段驍驍,肖倩倩,魏雪濤,郝衛(wèi)東*
(北京大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院毒理學(xué)系/食品安全毒理學(xué)研究與評價北京市重點實驗室,北京 100191)
焦糖色,又名焦糖、焦糖色素,是糖類物質(zhì)在高溫下脫水、分解、聚合而成的紅褐色或黑褐色混合型化合物,是我國允許在食品中使用的最重要天然色素之一,其產(chǎn)銷量占到天然色素的80%以上[1-2],廣泛用于醬油、醋、啤酒、調(diào)味料等食品中。焦糖色按照使用添加劑的不同可分為普通法生產(chǎn)的I類焦糖色,加亞硫酸鹽生產(chǎn)的II類焦糖色,加氨生產(chǎn)的III類焦糖色和亞硫酸氨法生產(chǎn)的IV類焦糖色,其中IV類焦糖色使用率最高,其次為III類。2-乙酰基-4-羥基-丁基咪 唑 (2-Acetyl-4-tetrahydroxy-butylimidazole, THI)是III類焦糖色生產(chǎn)、加工過程中的主要副產(chǎn)物,因其在動物實驗中表現(xiàn)出免疫毒性而受到廣泛關(guān)注。研究表明,大鼠攝入III類焦糖色后約1/3的有色物質(zhì)被吸收[3],其經(jīng)口半數(shù)致死劑量(LD50)高于17500mg/kg[4],長期攝入可導(dǎo)致大鼠外周血中淋巴細(xì)胞數(shù)顯著減少,同時抑制大鼠特異性和非特異性免疫功能[5-8]。Sinkeidam等[5]發(fā)現(xiàn)III類焦糖色對大鼠免疫系統(tǒng)的影響是由THI導(dǎo)致的,Gobin等[8]進(jìn)一步證實,單獨攝入THI可影響多項大鼠免疫功能指標(biāo),如胸腺淋巴細(xì)胞數(shù)顯著增加,T細(xì)胞增殖能力降低和NK細(xì)胞活性下降等。Gugasyan等[9]發(fā)現(xiàn)單獨攝入THI可以抑制小鼠的接觸性超敏反應(yīng),并引起外周血中淋巴細(xì)胞的減少,而補充維生素B6可在不同程度上緩解THI引起的淋巴細(xì)胞減少癥[10-11],目前尚無THI遺傳毒性和致癌性的報道[12]。因THI可導(dǎo)致嚙齒類動物出現(xiàn)可逆性的淋巴細(xì)胞減少癥,F(xiàn)AO/WHO食品添加劑聯(lián)合專家委員會(JECFA)將III類焦糖色的每日允許攝入量(acceptable dailyintake,ADI)定為200mg/kg,THI限量25mg/kg。因Maekawa等[13]提出THI在大鼠體內(nèi)的無可見有害作用水平(noobservedadverseeffectlevel,NOAEL)為20g/kg,歐洲食品安全局(EFSA)據(jù)此將III類焦糖色的ADI下調(diào)為100mg/kg,THI限量10mg/kg。
鑒于焦糖色在我國食品生產(chǎn)加工過程中應(yīng)用廣泛,公眾對焦糖色及其副產(chǎn)物健康風(fēng)險的關(guān)注度不斷增加,因此國家衛(wèi)生和計劃生育委員會在2017年對中國居民膳食焦糖色暴露風(fēng)險進(jìn)行了專項評估,在該過程中發(fā)現(xiàn),THI相關(guān)的毒理學(xué)資料十分陳舊,研究內(nèi)容有限且研究結(jié)果不一,不能針對敏感的毒性效應(yīng)終點獲得可靠的毒理學(xué)數(shù)據(jù),難以滿足對其開展健康風(fēng)險評估的需求。為彌補相關(guān)毒理學(xué)資料的空缺,同時為開展THI健康風(fēng)險評估提供毒理學(xué)數(shù)據(jù),本實驗研究了7d和30d連續(xù)暴露THI對小鼠免疫功能的影響。
SPF級BALB/c雌鼠,購自北京大學(xué)醫(yī)學(xué)部實驗動物科學(xué)部。6~8周齡,體質(zhì)量18~22g,飼養(yǎng)于屏障環(huán)境,溫度20~25℃,相對濕度40%~70%,12h/12h明暗交替循環(huán),飼料為符合國家標(biāo)準(zhǔn)的普通維持飼料,無菌墊料,飲用水經(jīng)過濾除菌處理,動物自由飲水和攝食。動物實驗符合北京大學(xué)動物福利和管理委員會的相關(guān)規(guī)定。
2-乙酰基-4-羥基-丁基咪唑(THI)、1-磷酸鞘氨醇(sphingosine-1-phosphate,S1P)購自美國Sigma公司;RPMI-1640培養(yǎng)液購自美國Hyclone公司;流式抗體 anti-mouseCD3FITC、anti-mouseCD4PE/CyTM5、anti-mouseCD8PE/Cyanine7購自北京達(dá)科為生物技術(shù)有限公司。
全自動血球計數(shù)儀購于日本NIHONKOHDEN公司;流式細(xì)胞儀購于美國Beckman公司;多功能酶標(biāo)儀購于德國Omega公司;低溫高速離心機購于德國Heraeus公司。
將小鼠按體質(zhì)量隨機分為對照組(超純水組)和THI低、中、高劑量組,每組12只。按染毒周期分為7d和30d實驗組,連續(xù)每天灌胃給藥,灌胃量均按20 μL/g。7d染毒劑量為0、0.5、2.5、12.5mg/kg,30d為0、0.2、0.5、2.5mg/kg。小鼠麻醉后摘除眼球取血,頸椎脫臼處死動物,進(jìn)行相關(guān)指標(biāo)檢測。
1.4.1 外周血白細(xì)胞分類計數(shù) 眼球取血于抗凝管內(nèi),全自動血球計數(shù)儀計數(shù)白細(xì)胞總數(shù);制備血涂片,瑞氏染液進(jìn)行染色,鏡下計數(shù)200個白細(xì)胞。
1.4.2 胸腺T細(xì)胞分類計數(shù) 分離胸腺于PBS,研磨至單細(xì)胞懸液;細(xì)胞計數(shù)后轉(zhuǎn)移至5mL流式管中(每管1×106個細(xì)胞),PBS洗滌一次(4 ℃、350g/min,離心5min);棄上清,用100μL流式染色液重懸細(xì)胞沉淀,加入細(xì)胞表面分子抗體CD3、CD4和CD8混合液,混勻后4℃避光孵育30min;孵育結(jié)束,加入2 mL流式染色液洗滌一次(4℃、350g/min離心5 min);棄上清,樣品用300μL流式染色液重懸,立即采用流式細(xì)胞儀進(jìn)行T細(xì)胞分類檢測。
1.4.3 T淋巴細(xì)胞增殖功能測定 無菌條件下分離脾臟于 Hanks液,研磨至單細(xì)胞懸液;轉(zhuǎn)移至15mL離心管,Hanks液洗滌一次(350g/min,5min);棄上清,重懸于2mLRPMI-1640完全培養(yǎng)液中,臺盼藍(lán)染色計數(shù)活細(xì)胞數(shù)(活細(xì)胞應(yīng)在95%以上),并調(diào)整細(xì)胞濃度至2×106/mL;每份細(xì)胞懸液分2孔加入24孔板中(1mL/孔),其中一孔加入50μLConA液(終濃度為5μg/mL),另一孔作為對照,培養(yǎng)72h;培養(yǎng)結(jié)束前4h,每孔棄去培養(yǎng)液0.7mL,加入0.7mL不含小牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)液,同時加入MTT(5mg/mL,50μL/孔);培養(yǎng)結(jié)束后每孔加入1mL酸性異丙醇,混勻后分裝到96孔板中,每孔分裝3個平行樣,用多功能酶標(biāo)儀檢測,結(jié)果以波長570nm處的光密度值表示。
1.4.4 NK細(xì)胞活性實驗 實驗前72h將YAC-1細(xì)胞(靶細(xì)胞)傳代培養(yǎng),實驗中用RPMI-1640完全培養(yǎng)液調(diào)整細(xì)胞濃度至1×105/mL;無菌條件下分離小鼠脾臟于Hanks液,研磨至單細(xì)胞懸液;轉(zhuǎn)移至15mL離心管,Hanks液洗滌一次(350g/min,5min);棄上清,重懸于2mLRPMI-1640完全培養(yǎng)液中,臺盼藍(lán)染色計數(shù)活細(xì)胞數(shù)(活細(xì)胞應(yīng)在95%以上),并調(diào)整細(xì)胞濃度至5×106/mL;取靶細(xì)胞和效應(yīng)細(xì)胞各100μL加入U型96孔板中,同時設(shè)靶細(xì)胞自然釋放孔(靶細(xì)胞和培養(yǎng)液各100μL)、靶細(xì)胞最大釋放孔(靶細(xì)胞和5%TritonX-100各100μL),培養(yǎng)4h;培養(yǎng)結(jié)束后,1500r/min離心5min,每孔吸取上清100μL置于平底96孔板,加入LDH基質(zhì)液100μL,反應(yīng)3min,每孔加入1mol/L的HCl30μL,測定D(490)值,按下式計算NK細(xì)胞活性:

