懷牛膝飲片的質量標準及指紋圖譜研究

王小燕 常軍民 郭常潤 陳麗

摘 要 目的：建立懷牛膝飲片的質量評價標準并建立不同產地飲片的指紋圖譜。方法：采用薄層色譜法（TLC）鑒別懷牛膝飲片;按2015年版《中國藥典》（四部）方法檢查懷牛膝飲片的水分、總灰分、醇溶性浸出物的含量;采用紫外分光光度法測定總甾酮的含量;采用高效液相色譜法（HPLC）測定β-蛻皮甾酮的含量;采用HPLC法建立10批懷牛膝飲片的指紋圖譜，以β-蛻皮甾酮（10號峰）為參照，采用《中藥色譜指紋圖譜相似度評價系統（2012版）》進行相似度評價，確定共有峰;采用SPSS 21.0軟件進行聚類分析、主成分分析以評價懷牛膝飲片的綜合質量。結果：TLC鑒別結果顯示，在供試品色譜中，與β-蛻皮甾酮、人參皂苷Ro對照品色譜相應位置上有相同顏色的斑點。10批懷牛膝飲片的平均水分含量為4.07%～6.33%，總灰分含量為5.04%～6.43%，醇溶性浸出物含量為6.57%～11.12%。總甾酮（以β-蛻皮甾酮計）、β-蛻皮甾酮檢測質量濃度的線性范圍分別為0.01～0.08、68.5～479.5 ?g/mL（R2均大于0.999），精密度、穩定性、重復性試驗的RSD均小于3%，平均加樣回收率分別為98.85%（RSD=1.89%，n=6）、100.34%（RSD=2.12%，n=9），平均含量分別為0.34%～0.56%、0.07%～0.09%。10批懷牛膝飲片共有24個共有峰，相似度均大于0.900。聚類分析結果顯示，10批懷牛膝飲片可聚為4類，其中S1、S3、S6、S10為一類，S2、S7、S8為一類，S4、S9 為一類，S5為一類。主成分分析結果顯示，前4個主成分因子的累積方差貢獻率為86.774%。綜合質量高低依次為S8>S5>S9>S4>S3>S7>S6>S10>S2>S1。結論：所建質量標準、含量測定方法和HPLC指紋圖譜穩定、準確性好，可用于全面評價懷牛膝飲片的質量。

關鍵詞 懷牛膝飲片;薄層色譜法;高效液相色譜法;含量測定;指紋圖譜;聚類分析;主成分分析

ABSTRACT ? OBJECTIVE： The establish the quality standard of Achyranthes bidentata decoction pieces and establish the fingerprint of decoction pieces of different origins. METHODS： TLC method was used to identify A. bidentata decoction pieces. The contents of water， total ash and ethanol-soluble extract in A. bidentata decoction pieces were determined according to the method in 2015 edition of Chinese Pharmacopoeia （part Ⅳ）. UV spectrophotometry was used to determine the content of total steroid. The content of β-ecdysterone in A. bidentata decoction pieces was determined by HPLC. HPLC method was used to establish the fingerprint of 10 batches of A. bidentata decoction pieces. Using β-ecdysterone （No. 10 peak） as reference， similarity evaluation was conducted by using Similarity Evaluation System for TCM Chromatographic Fingerprints （2012 edition）， and the common peaks were determined. SPSS 21.0 software was used for cluster analysis and principal component analysis so as to evaluate the comprehensive quality of A. bidentata decoction pieces. RESULTS： Results of TLC identification showed that the spots with the same color on the corresponding positions of β-ecdysterone and ginsenoside Ro control in chromatogram of test sample. The average water content of 10 batches of A. bidentata decoction pieces was 4.07%-6.33%. The total ash content was 5.04%-6.43%. The ethanol-soluble extract was 6.57%-11.12%. The linear range of total sterone （by β-ecdysterone） and β-ecdysterone were 0.01-0.08 mg/mL and 68.5-479.5 ?g/mL （R2>0.999）， respectively. RSDs of precision， stability and repeatability tests were all less than 3%. The average recovery rates were 98.85%（RSD=1.89%，n=6） and 100.34%（RSD=2.12%，n=9）， respectively. The average contents were 0.34%-0.56% and 0.07%-0.09%， respectively. There were 24 common peaks in 10 batches of A. bidentata decoction pieces， and the similarity was all over 0.900. Cluster analysis results showed that 10 batches of A. bidentata decoction pieces could be grouped into 4 categories， among which S1， S3， S6 and S10 were one category， S2， S7 and S8 were one category， S4 and S9 were one category， and S5 was one category. The results of principal component analysis showed that the cumulative variance contribution rate of the first four principal components was 86.774%. The order of comprehensive quality is S8>S5>S9>S4>S3>S7>S6>S10>S2>S1. CONCLUSIONS： The established quality standard， content determination method and HPLC fingerprint are stable and accurate， and can be used for the quality evaluation of A. bidentata decoction pieces.

