莫平莉王洛臨?盧 泳陳雪婷馮健英徐文杰李智勇
(1.廣州中醫(yī)藥大學(xué)第五臨床醫(yī)學(xué)院,廣東 廣州 510095;2.廣東省中醫(yī)藥工程技術(shù)研究院/廣東省中醫(yī)藥研究開發(fā)重點實驗室,廣東 廣州 510095)
黃芪配方顆粒的提取采用2 次煎煮方法,目前相關(guān)工藝的制定是通過間斷取樣及HPLC 法、紫外-可見分光光度法等來反映提取液中指標成分含有量,并優(yōu)化提取方案[1-3],但這些方法會使提取信號滯后,導(dǎo)致無法及時調(diào)整提取方案,并且存在樣品處理復(fù)雜、步驟多、耗時長、對儀器設(shè)備要求高等缺點[4-5]。因此,需尋找 1種精準簡便的方法來對黃芪配方顆粒的提取過程進行實時監(jiān)測,以便及時優(yōu)化提取方案,確定提取終點。
本實驗利用黃芪提取液顯示電信號的表征,通過關(guān)聯(lián)其電導(dǎo)率與指標成分(黃芪甲苷、黃芪多糖、毛蕊異黃酮-7-O-β-D-葡萄糖苷)含有量之間的關(guān)系,對提取過程進行實時監(jiān)測,為研究該制劑提取過程中的傳質(zhì)規(guī)律奠定基礎(chǔ)。
1.1 儀器 e2695 型 HPLC 色譜儀,配置 2424 型ELS 檢測器、2998 型 PDA 檢測器(美國 Waters 公司);DDS-307A 型電導(dǎo)率儀(上海精密科學(xué)儀器有限公司);LXJ-ⅡB 型離心機(上海安亭科學(xué)儀器廠);JJ500 型電子天平(常熟市雙杰測試儀器廠);TLE204 型分析天平(瑞士 Mettler-Toledo 公司);HH 系列數(shù)顯恒溫水浴鍋(金壇市科析儀器有限公司)。
1.2 試藥 黃芪甲苷(CAS 號84687-43-4,含有量>98%)對照品購自成都瑞芬思生物科技有限公司;毛蕊異黃酮-7-O-β-D-葡萄糖苷(批號 11920-201203,含有量 97.3%)、D-無水葡萄糖(批號110833-201506,含有量 99.9%)對照品購自中國食品藥品檢定研究院。黃芪(批號160301)購自廣州市金芝中藥飲片公司,經(jīng)廣東省中醫(yī)藥工程技術(shù)研究院王洛臨主任中藥師鑒定為正品,符合2015年版 《中國藥典》 一部相關(guān)項下規(guī)定。D-101型大孔吸附樹脂購自天津浩聚樹脂科技有限公司。乙腈為色譜純;甲醇、苯酚等均為分析純;水為屈臣氏蒸餾水。
2.1 黃芪甲苷含有量測定
2.1.1 色譜條件[6-7]AichromBond-SB 色譜柱(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動相乙腈-水(32 ∶68);增益 150;漂移管溫度 85 ℃;氣體壓力25 psi(1 psi=6.895 kPa);噴霧器溫度 36 ℃;體積流量 1 mL/min;柱溫 30 ℃。色譜圖見圖1。

圖1 黃芪甲苷HPLC 色譜圖Fig.1 HPLC chromatograms of astragaloside A
2.1.2 對照品溶液制備 精密稱取黃芪甲苷對照品適量,加甲醇制成 0.559 6 mg/mL 溶液,即得。
2.1.3 供試品溶液制備 精密吸取不同時間點提取液各 15 mL,按照 2015年版 《中國藥典》[8-9]方法制備,即得。
2.1.4 線性關(guān)系考察 精密量取 “2.1.2”項下對照品溶液 0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL,甲醇定容至1 mL,搖勻,在 “2.1.1”項色譜條件下進樣10 μL 測定。以黃芪甲苷進樣量對數(shù)值為橫坐標(X),峰面積對數(shù)值為縱坐標(Y)進行回歸,得方程為Y=1.657 3X-0.197 9(r=0.999 5),在559.58~5 595.8 ng 范圍內(nèi)呈良好的線性關(guān)系。
2.2 毛蕊異黃酮-7-O-β-D-葡萄糖苷含有量測定
2.2.1 色譜條件 SunFire?C18色譜柱(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動相乙腈-0.2% 甲酸(18 ∶82);檢測波長260 nm;體積流量1 mL/min;柱溫25 ℃。色譜圖見圖2。