1.4.5 T細(xì)胞趨化功能檢測 無菌條件分離脾臟于PBS中,研磨至單細(xì)胞懸液,PBS洗滌一次(4℃,350g/min,離心5min);棄上清,重懸于RPMI-1640完全培養(yǎng)液中,調(diào)整細(xì)胞濃度為8×106/mL,加至96孔Transwell趨化小室上室(25μL/孔),將含不同濃度1-磷酸鞘氨醇(S1P)的相同培養(yǎng)基用于下室(29μL/孔);培養(yǎng)1h后,收集下室內(nèi)容物于EP管內(nèi),350g/min離心5min;將細(xì)胞沉淀重懸于流式染色液中,進(jìn)行抗體染色,具體過程同1.4.2。
采用SPSS13.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,多組均數(shù)間比較采用單因素方差分析,方差不齊時采用Dunnett'sT3檢驗,兩組均數(shù)之間比較采用t檢驗,方差不齊時采用t檢驗,數(shù)據(jù)表達(dá)方式為。以α=0.05為檢驗水準(zhǔn)。
THI對BALB/c小鼠體質(zhì)量和臟器質(zhì)量的影響如圖1所示。7d和30dTHI連續(xù)染毒結(jié)束時,染毒組小鼠體質(zhì)量、肝、胸腺、雙側(cè)腹股溝淋巴結(jié)和淺表淋巴結(jié)(頜下、腋下和腹股溝淋巴結(jié))質(zhì)量與對照組相比均未出現(xiàn)明顯變化(P>0.05),僅連續(xù)染毒30d時高劑量組(2.5mg/kg)小鼠脾臟質(zhì)量明顯下降(P<0.05)。