KEYWORDS ? Achyranthes bidentata decoction pieces; TLC; HPLC; Content determination; Fingerprint; Cluster analysis; Principal component analysis

牛膝為莧科植物牛膝Achyranthes bidentata Bl.的干燥根，其性平，味苦、甘、酸，具有逐瘀通經、補肝腎、強筋骨、利尿通淋、引血下行的功效，常用于治療經閉、痛經、腰膝酸痛、筋骨無力等[1]。牛膝主產于我國河南、河北、山東、山西、內蒙、安徽等地，其中河南焦作的武陟、溫縣、博愛、沁陽以及新鄉的輝縣等地所種植的牛膝又被稱為懷牛膝[2]，已成為道地藥材品種“四大懷藥”之一[3]。有研究發現，懷牛膝除含有皂苷類、甾酮類、多糖類等主要化學成分外，還含有少量生物堿類、黃酮類成分[4]。甾酮類成分具有促進骨質增生、調節糖代謝、抗脂質過氧化等作用[5];β-蛻皮甾酮作為該藥材主要的甾酮類成分之一，具有抑制破骨細胞分化、促成骨樣細胞增殖活性，促進蛋白質的合成，抑制由藥物引起的血糖升高和降膽固醇的作用，與牛膝“補肝腎、強筋骨”功效相吻合[6-7]。

中藥飲片是指基于中醫藥理論，依據藥物效用、應用方式，對藥材進行炮制處理，使其變成具備一定規格及形狀的成品[8]。目前，關于懷牛膝質量控制的研究主要集中于原藥材的含量測定和指紋圖譜研究方面[7，9-10]，關于飲片質量評價的研究較少;加之中藥飲片的質量檢測基本上還沿襲傳統的飲片檢測標準，其檢驗方法相對簡單，僅通過外觀、氣味、口嘗等方式檢測，無法實現對中藥飲片有效成分及整體質量的評價[11]。指紋圖譜是目前中藥飲片質量控制的有效手段，可全面反映中藥飲片炮制前后的變化，能有效控制中藥飲片的質量，具有特征性和整體性[11]。目前，關于懷牛膝飲片質量標準的研究較少且不全面，仇立志[12]僅探討了硫磺熏蒸對懷牛膝飲片質量的影響;王博等[13]雖然采用高效液相色譜（HPLC）指紋圖譜技術對不同廠家懷牛膝飲片進行了質量評價，但缺乏詳細的分析，信息量有限。為此，本研究采用薄層鑒別法（TLC）對懷牛膝飲片進行鑒別，按2015年版《中國藥典》（四部）方法對其水分、總灰分、醇溶性浸出物等進行考察;采用紫外分光光度法（UV）測定總甾酮含量，采用HPLC法測定β-蛻皮甾酮含量;同時建立懷牛膝飲片的指紋圖譜，并進行聚類分析和主成分分析，旨在為懷牛膝飲片的質量標準完善和總體質量評價提供參考。

1 材料

1.1 儀器

1800 PC型UV計（上海菁華科技儀器有限公司）;1260型HPLC儀，包括G1312C型雙元泵、G1329B型檢測器、G1316A型柱溫箱、G1315D型進樣器（美國Agilent公司）;QE-300型萬能粉碎機（浙江屹立工貿有限公司）;DZF-6020型真空干燥箱（上海一恒科學儀器有限公司）;SHB-Ⅲ型循環水式多用真空泵（鄭州長城科工貿有限公司）;BSA124S型電子天平[賽多利斯科技儀器（北京）有限公司];SX2型箱式電阻爐（上海博訊實業有限公司）;KQ-250E型超聲波清洗器（昆山市超聲儀器有限公司）;硅膠G薄層板（粒徑：10～40 ?m;青島海洋化工有限公司）;D101型大孔吸附樹脂[粒徑范圍：（0.3～1.25）mm≥95%;蚌埠市天星樹脂有限責任公司]。

