張怡寧,殷 麗
(1.上海市崇明區環境監測站,上海 200085;2.上海市浦東新區環境監測站,上海 202150)
試驗在上海市崇明區東平鎮農田展開。崇明區東平鎮隸屬于上海市,位于長江入海口,全區地勢平坦,屬典型海洋性氣候,年平均氣溫16.8 ℃,年平均降雨量1025 mL,土壤肥力中等偏上,地勢平整,灌溉條件良好,該農田的水肥管理和其他栽培條件基本一致。試驗地水稻品種為銀香18。
(1)農藥標準物質。99.9%噻蟲胺原藥 clothianidin,上海凱試科技有限公司,
(2)農藥制劑。20% 噻蟲胺SC(30-50 mL/667 m2), 河北威遠生物化工股份有限公司
1.3.1 供試試劑
實驗過程中所使用的試劑目錄見表1。

表1 試劑目錄
1.3.2 供試儀器
Waters 600E高效液相色譜儀(美國 Waters);色譜柱Diamonsil-C18,(150 mm×4.6 mm,5 μm),Waters 2487紫外檢測器;島津GC2010氣相色譜儀(日本島津),石英毛細管柱hp-5,30 m×0.32 i.d.mm×0.25 μm,帶FID檢測器;AL104分析天平(瑞士梅特勒公司);DFT-250手提式高速中藥粉碎機(溫嶺市林大機械有限公司);JLGJ4.5檢驗礱谷機(浙江臺州市糧儀廠);SHZ-82恒溫振蕩器(常州澳華儀器有限公司);RE-52A型旋轉濃縮蒸發器(上海亞榮生化儀器廠);SHB-III循環水式多用真空泵(鄭州長城科工貿有限公司); HS10260D超聲波清洗機(天津恒奧科技發展有限公司);玻璃層析柱(長30 cm、直徑1.2 cm);量筒;移液管;滴管;容量瓶;三角瓶;抽濾瓶;布氏漏斗;分液漏斗;玻璃棒等常用實驗儀器。
采用農業行業標準NY/T 1126.1-2006:土壤樣品的采集、處理和貯存。
2.2.1 溫度對農藥降解的影響
稱取100 g空白植稻土壤(精確到0.01 g)放入250 mL錐形瓶中,按推薦劑量加入農藥,然后加入無菌蒸餾水將土壤淹沒,并保持2~3 cm的水層,混勻后將所有土樣分別放入15 ℃ 、20 ℃ 、25 ℃ 、30 ℃ 和35 ℃ 恒溫(± 0.5 ℃)培養箱內黑暗培養。
2.2.2 添加濃度對農藥降解的影響
稱取100 g空白植稻土壤(精確到0.01 g)放入250 mL錐形瓶中,按推薦劑量的0.5倍、1.0倍、1.5倍、2.0倍和2.5倍加入農藥,然后加入無菌蒸餾水將土壤淹沒,并保持2~3 cm的水層,混勻后將所有土樣放入25 ℃恒溫(± 0.5 ℃)培養箱內黑暗培養。
2.2.3 土壤微生物對農藥降解的影響
稱取兩組空白植稻土壤各100 g(精確到0.01 g),放入250 mL錐形瓶中,其中一組用高壓濕熱法滅菌2次(每次60 min,120 ℃),然后兩組均按推薦劑量加入農藥,再加入無菌蒸餾水將土壤淹沒,并保持2~3 cm的水層,混勻后將所有土樣放入25 ℃恒溫(± 0.5 ℃)培養箱內黑暗培養。
以上每個處理均重復3次,培養后1 d、3 d、5 d、7 d、14 d、21 d和28 d分別取樣測定農藥的殘留量。另外每3 d觀察一次各處理的水層位置,水少的加水補充,以保持水層位置不變。
農藥推薦劑量:噻蟲胺為120 mg/kg。
稱取10.0 g土樣,放入250 mL三角瓶中,加入100 mL丙酮,于25 ℃下恒溫振蕩0.5 h,高速離心分離,將上清液過濾至三角瓶中,用旋轉蒸發器(水浴溫度30 ℃)蒸干丙酮,將剩余溶液倒入250 mL分液漏斗中,加入30 mL乙酸乙酯,振蕩萃取,用旋轉蒸發器(水浴溫度30 ℃)濃縮至近干,氮氣吹干,用甲醇定容至5 mL,過0.45 μm有機濾膜,待高效液相色譜測定。
色譜柱:Diamonsil-C18,(150 mm×4.6 mm,5 μm);檢測器:Waters 2487紫外檢測器;流動相:甲醇∶水=3∶7(V/V);流速:1.0 mL/min;柱溫:40 ℃;檢測波長:266 nm;進樣量:5 μL;保留時間:21.4 min;外標峰面積法定量。
2.5.1 色譜圖與標準曲線
稱取0.1000 g(精確至0.0002 g)噻蟲胺農藥標準品,用甲醇有機溶劑定容至100 mL,即配制成1000 mg/L的標準樣品母液,然后用甲醇稀釋成一定梯度的系列濃度標準液,在相應的色譜條件下檢測。檢測完成后,以標準溶液濃度(mg/L)為橫坐標,檢測到的色譜峰面積為縱坐標,繪制標準曲線,計算標準曲線方程及相關系數。
2.5.2 最低檢出量
標樣配制與工作曲線最低檢出濃度,即方法的靈敏度在實驗色譜條件下,以產生3倍噪聲時的最小進樣量計算。