圖1 THI對小鼠體質(zhì)量和臟器質(zhì)量的影響(n=12)
THI染毒7d對小鼠外周血白細(xì)胞數(shù)的影響如圖2所示。與對照組相比,THI2.5和12.5mg/kg劑量組白細(xì)胞總數(shù)均明顯降低(P<0.05);12.5mg/kg劑量組淋巴細(xì)胞數(shù)明顯降低(P<0.05);2.5和12.5mg/kg劑量組淋巴細(xì)胞占白細(xì)胞總數(shù)比值下降(P<0.05)。

圖2 THI染毒7d對小鼠外周血白細(xì)胞數(shù)的影響(n=12)
THI30d染毒小鼠外周血白細(xì)胞數(shù)變化情況如圖3所示。與對照組相比,THI0.5和2.5mg/kg組白細(xì)胞總數(shù)明顯降低(P<0.05),2.5mg/kg組淋巴細(xì)胞數(shù)顯著下降(P<0.05),淋巴細(xì)胞占白細(xì)胞數(shù)比值、單核細(xì)胞數(shù)、中性粒細(xì)胞數(shù)在各劑量組中未觀察到明顯變化(P>0.05)。THI染毒7d和30d各組的紅細(xì)胞數(shù)均在正常值范圍內(nèi)。

圖3 THI染毒30d對小鼠外周血白細(xì)胞數(shù)影響(n=12)
THI染毒7d小鼠胸腺細(xì)胞數(shù)的變化結(jié)果如圖4所示。與對照組相比,12.5mg/kg劑量組胸腺細(xì)胞總數(shù)和T細(xì)胞數(shù)顯著升高(P<0.05),0.5和2.5mg/kg劑量組變化不大,T細(xì)胞占胸腺細(xì)胞總數(shù)比例在各組中基本保持一致。T細(xì)胞數(shù)升高主要是由于單陽性T細(xì)胞(CD4+和CD8+T細(xì)胞)數(shù)增加所致,2.5和12.5mg/kg劑量組單陽性T細(xì)胞數(shù)顯著升高(P<0.05),雙陽性T細(xì)胞(CD4+CD8+T細(xì)胞)和雙陰性T細(xì)胞(CD4+CD8+T細(xì)胞)數(shù)在各組間差異不明顯,具體見表1。