1.2 藥品與試劑

β-蛻皮甾酮對照品（南京森貝伽生物科技有限公司，批號：111903-201805，純度：≥98%）;人參皂苷Ro對照品（南京森貝伽生物科技有限公司，批號：111638- 201907，純度：≥98%）;甲醇、乙腈為色譜純，其余試劑均為分析純，水為純化水。10批懷牛膝飲片（編號：S1～ S10），經中國藥科大學中藥學院楊中林教授鑒定為莧科植物牛膝A. bidentata Bl.的干燥根（去蘆頭后潤軟，切3 mm厚片，低溫烘干[10]后，將樣品粉碎，過40目篩，粉末密封于自封袋中，置于干燥器內保存于中國藥科大學中藥學院）。樣品信息來源見表1。

2 方法與結果

2.1 TLC鑒別

取各批樣品粉末約4 g，加入80%甲醇50 mL，超聲（功率：300 W，頻率：40 kHz，下同）提取2次，每次30 min，濾過，濾液蒸干，殘渣加水15 mL，微熱（30 ℃）使溶解，過D101型大孔吸附樹脂柱（內徑：1.5 cm，柱高：15 cm），依次用水100 mL、20%乙醇100 mL、80%乙醇100 mL洗脫，收集80%乙醇洗脫液，蒸干，殘渣加80%甲醇2 mL使溶解，作為供試品溶液。取β-蛻皮甾酮對照品、人參皂苷Ro對照品適量，加甲醇分別制成每l mL含1 mg的單一對照品溶液;以甲醇作為陰性對照溶液。按2015年版《中國藥典》（四部）通則“0502薄層色譜法”[14-15]，吸取供試品溶液、對照品溶液和陰性對照溶液各4 μL，分別點于同一硅膠G薄層板上，以三氯甲烷-甲醇-水-甲酸（7 ∶ 3 ∶ 0.5 ∶ 0.05，V/V/V/V）為展開劑，展開，取出，晾干，噴以5%香草醛硫酸溶液，于105 ℃加熱至斑點顯色清晰。結果，在供試品色譜中，與β-蛻皮甾酮、人參皂苷Ro對照品色譜相應位置上有相同顏色的斑點且陰性對照無干擾，詳見圖1。

2.2 水分、總灰分、醇溶性浸出物的含量測定

水分、總灰分和醇溶性浸出物的測定分別按2015年版《中國藥典》（四部）通則“0832水分測定法烘干法”“2302灰分測定法”“2201醇溶性浸出物測定法”（以水飽和的正丁醇作溶劑）[15]測定，每批樣品平行測定3次，取平均值。結果，水分含量為4.07%～6.33%，平均值為5.27%;總灰分含量為5.04%～6.43%，平均值為5.63%;醇溶性浸出物含量為6.57%～11.12%，平均值為8.78%，詳見表2。

2.3 總甾酮的含量測定

2.3.1 供試品溶液的制備 取樣品粉末約1 g，精密稱定，置于具塞三角瓶中，加80%乙醇50 mL，超聲提取 2 次，每次 1 h，濾過，收集濾液，水浴（65 ℃）加熱濃縮至無醇味，過D101型大孔吸附樹脂柱（內徑：1.2 cm，柱高：10 cm），依次用水50 mL、5%乙醇30 mL、80%乙醇50 mL洗脫，收集80%乙醇洗脫液，蒸干，殘渣用甲醇稀釋并定容至25 mL，即得[7]。

2.3.2 對照品溶液的制備 精密稱取β-蛻皮甾酮對照品5.01 mg，置于10 mL量瓶中，加甲醇溶解并稀釋至刻度，混勻，制得質量濃度為0.501 mg/mL的對照品溶液。

2.3.3 檢測波長的確定 取上述供試品溶液（編號：S4）、對照品溶液各0.2 mL，分別置于5 mL 量瓶中，加甲醇稀釋至刻度，混勻;另取甲醇為空白對照溶液。分別于200～400 nm波長范圍內進行全波長掃描。結果，對照品溶液與供試品溶液均在243 nm波長處有最大吸收，故選擇243 nm為檢測波長（圖略）。

2.3.4 線性關系考察 精密吸取“2.3.2”項下對照品溶液0.10、0.15、0.20、0.25、0.30、0.45、0.55、0.60、0.65、0.70、0.80 mL，分別置于5 mL量瓶中，加甲醇稀釋至刻度，混勻，于243 nm波長處測定吸光度。以質量濃度（X，mg/mL）為橫坐標、吸光度（Y）為縱坐標進行線性回歸。結果，β-蛻皮甾酮的回歸方程為Y=25.74X-0.036（R 2=0.999 2），表明β-蛻皮甾酮檢測質量濃度的線性范圍為0.01～0.08 mg/mL。

