楊 旭 任 珍
(1. 安康學院現代農業與生物科技學院,陜西 安康 725000;2. 陜西省富硒食品工程實驗室,陜西 安康 725000)
茶渣是茶葉經沖泡飲用或活性成分提取加工后的副產物[1],含有豐富的纖維素、木質素、蛋白、多酚、多糖、皂素等功效成分[2-3]。茶渣中蛋白約15%~30%[4],且以堿溶性蛋白為主,占蛋白總量的55.06%[5]。研究表明,茶渣蛋白具有高的疏水性,溶解度較差[6]39[7]1-2,因此乳化性、乳化穩定性、表面張力和黏度等功能性質方面不利于在食品中的應用。
為了提升茶渣蛋白的功能特性,目前已報道的改性方法有限制性酶解法和擠壓膨化法。王洪新等[8]利用酶法水解改性后,茶渣蛋白的溶解性、起泡性、乳化性提高,但泡沫穩定性和乳化穩定性均有所降低。黃夢姣等[9]通過擠壓改性法,使綠茶渣的水溶性提高了7.41%,但擠壓膨化中高溫高壓對產品的色澤、營養價值等的不良影響,使其他改性方法的探究具有發展空間。
糖基化改性是利用蛋白質—糖的接枝反應形成共價復合物,實現對蛋白質的化學改性。此方法已應用于燕麥[10]、米渣[11]、玉米[12]等蛋白的改性,但在茶渣蛋白中的應用還未見報道。本試驗擬以濕法糖基化對茶渣蛋白進行改性,探究糖基供體種類、反應物比例、pH、溫度和時間對糖基化效果的影響,并分析改性前后茶渣蛋白的溶解性、乳化性和乳化穩定性、起泡性和泡沫穩定性的變化情況。以期為糖基化改性法在茶渣蛋白中的應用提供理論依據。
1.1.1 材料與試劑
綠茶:安康市紫陽縣向陽茶廠;
葡萄糖、葡聚糖、乳糖、麥芽糊精:分析純,北京酷爾化學科技有限公司;
牛血清白蛋白標準品:純度≥98%,上海江萊生物科技有限公司;
其他試劑均為分析純。
1.1.2 儀器與設備
紫外可見分光光度計:TU-1901型,北京普析通用儀器有限責任公司;
低速離心機:LD4-2A型,北京醫用離心機廠;
恒溫振動水浴鍋:SHA-C型,常州國華電器有限公司;
電熱恒溫鼓風干燥箱:GZX-GF101-2-BS型,上海躍進醫療器械有限公司;
真空冷凍干燥機:SCIENTZ-50N型,寧波新芝生物科技股份有限公司;
旋轉蒸發儀:RE-52AA型,上海亞榮生化儀器廠。
1.2.1 原料預處理 綠茶原料以料液比1∶110(g/mL)加水于85 ℃下沖泡30 min,重復2次[13],抽濾后剩余的茶渣在50 ℃下干燥至恒重,粉碎過60目篩,備用。
1.2.2 茶渣蛋白的提取 根據預試驗所得的優化提取工藝,茶渣樣品用0.075 mol/L NaOH溶液以1∶60(g/mL)的料液比在54.2 ℃下水浴振蕩提取4 h,浸提液經添加4%雙氧水在50 ℃下脫色,并于pH 3.5下等電點沉淀后,冷凍干燥。
1.2.3 糖基供體的選擇及評價指標測定
(1) 茶渣蛋白—糖的共價復合物制備:參考王成波[14]的方法略作修改。以0.075 mol/L NaOH溶液復溶茶渣蛋白,使蛋白質量濃度為1.2%,取20 mL按1∶1的質量比加入不同糖基供體,磁力攪拌20 min使其混合均勻。用0.1 mol/L HCl溶液或0.1 mol/L NaOH 溶液調節pH至11.0,磁力攪拌5 min。將茶渣蛋白—糖混合液置于90 ℃下水浴加熱反應一定時間,并在冰浴中冷卻5 min 以終止反應,所得樣品液于4 ℃冷藏待用。
(2) 接枝度測定:采用鄰苯二甲醛法[15]。
(3) 褐變指數測定:參照Sun等[16]的方法,以反應體系在420 nm下的吸光度值為褐變指數。
(4) 溶解性測定:根據張蓓等[10]的方法修改如下,將共價復合物樣品液冷凍干燥后,配制成1 mg/mL復合物溶液,9 000 r/min離心15 min,采用考馬斯亮藍G-250法測定上清液中的蛋白質含量,并按式(1)計算溶解性。
(1)
式中:
SI——溶解性,%;
P1——上清液中蛋白質含量,μg/mL;
P0——樣品中總蛋白質含量,μg/mL。
(5) 乳化性及乳化穩定性測定:參照文獻[17],配制1 mg/mL的共價復合物樣品液進行測定。
(6) 起泡性及泡沫穩定性測定:參照文獻[18],配制1 mg/mL的共價復合物樣品液進行測定。
1.2.4 茶渣蛋白—糖共價復合物的制備工藝優化
(1) 茶渣蛋白與糖的質量比對糖基化效果的影響:將茶渣蛋白與選擇的糖基供體分別按照2∶1,1∶1,1∶2,1∶3,1∶4的質量比進行混合,在90 ℃、pH 11.0條件下反應2 h,其他步驟按1.2.3(1)所述制備共價復合物。
(2) 體系pH對糖基化效果的影響:將茶渣蛋白與選擇的糖基供體按照1∶1的質量比進行混合,分別調節pH至8.0,9.0,10.0,11.0,12.0,于90 ℃下反應2 h,其他步驟按1.2.3(1)所述制備共價復合物。
(3) 溫度對糖基化效果的影響:將茶渣蛋白與選擇的糖基供體按照1∶1的質量比進行混合,調節pH至11.0,分別于60,70,80,90,100 ℃下反應2 h,其他步驟按1.2.3(1)所述制備共價復合物。
(4) 響應面試驗設計:根據單因素試驗結果,以質量比、pH和反應溫度為自變量,接枝度為響應值,進行三因素三水平的Box-Behnken響應面試驗。
1.2.5 數據分析 所有數據以(均值±標準差)表示,每次樣品的測定均重復3次。采用SPSS 19.0進行方差分析和差異顯著性分析(P<0.05即為差異顯著)。其中,響應面設計試驗數據以均值表示,采用Design Expert 8對數據進行二次多項式回歸擬合分析。
2.1.1 不同糖基供體的糖基化效果分析 圖1為茶渣蛋白分別與葡萄糖、葡聚糖、乳糖、麥芽糊精在0~4 h反應過程中接枝度的變化曲線。隨著反應時間的延長,接枝度均呈先增加后降低的趨勢。4種糖基供體中,乳糖的接枝度最高,反應1 h即為(35.38±0.79)%,其次為葡萄糖,反應2 h后達到最高接枝度(31.58±0.83)%,而葡聚糖和麥芽糊精在受試時間內的接枝度均未超過15%。葡萄糖、乳糖含有較多的還原性羰基,更容易與茶渣蛋白發生接枝反應,而葡聚糖、麥芽糊精的相對分子質量較大,支鏈的空間位阻效應則限制了反應的進行[10]。