圖4 THI染毒7d對小鼠胸腺細(xì)胞數(shù)的影響(n=12)

表1 THI染毒7d對T淋巴細(xì)胞不同亞群細(xì)胞數(shù)的影響(×109/L,n=12)
如圖5所示,THI染毒30d,與對照組相比,2.5 mg/kg組胸腺細(xì)胞數(shù)和T細(xì)胞數(shù)顯著性升高(P<0.05)。2.5mg/kg組CD4+T細(xì)胞和CD8+T細(xì)胞明顯升高(P<0.05),0.5mg/kg劑量組CD4+T細(xì)胞數(shù)明顯升高(P<0.05),但CD8+T細(xì)胞數(shù)未觀察到明顯變化。見表2。

圖5 THI染毒30d對小鼠胸腺細(xì)胞數(shù)的影響(n=12)

表2 THI染毒30d對T淋巴細(xì)胞不同亞群細(xì)胞數(shù)的影響(×109/L,n=12)
如圖6所示,與對照組相比,THI染毒7d僅在12.5mg/kg劑量組表現(xiàn)出對T細(xì)胞增殖功能的抑制,THI染毒30d,0.5和2.5mg/kg劑量組T細(xì)胞增殖功能均明顯降低(P<0.05)。

圖6 THI對小鼠T細(xì)胞增殖功能的影響(n=12)
如圖7所示,與對照組相比,THI染毒7d和30d后,均在2.5mg/kg劑量組觀察到NK細(xì)胞活性明顯降低(P<0.05);0.5mg/kg劑量組僅在30d染毒中表現(xiàn)出對NK細(xì)胞活性的影響(P<0.05)。

圖7 THI對小鼠NK細(xì)胞活性的影響(n=12)
如圖8所示,THI染毒7d,與對照組相比,在1 nmol/L的S1P處理組,CD4+T和CD8+T細(xì)胞均在12.5 mg/kg時出現(xiàn)對S1P趨化功能的明顯降低(P<0.05),CD8+T細(xì)胞在2.5mg/kg劑量組也出現(xiàn)該功能的降低(P<0.05)。10nmol/L的S1P對CD4+和CD8+T細(xì)胞的趨化誘導(dǎo)作用最為明顯,兩種細(xì)胞在2.5和12.5mg/kg劑量組均出現(xiàn)趨化功能的明顯降低(P<0.05);0.5mg/kg劑量組CD8+T細(xì)胞也表現(xiàn)出趨化功能的下降(P<0.05)。在100nmol/L濃度的S1P處理組,CD4+T細(xì)胞2.5和12.5mg/kg劑量組趨化功能受到抑制(P<0.05),而CD8+T細(xì)胞僅在12.5mg/kg劑量組出現(xiàn)趨化功能抑制(P<0.05)。

圖8 THI染毒7d對T細(xì)胞趨化功能的影響(n=6)
如圖9所示,在30d染毒實驗中,與對照組相比,1和10nmol/L濃度S1P處理組,0.5和2.5mg/kg劑量組CD4+T細(xì)胞和CD8+T細(xì)胞的趨化功能均明顯降低(P<0.05);100nmol/LS1P濃度處理組,0.5和2.5 mg/kg劑量組CD4+T細(xì)胞趨化功能明顯受到抑制(P<0.05),但CD8+T細(xì)胞僅在2.5mg/kg劑量組表現(xiàn)出趨化功能的降低(P<0.05),0.5mg/kg劑量組未觀察到該功能的明顯改變。