圖2 毛蕊異黃酮-7-O-β-D-葡萄糖苷HPLC 色譜圖Fig.2 HPLC chromatograms of calycosin-7-O-β-D-glucoside
2.2.2 對照品溶液制備 精密稱取毛蕊異黃酮-7-O-β-D-葡萄糖苷對照品適量,加甲醇制成0.110 9 mg/mL 溶液,即得。
2.2.3 供試品溶液制備 量取不同時間點提取液各 1 mL,過濾,即得。
2.2.4 線性關(guān)系考察 精密量取 “2.2.2”項下對照品溶液 0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL,甲醇定容至1 mL,搖勻,在 “2.2.1”項色譜條件下進樣 4 μL 測定。以毛蕊異黃酮-7-O-β-D-葡萄糖苷進樣量為橫坐標(X),峰面積為縱坐標(Y)進行回歸,得方程為Y=7 270X-2 310(r=0.999 9),在44.36~443.6 ng 范圍內(nèi)呈良好的線性關(guān)系。
2.3 黃芪多糖含有量測定
2.3.1 對照品溶液制備 精密稱取D-無水葡萄糖對照品適量,加水制成96 ng/mL 溶液,即得。
2.3.2 供試品溶液制備 精密量取不同時間點提取液適量,置于200 mL 量瓶中,加水定容,搖勻,即得。
2.3.3 最大吸收波長確定 精密量取對照品、供試品溶液各1 mL,置于10 mL 具塞試管中,苯酚-硫酸法[10-11]顯色后在 200~700 nm 波長處檢測。結(jié)果,2種溶液在486 nm 波長處均有最大吸收,故選擇其作為檢測波長。
2.3.4 線性關(guān)系考察 精密量取對照品溶液0.2、0.4、0.5、0.6、0.8、0.9 mL,置于具塞試管中,加水至1.0 mL,按 “2.3.3”項下方法處理,以相應(yīng)溶劑為空白,于486 nm 波長處測定吸光度。以對照品溶液質(zhì)量濃度為橫坐標(X),吸光度為縱坐標(A)進行回歸,得方程為A= 0.064 7X+0.034 5(r=0.999 5),在 2.7~12.3 ng/mL 范圍內(nèi)呈良好的線性關(guān)系。
2.4 藥材提取和指標測定 稱取藥材200 g,加入一定體積水加熱回流提取4 h,按預(yù)先設(shè)定的時間點取樣,靜置至常溫后 3 000 r/min 離心 15 min 去除雜質(zhì),25 ℃恒溫下測定提取液電導(dǎo)率,HPLCDAD 法測定黃芪甲苷含有量,HPLC-PAD 法測定毛蕊異黃酮-7-O-β-D-葡萄糖苷含有量,紫外-可見分光光度法測定黃芪多糖含有量。
2.5 黃芪指標成分提取規(guī)律及終點表征 采用電導(dǎo)率測定法,按 “2.4”項下結(jié)果繪制電導(dǎo)率-時間、指標成分含有量-時間曲線,結(jié)果見圖3~5。由圖可知,隨著提取時間增加,電導(dǎo)率、指標成分含有量變化具有相同規(guī)律,均先快速增長,再趨于平穩(wěn),最后達到恒定,即在提取過程中的前40 min快速增長,40~200 min 內(nèi)緩慢增長,趨于平穩(wěn),200 min 后達到平穩(wěn)狀態(tài),即在200 min 時提取液中電導(dǎo)率與指標成分含有量均無明顯變化,表明黃芪指標成分提取過程達到終點。

圖3 電導(dǎo)率、黃芪甲苷含有量隨提取時間的變化Fig.3 Variations of conductivity and astragaloside A content with extraction time
2.6 電導(dǎo)率與黃芪指標成分含有量之間的定量關(guān)系 基于 “2.5”項下結(jié)果,繪制以指標成分含有量為橫坐標,提取液電導(dǎo)率為縱坐標的關(guān)系曲線(圖6),并對其進行線性相關(guān)考察,發(fā)現(xiàn)電導(dǎo)率與黃芪甲苷、毛蕊異黃酮-7-O-β-D-葡萄糖苷、黃芪多糖含有量關(guān)系曲線的相關(guān)系數(shù)(r)分別為0.991 9、0.985 4、0.986 8,均呈現(xiàn)出良好的相關(guān)性。

圖4 電導(dǎo)率、毛蕊異黃酮-7-O-β-D-葡萄糖苷含有量隨提取時間的變化Fig.4 Variations of conductivity and calycosin-7-O-β-D-glucoside content with extraction time

圖5 電導(dǎo)率、黃芪多糖含有量隨提取時間的變化Fig.5 Variations of conductivity and Astragali Radix polysaccharides content with extraction time

圖6 電導(dǎo)率與黃芪甲苷(A)、毛蕊異黃酮-7-O-β-D-葡萄糖苷(B)、黃芪多糖(C)含有量之間的關(guān)系Fig.6 Relationships between conductivity and contents of astragaloside A(A),calycosin-7-O-β-D-glucoside(B)and Astragali Radix polysaccharides(C)
純水中本無電導(dǎo)率,而在提取過程中黃芪細胞中含有的皂苷、黃酮、多糖、無機鹽類等成分可透過細胞壁和細胞間質(zhì)向水中擴散,并以鹽的形式存在,使得水顯示電信號[12]。本實驗發(fā)現(xiàn),隨著提取時間增加,提取液中電導(dǎo)率與黃芪指標成分(黃芪甲苷、毛蕊異黃酮-7-O-β-D-葡萄糖苷、黃芪多糖)含有量的變化趨勢均是先快速增長后趨于平穩(wěn),線性關(guān)系良好,故電導(dǎo)率測定法可及時快速、準確直觀地反饋上述成分提取過程和終點,解決了常規(guī)HPLC 法、紫外-可見分光光度法等存在的樣品處理方法復(fù)雜、步驟繁多、耗時長、反饋信號延后等問題。
另外,通過關(guān)聯(lián)黃芪提取液中電導(dǎo)率與指標成分含有量之間的關(guān)系,發(fā)現(xiàn)在提取過程中可采用電導(dǎo)率測定法反饋后者變化規(guī)律,并及時指示提取終點,而且該方法同樣適用于苦參、紅花、側(cè)柏葉、梔子、全蝎、土鱉蟲類等藥材指標成分的提取[12-15],可為中藥提取過程控制提供更多選擇。