老的葉片對其抗性越強[1]。為了不給檢測工作帶來誤差,選擇棉花生長至四葉一心或五葉一心時期,選取最頂端的葉片涂抹為最佳。棉花蕾期雖然對卡那霉素極為敏感,但是正值棉花結鈴時期,如果卡那霉素的濃度掌握不好,極易引起棉葉所涂部位變褐壞死,影響植株的光合作用,進一步影響棉花的座鈴率。打頂之后,植株高大易于涂抹,但葉片已老化抗性增強。

本試驗研究表明通過卡那霉素檢測和PCR技術結合能有效快速地檢測轉基因棉花,節省人力物力,適用于面積大、批量大的棉田試驗[8]。

3.2 陸地棉品系分析

本試驗研究的30個品系遺傳背景多樣,其父本母本可能攜帶外源基因,也可能經過原始材料中轉基因植株花粉的擴散,經過幾代的性狀分離,后代材料有可能含有外源基因片段,甚至同一品系部分植株也有可能存在外源基因,這就需要育種專家繼續通過選單株提高品系的純度和質量。

參考文獻

[1]祝建波,王愛英,吳剛,等.轉基因棉花的田間篩選技術研究[J].棉花學報,2000(5):230-233.

[2]鞏振輝,Ceehini E,Milner J J.以PCR鑒定轉基因植株的微量DNA提取方法[J].西北農業大學學報,1997(2):45-48.

[3]張慧軍,石躍進,朱永紅,等.NPTII標記轉基因棉花再生株的延期篩選[J].中國棉花,2000(5):26-27.

[4]中華人民共和國農業部.農業部1485號公告-11-2010 轉基因植物及其產品成分檢測抗蟲轉Bt基因棉花定性PCR方法[S].北京:中國標準出版社,2011.

[5]馬麗華,許紅霞,胡育昌.轉Bt基因棉卡那霉素田間快速檢測法[J].中國棉花,2000(12):11-12.

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[7]周玉,王留明,張學坤,等.轉基因抗蟲棉田間快速鑒定方法研究[J].山東農業科學,2000(1):48-49.

[8]孫敬,唐燦明,袁小玲,等.利用卡那霉素間接鑒定法進行大規模的棉花轉基因育種技術[J].棉花學報,2000(10):270-276,281.

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