2.3.5 精密度試驗 取“2.3.1”項下供試品溶液（編號：S4）適量，于243 nm波長處連續測定吸光度6次。結果，β-蛻皮甾酮吸光度的RSD 為 0.57%（n=6），表明方法精密度良好。

2.3.6 重復性試驗 取樣品（編號：S4）粉末，約1 g，共6份，按“2.3.1”項下方法制備供試品溶液，于243 nm波長處測定吸光度并按標準曲線法計算樣品含量。結果，β-蛻皮甾酮含量的RSD為0.02%（n=6），表明方法重復性良好。

2.3.7 穩定性試驗 取供試品溶液（編號：S4）適量，分別于室溫下放置0、1、2、3、4、5 h時于243 nm波長處測定吸光度。結果，β-蛻皮甾酮吸光度的RSD 為 0.55%（n=6），表明供試品溶液于室溫下放置5 h內穩定性良好。

2.3.8 加樣回收率試驗 取已知含量的樣品（編號：S4）粉末，約 0.5 g，共6份，置于具塞錐形瓶中，加入0.572 mg/mL對照品溶液（精密稱取β-蛻皮甾酮對照品5.72 mg，按“2.3.2”項下方法制得）4.2 mL，按“2.3.1”項下方法制備供試品溶液，于243 nm波長處測定吸光度并計算加樣回收率。結果，總甾酮的平均加樣回收率為98.85%（RSD=1.89%，n=6）。

2.3.9 樣品含量測定 取10批樣品粉末適量，按“2.3.1”項下方法制備供試品溶液，取2 mL，置于5 mL量瓶中，加甲醇稀釋至刻度，混勻，于243 nm波長處測定吸光度并按標準曲線法計算樣品含量。每樣品平行測定3次。結果，10批樣品中總甾酮的平均含量（以β-蛻皮甾酮計）分別為0.50%、0.37%、0.56%、0.34%、0.38%、0.50%、0.34%、0.47%、0.41%、0.52%。

2.4 β-蛻皮甾酮的含量測定

2.4.1 供試品溶液的制備 取樣品粉末約 1 g，精密稱定，置于具塞三角瓶中，加入水飽和的正丁醇 40 mL，密塞，稱定質量，浸泡過夜，超聲處理 45 min，冷卻至室溫，再次稱定質量，用水飽和的正丁醇補足減失的質量，濾過，用甲醇 10 mL 分數次洗滌容器及殘渣，合并濾液和洗液，蒸干，殘渣加甲醇溶解，移至5 mL量瓶中，加甲醇定容，混勻，即得[11]。

2.4.2 對照品溶液的制備 精密稱取β-蛻皮甾酮對照品2.74 mg，置于2 mL量瓶中，用甲醇定容，混勻，制得質量濃度為1.37 mg/mL 的對照品溶液。

2.4.3 色譜條件 色譜柱：Inertsil C18（250 mm×4.6 mm，5 μm）;流動相：乙腈（A）-水（B），梯度洗脫（0～13 min，5%A→23%A;13～20 min，23%A→25%A;20～26 min，25%A→26%A;26～37 min，26%A→50%A;37～52 min，50%A→73%A;52～54 min，73%A→87%A;54～60 min，87%A→95%A;60～65 min，95%A）;檢測波長：225 nm;流速：1.0 mL/min;柱溫：30 ℃;進樣量：10 μL。

2.4.4 系統適用性試驗 取供試品溶液、對照品溶液和空白溶液（甲醇）各適量，按“2.4.3”項下色譜條件進樣測定，記錄色譜圖。結果，β-蛻皮甾酮的理論板數大于6 000，與鄰峰基線分離，分離度大于1.5，且空白溶液對測定無干擾（圖略）。

2.4.5 線性關系考察 精密量取“2.4.2”項下對照品溶液0.05、0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35 mL，置于1 mL量瓶中，加甲醇定容，混勻，按“2.4.3”項下色譜條件進樣測定，記錄色譜圖。以β-蛻皮甾酮質量濃度（X，?g/mL）為橫坐標、峰面積（Y）為縱坐標進行線性回歸。結果，β-蛻皮甾酮的回歸方程為Y=17.12X-310.9（R 2=0.999 0），表明β-蛻皮甾酮檢測質量濃度的線性范圍為68.5～479.5 ?g/mL。

2.4.6 精密度試驗 取“2.4.1”項下供試品溶液（編號：S10）適量，按“2.4.3”項下色譜條件連續進樣測定6次，記錄峰面積。結果，β-蛻皮甾酮峰面積的RSD為1.00%（n=6），表明方法精密度良好。