最低檢出濃度(%)=
2.5.3 方法的準確度和精密度
在10.0 g空白土壤樣品中分別添加0.1、0.5、1.0 mg/kg的農藥標準品,每個濃度3個重復,按各自方法對樣品進行提取、凈化、檢測。方法的準確度以全過程標準添加回收率來衡量,方法的精密度以測定結果的相對標準偏差來衡量。
添加回收率(%)=
根據所測峰面積,采用外標峰面積法計算樣本中的農藥殘留量Ax。
計算公式如下:
式中:C為農藥標準品濃度(mg/L);S1為農藥標準品峰面積;S2為樣本峰面積;V為定容體積(mL);V1為農藥標準品進樣體積(μL);V2為樣本進樣體積(μL);G為樣本量(g)。
用色譜純甲醇把噻蟲胺標準母液1000 mg/kg稀釋成0.05、0.50、1.00、5.00、10.00 mg/L等5個濃度。在上述色譜條件下,進樣5 μL,色譜圖見圖1。以色譜峰面積為縱坐標、進樣濃度為橫坐標作圖,得到噻蟲胺的標準曲線(圖2),其直線回歸方程為:y=14008x+14249,相關系數為0.9919,保留時間約為21.4 min,噻蟲胺標準品在0.05~10.00 mg/kg范圍內與峰面積呈良好的線性關系。按上述儀器條件的3倍噪音計算噻蟲胺有效成分的最低檢出濃度:土壤為0.003 mg/kg、稻稈為0.004 mg/kg、谷殼為0.006 mg/kg、糙米為0.009 mg/kg,最低檢出量為1.5×10-11g。因此,在后續工作中采用此檢測方法進行樣品分析。

圖1 噻蟲胺標準品色譜

圖2 噻蟲胺線性關系
噻蟲胺在土壤中的平均添加回收率為90.3%~96.5%,標準偏差為2.06%~3.44%,相對標準偏差為2.13%~3.81%(表2);基本符合農藥殘留分析的技術要求(樊德方,1982)。
在不同溫度條件下,噻蟲胺的殘留量隨時間的變化趨勢均符合一級動力學方程(表3),當溫度由15 ℃升至30 ℃時,噻蟲胺的半衰期從20.17 d縮短至9.73 d,但當溫度由30 ℃升至35 ℃時,其半衰期9.73 d升至10.89 d。這可能是由于溫度的升高使土壤中有機物粘度降低,提高了生物利用率,但更主要的原因可能是:隨著外界環境溫度逐漸接近于降解噻蟲胺的微生物的最適溫度(30 ℃左右),微生物體內各種酶的活性不斷增強,加快了微生物的代謝活動,從而加速了噻蟲胺的降解。

表2 噻蟲胺在土壤中的添加回收率結果

表3 噻蟲胺在不同溫度土壤中降解的動力學參數
0.1~2.0倍推薦劑量的噻蟲胺在土壤中的的殘留量隨時間的變化趨勢均符合一級動力學方程(表4),隨著添加濃度的升高,噻蟲胺的降解速率常數由0.1435下降至0.0407,這可能是由于噻蟲胺添加濃度的增大抑制了土壤中降解噻蟲胺的微生物的酶活性,使微生物的代謝活動減弱,延緩了噻蟲胺的消解。顯著性檢驗結果表明,不同添加濃度的噻蟲胺的降解速率均存在顯著差異。

表4 不同添加濃度噻蟲胺在土壤中降解的動力學參數
噻蟲胺在滅菌和未滅菌的土壤中的的殘留量隨時間的變化趨勢均符合一級動力學方程(表5)。噻蟲胺在未滅菌土壤中的降解速率比其在滅菌土壤中提高了3.28倍,半衰期由未滅菌條件下的10.78 d增加至滅菌條件下的35.37 d,說明微生物對噻蟲胺在土壤中的降解具有明顯影響,微生物可加速其降解,而水解和化學降解等非生物降解作用所產生的影響相對較小,噻蟲胺在土壤中的降解速率主要由微生物決定。

表5 噻蟲胺在滅菌與未滅菌土壤中降解的動力學參數
本文在實驗室模擬條件下對不同溫度、添加濃度和土壤微生物對噻蟲胺降解的影響進行了研究。土壤微生物對農藥的降解起主要作用,環境的溫度和農藥的添加濃度等因素對農藥的降解也有一定的影響。得出了以下主要結論。
(1)在15~30 ℃條件下,隨著土壤溫度的升高,噻蟲胺在土壤中的降解速率呈升高趨勢,可能的原因是:隨著環境溫度逐漸接近于降解農藥的微生物的最適溫度,微生物體內各種酶的活性不斷增強,加快了微生物的代謝活動,從而加速了農藥的降解;當土壤溫度由30 ℃升至35 ℃時,噻蟲胺的降解速率開始下降,這可能是因為當溫度過高時,土壤微生物體內的酶活性受到抑制,使噻蟲胺的降解速率下降。
(2)隨著土壤中噻蟲胺的添加濃度從0.1倍增加到2.0倍,其在土壤中的降解速率均逐漸下降。
(3)滅菌土壤的試驗結果反映了非生物消解作用(包括水解、化學降解等)對農藥降解的影響,而未滅菌土壤的試驗結果反映了非生物消解和土壤微生物消解的共同作用。本試驗中的噻蟲胺在滅菌土壤中的降解半衰期均遠大于在未滅菌土壤中的降解半衰期,說明土壤微生物對農藥降解起主要作用。
綜上所述,當溫度在30~35 ℃,農藥濃度適宜時,土壤微生物的活性最強,土壤中的噻蟲胺降解最快。