圖1 反應時間對不同茶渣蛋白—糖復合物接枝度的影響
Figure 1 Effect of reaction time on the graft degree of the different tea residue protein-saccharide complexes
茶渣蛋白與葡萄糖、葡聚糖、乳糖、麥芽糊精進行糖基化反應的時間對產物褐變指數的影響如圖2所示。4種糖基供體產物褐變指數的變化趨勢一致,在0~4 h反應時間內不斷增大,且表現為:葡萄糖>乳糖>麥芽糊精>葡聚糖。結果表明,葡萄糖和乳糖與茶渣蛋白的反應更為劇烈,能夠較快進入美拉德反應的高級階段,從而形成褐變物質[19 ]。
2.1.2 不同糖基供體的產物功能特性分析 表1為不同糖基供體與茶渣蛋白形成共價復合物的功能特性測定結果。從表1中數據可知,茶渣蛋白—葡萄糖復合物的溶解性、乳化性和起泡性明顯高于其他3種糖基供體,而乳化穩定性與泡沫穩定性則是葡聚糖最高,葡萄糖次之。

圖2 反應時間對不同茶渣蛋白—糖復合物褐變 指數的影響
Figure 2 Effect of reaction time on the browning index of the different tea residue protein-saccharide complexes

表1 不同茶渣蛋白—糖復合物的功能特性?
? 同列字母不同表示差異顯著(P<0.05)。
因此,綜合接枝度、褐變指數、功能特性各項指標,最終選擇葡萄糖作為茶渣蛋白糖基化改性的最適糖基供體。
2.2.1 單因素試驗
(1) 茶渣蛋白與糖的質量比對糖基化效果的影響:由圖3可知,開始時,隨著葡萄糖的添加比例增大,反應底物間的接觸增多,加速了美拉德反應的進程,接枝度在茶渣蛋白與糖的質量比為1∶1時達到最大值,為(31.15±0.51)%。而后此作用效果減弱,加之體系黏度隨葡萄糖的添加比例增大而提高,導致底物間的接觸反而受到限制。褐變指數卻隨質量比的增大而呈現不斷上升的趨勢,且在質量比超過1∶3時上升幅度增大,可能與副反應(如焦糖化)的發生有關[11]。因此,確定茶渣蛋白與葡萄糖的適宜質量比為1∶1~1∶3。

圖3 茶渣蛋白與葡萄糖的質量比對糖基化效果的影響
(2) 體系pH對糖基化效果的影響:由圖4可知,隨著體系pH的不斷增大,接枝度呈先增加后降低的趨勢,而褐變指數則持續上升。當pH為11.0時,接枝度達到最大值,為(31.86±0.81)%。由于提取得到的茶渣蛋白為堿溶性,pH值的提升促使蛋白質的溶解性增加,有利于反應的進行。隨后,極端pH值使氨基的反應性降低,枝度有所下降,但茶渣中的多酚與蛋白質等物質在堿性、濕熱作用下的氧化反應會加劇褐變程度。因此,確定反應體系的適宜pH為10~12。