圖9 THI染毒30d對T細(xì)胞趨化功能的影響(n=6)
THI作為III類焦糖色生產(chǎn)加工過程中的主要副產(chǎn)物之一,因其在動物體內(nèi)具有免疫毒性而得到廣泛關(guān)注,但有關(guān)THI的毒理學(xué)研究,年代久遠(yuǎn),資料陳舊,數(shù)據(jù)缺失嚴(yán)重,結(jié)果缺乏統(tǒng)一標(biāo)準(zhǔn),且受限于實驗方法和技術(shù),評價內(nèi)容和手段有限,不能針對敏感的毒性效應(yīng)終點得到可靠的毒理學(xué)數(shù)據(jù);研究對象較為單一,多數(shù)亞急性毒性實驗和亞慢性毒性實驗的研究對象均為大鼠,以小鼠為受試動物開展的相關(guān)研究較少。鑒于我國對于開展THI健康風(fēng)險評估的迫切需要,本實驗選用BALB/c雌鼠作為研究對象,運用多種敏感的免疫功能評價方法,從多個方面全面地、系統(tǒng)地評價了THI的對小鼠免疫功能的影響,包括非特異性免疫功能和特異性免疫功能,初步得到小鼠THI連續(xù)染毒30d的NOAEL水平為0.2mg/kg,對于開展THI風(fēng)險評估具有重要的參考價值。
因多數(shù)研究指出,THI的免疫毒作用在嚙齒類動物中不會表現(xiàn)出性別差異[13-15],故本實驗選用單一性別小鼠作為研究對象。7d染毒實驗劑量設(shè)置時,綜合考慮III類焦糖色和THI在人群中的實際可能暴露水平[我國III類焦糖色平均攝入量約為33.71mg/(kg·d),其中THI平均攝入量約為24.12mg/(kg·d)]、JECFA和EFSA對于III類焦糖色中THI的限量規(guī)定以及對歷史文獻(xiàn)相關(guān)毒理學(xué)數(shù)據(jù)進(jìn)行換算等多個方面,最終確定劑量梯度為0、0.5、2.5和12.5mg/kg。THI7d染毒的研究結(jié)果顯示,THI表現(xiàn)出劑量反應(yīng)關(guān)系和免疫抑制作用,2.5mg/kg劑量組在多項檢測指標(biāo)上已出現(xiàn)明顯改變,同時0.5mg/kg劑量組在部分指標(biāo)上已出現(xiàn)劑量相關(guān)的輕微變化,雖然差異不具有統(tǒng)計學(xué)意義。考慮到THI30d連續(xù)染毒實驗更長的暴露周期,并以獲得小鼠30d暴露的NOAEL水平為研究目的,故將30d染毒實驗的劑量調(diào)整為0、0.2、0.5和2.5mg/kg。
研究結(jié)果顯示,THI連續(xù)暴露7d和30d均不會改變小鼠體質(zhì)量、攝食量和飲水量,也不會影響小鼠胸腺、肝、淺表淋巴結(jié)的質(zhì)量和臟器系數(shù)。因7d染毒實驗中未發(fā)現(xiàn)THI對雙側(cè)腹股溝淋巴結(jié)質(zhì)量的影響,故在30d染毒實驗中摘取了小鼠雙側(cè)腹股溝淋巴結(jié)、頜下淋巴結(jié)和腋下淋巴結(jié),但均未在實驗中觀察到THI對這3類淺表淋巴結(jié)質(zhì)量的影響。但值得注意的是,THI30d染毒在2.5mg/kg劑量組觀察到脾臟質(zhì)量的明顯降低,而7d染毒2.5mg/kg劑量組及更高的12.5mg/kg劑量組均為未觀察到脾臟質(zhì)量的明顯變化。
研究結(jié)果顯示,THI在小鼠體內(nèi)可引起血中白細(xì)胞數(shù)顯著減少和胸腺細(xì)胞數(shù)顯著增加。7d和30d染毒中,紅細(xì)胞數(shù)、中性粒細(xì)胞數(shù)、單核細(xì)胞數(shù)等均未觀察到明顯變化,淋巴細(xì)胞變化情況與白細(xì)胞一致,且所占比例在各組基本保持不變,可認(rèn)為外周血中白細(xì)胞數(shù)的減少是由于淋巴細(xì)胞數(shù)減少所引起的,而胸腺細(xì)胞總數(shù)的升高是由于T細(xì)胞數(shù)明顯增加導(dǎo)致的。兩次實驗中胸腺細(xì)胞總數(shù)變化情況與T細(xì)胞變化情況均保持一致,且T細(xì)胞占胸腺細(xì)胞總數(shù)比值在各組間基本保持一致。