圖4 體系pH對糖基化效果的影響
(3) 溫度對糖基化效果的影響:由圖5可知,接枝度和褐變指數先隨反應溫度的升高而逐漸增加,當溫度為80 ℃時,兩個指標分別達到(31.88±0.54)%和(1.441±0.017)。此階段反應溫度的升高使蛋白質受熱展開,與葡萄糖的反應位點增加,反應加快。當蛋白分子上共價結合的糖鏈增長,位阻效應的存在使反應受到限制,同時過高的溫度也會使茶渣蛋白的營養價值降低,但高溫卻促使了焦糖聚合物的形成[20],使褐變指數繼續升高。因此,確定適宜的反應溫度為70~90 ℃。

圖5 溫度對糖基化效果的影響
2.2.2 響應面試驗 根據單因素試驗的結果,糖基化效果的兩個衡量指標中,褐變指數是美拉德反應高級階段的重要表征,但褐變程度過大對產品的色澤會造成不利影響;接枝度則反映了共價復合物主鏈上葡萄糖的接枝程度,其越大越有利于接枝反應[21]。因此,以接枝度為響應值,進行三因素三水平的響應面試驗設計(表2),具體試驗方案及結果見表3。
采用Design Expert 8軟件對試驗數據進行二次多項式回歸擬合,得到的回歸方程如下:
Y= 31.42-1.12A-1.49B+1.82C+0.11AB-1.08AC-0.30BC-1.34A2-2.06B2-3.49C2。
(2)


表2 Box-Behnken試驗設計因素水平表

表3 Box-Behnken試驗結果

表4 回歸模型的方差分析結果?
? *表示P<0.05,**表示P<0.01。
圖6為各因素交互作用對接枝度影響的響應面圖。通過該組圖的曲線走勢和等高線形狀,可反映出3個考察因素中任意兩個因素交互作用的強弱,其中茶渣蛋白與糖的質量比、反應溫度的交互作用對接枝度影響顯著,與方差分析結果一致。根據擬合的多元回歸方程,最終計算得到的最優組合為茶渣蛋白與糖的質量比1∶1.42、體系pH 10.60、反應溫度83.68 ℃,此時接枝度的理論值達到32.38%。為確定所得到的優化工藝對茶渣蛋白的改性效果,進行驗證實驗。此反應條件下,測得產物的接枝度為(32.89±0.53)%,與理論最佳值基本一致,說明此改性方案合理可行。
2.2.3 改性前后茶渣蛋白的功能特性測定 在優化的改性工藝基礎上,制備得到茶渣蛋白—葡萄糖共價復合物,分別測定改性前后蛋白質的功能特性,結果見表5。改性前,茶渣蛋白的溶解性僅為(55.31±1.41)%,與其較高的疏水性氨基酸含量有關;乳化性和對乳狀液的穩定能力分別為(0.205±0.007)%和(25.16±0.69)%,與夏秀芳等[17]報道的大豆分離蛋白的乳化性(0.160%)和乳化穩定性(25.75%)相當;起泡性較差,與其溶解性較差有關,而維持泡沫的穩定能力為(57.45±2.57)%。
經過糖基化改性后,測定的功能特性均有不同程度的提高。溶解性增加了35.78%,較溶解性增加24%的限制性水解法[7]40-41和7.41%的擠壓改性法[9],效果更為理想。改性后茶渣蛋白的乳化性是改性前的3.02倍,乳化穩定性增加了10.72%,優于限制性水解改性后茶渣蛋白乳化性7%的提高和乳化穩定性的降低[6]34-35。起泡性增加了29.95%,不及酶法水解改性后起泡性的改善效果(增加79%),泡沫穩定性雖較其他功能特性的提升不明顯,但優于酶法水解改性[8]。

圖6 因素交互作用對接枝度的影響

茶渣蛋白溶解性/%乳化性乳化穩定性/%起泡性/%泡沫穩定性/%改性前55.31±1.410.205±0.00725.16±0.69117.56±1.9057.45±2.57改性后91.09±1.850.620±0.01135.88±1.14147.51±2.5560.68±1.84
本研究從糖基化反應的接枝度、褐變指數和蛋白功能特性3方面考察,選定葡萄糖為最適的糖基供體。以接枝度為響應值,茶渣蛋白與葡萄糖的質量比、體系pH和反應溫度為因子,通過響應面試驗設計建立二次多項回歸模型,確定茶渣蛋白的優化改性工藝為茶渣蛋白與葡萄糖的質量比1∶1、體系pH 10.60、反應溫度83.68 ℃。此改性條件下,茶渣蛋白的溶解性、乳化性及乳化穩定性、起泡性及泡沫穩定性較改性前均有提升,說明糖基化改性法可用于茶渣蛋白的功能特性改善。后續可對改性茶渣蛋白在具體食品模型中的應用進行研究,以利于茶渣資源的合理開發。