同時還觀察到THI可對胸腺T細(xì)胞亞群細(xì)胞數(shù)產(chǎn)生明顯影響。THI染毒7d,2.5和12.5 mg/kg劑量組的單陽性T細(xì)胞(CD4+和CD8+)數(shù)均顯著性升高,雙陽性(CD4+CD8+)和雙陰性(CD4-D8-)T細(xì)胞數(shù)基本保持不變,而THI30d染毒2.5mg/kg劑量組單陽性T細(xì)胞數(shù)也出現(xiàn)明顯升高,0.5mg/kg劑量組僅出現(xiàn)CD4+T細(xì)胞數(shù)的升高,CD8+T細(xì)胞數(shù)未觀察到明顯變化。以上實驗結(jié)果提示THI可能影響T細(xì)胞陽性選擇過程或影響T細(xì)胞凋亡,但已有研究指出THI不會改變胸腺中T細(xì)胞凋亡比率[16],故THI是否作用于T細(xì)胞分化成熟過程有待進(jìn)一步的研究。
在THI對免疫功能影響方面,7d染毒僅在12.5 mg/kg劑量組出現(xiàn)T細(xì)胞增殖功能的明顯降低,而30 d染毒的0.5和2.5mg/kg劑量組均出現(xiàn)T細(xì)胞增殖功能受損,兩次實驗脾中T細(xì)胞數(shù)各劑量組與對照組相比未出現(xiàn)明顯差異,說明THI可以抑制單個T細(xì)胞的增殖功能。THI染毒7d的2.5和12.5mg/kg劑量組出現(xiàn)NK細(xì)胞活性的降低,0.5mg/kg劑量組未觀察到該現(xiàn)象,而30d染毒的0.5和2.5mg/kg均表現(xiàn)出NK細(xì)胞活性的明顯降低。趨化性功能研究中,連續(xù)染毒7d和30d,CD4+和CD8+T細(xì)胞均對10nmol/L濃度的S1P處理表現(xiàn)出最強的趨化能力,同時該條件在THI作用下,兩種細(xì)胞趨化功能受損程度最大。7d染毒2.5和12.5mg/kg劑量組CD4+T細(xì)胞在10和100nmol/L S1P濃度處出現(xiàn)趨化功能降低,僅12.5mg/kg劑量組在1nmol/L濃度處理下細(xì)胞出現(xiàn)功能受損,而2.5和12.5mg/kg劑量組的CD8+T細(xì)胞在1和10nmol/LS1P濃度處理條件下均出現(xiàn)趨化功能降低,100nmol/L濃度處理組該細(xì)胞功能的降低僅在12.5mg/kg劑量組出現(xiàn),說明CD8+T細(xì)胞對低濃度S1P的趨化功能在THI連續(xù)染毒7d條件下更易受到影響,而CD4+T細(xì)胞對較高濃度S1P的趨化功能改變更易在THI連續(xù)染毒7d條件下出現(xiàn)。30d染毒實驗中,0.5和2.5mg/kg劑量組CD4+T細(xì)胞在3種濃度S1P條件下均出現(xiàn)趨化功能明顯降低,CD8+T在1和10nmol/LS1P濃度處理下出現(xiàn)趨化功能受損,100nmol/LS1P處理下功能的降低僅在2.5mg/kg劑量組出現(xiàn)。研究結(jié)果顯示,CD4+T細(xì)胞和CD8+T細(xì)胞針對不同濃度S1P的趨化功能,受到THI染毒劑量和染毒周期的影響,本實驗為進(jìn)一步開展THI相關(guān)研究時設(shè)置的染毒劑量、染毒時間和設(shè)置的S1P濃度條件,合理選擇細(xì)胞類型提供了依據(jù)。
從THI連續(xù)染毒7d和30d實驗結(jié)果來看,THI可以抑制小鼠的細(xì)胞免疫功能,引起血液淋巴細(xì)胞減少,胸腺中單陽性T細(xì)胞增加、T細(xì)胞趨化功能受損等。染毒劑量為0.5mg/kg條件下,當(dāng)染毒時間從7d延長至30d時,會表現(xiàn)出7d染毒實驗中未出現(xiàn)的免疫抑制作用,說明THI的毒性作用具有劑量和時間依賴性。在本研究中,THI連續(xù)染毒30d,0.2mg/kg劑量組未出現(xiàn)明顯毒性作用,且有研究表明,略高于0.2mg/kg劑量THI連續(xù)染毒30d不會引起小鼠胸腺組織病理樣改變[17-19],可初步認(rèn)為0.2mg/kg是小鼠THI連續(xù)暴露30d的NOAEL水平,但是否是小鼠THI作用的安全劑量,還需要更長染毒時間的毒性研究進(jìn)一步確認(rèn)。