2.4.7 重復性試驗 取樣品（編號：S10）粉末，約1 g，共6份，按“2.4.1”項下方法制備供試品溶液，再按“2.4.3”項下色譜條件進樣測定，記錄峰面積并按標準曲線法計算樣品含量。結果，β-蛻皮甾酮含量的RSD為0.87%（n=6），表明方法重復性良好。

2.4.8 穩定性試驗 取“2.4.1”項下供試品溶液（編號：S10）適量，分別于室溫下放置0、2、4、6、8、12、24 h時按“2.4.3”項下色譜條件進樣測定，記錄峰面積。結果，β-蛻皮甾酮峰面積的RSD為0.83%（n=7），表明供試品溶液于室溫下放置24 h內穩定性良好。

2.4.9 加樣回收率試驗 取已知含量的樣品（編號：S10）粉末，約1 g，共9份，精密稱定，按已知量的50%、100%、150%加入“2.4.2”項下對照品溶液適量，按“2.4.1”項下方法制備供試品溶液，再按“2.4.3”項下色譜條件進樣測定，記錄峰面積并計算加樣回收率。結果，β-蛻皮甾酮的平均加樣回收率為100.34%（RSD=2.12%，n=9）。

2.4.10 β-蛻皮甾酮的含量測定 取10批樣品粉末適量，約1 g，按“2.4.1”項下方法制備供試品溶液，再按“2.4.3”項下色譜條件進樣測定，記錄峰面積并按標準曲線法計算樣品含量，平行測定3次。結果，10批樣品中β-蛻皮甾酮的平均含量分別為0.07%、0.07%、0.08%、0.08%、0.08%、0.08%、0.08%、0.09%、0.08%、0.07%。

2.5 指紋圖譜的建立

2.5.1 供試品溶液的制備 同“2.4.1”項。

2.5.2 色譜條件 同“2.4.3”項。

2.5.3 精密度試驗 取“2.5.1”項下供試品溶液（編號：S4），按“2.5.2”項下色譜條件連續進樣測定6次，記錄峰面積。以β-蛻皮甾酮（10號峰）為參照，計算各共有峰的相對保留時間和相對峰面積。結果，24個共有峰相對保留時間和相對峰面積的RSD均小于3%（n=6），表明方法精密度良好。

2.5.4 重復性試驗 精密稱取樣品（編號：S4）粉末，約 1 g，共6份，按“2.5.1”項下方法制備供試品溶液，再按“2.5.2”項下色譜條件進樣測定，以β-蛻皮甾酮為參照，計算各共有峰的相對保留時間和相對峰面積。結果，24個共有峰相對保留時間和相對峰面積的RSD均小于3%（n=6），表明方法重復性良好。

2.5.5 穩定性試驗 取“2.5.1”項下供試品溶液（編號：S4），分別于室溫下放置0、2、4、8、12、24 h時按“2.5.2”項下色譜條件進樣測定，記錄峰面積。以β-蛻皮甾酮為參照，計算各共有峰的相對保留時間和相對峰面積。結果，24個共有峰相對保留時間和相對峰面積的RSD均小于3%（n=6），表明供試品溶液于室溫下放置24 h內穩定性良好。

2.5.6 指紋圖譜的生成 取10批樣品粉末，按“2.5.1”項下方法制備供試品溶液，再按“2.5.2”項下色譜條件進樣測定，將所得圖譜數據導入《中藥色譜指紋圖譜相似度評價系統（2012版）》，以S1為參照圖譜（S1樣品中各色峰分離度良好且對應峰面積穩定），采用中位數法，設定時間窗寬度為0.1，進行多點校正和標記峰（Mark峰）匹配[13]，得到HPLC疊加指紋圖譜、對照指紋圖譜、對照品溶液的HPLC圖，詳見圖2～圖4。結果，10批樣品共有共有峰24個。

2.5.7 相似度評價 采用《中藥色譜指紋圖譜相似度評價系統（2012年版）》對10批樣品進行相似度評價。結果，10批樣品的相似度分別為0.995、0.991、0.987、0.979、0.969、0.997、0.983、0.975、0.998、0.990，表明10批樣品與對照指紋圖譜的相似度較高，總體化學成分差異較小。

2.5.8 共有峰的指認 本研究前期試驗結果顯示，懷牛膝飲片中β-蛻皮甾酮含量較高，且出峰穩定，分離度較好，故以其為參照（s），計算其余各共有峰的相對保留時間和相對峰面積。通過與對照品保留時間（圖4）對比，指認10號峰為β-蛻皮甾酮。各共有峰的相對保留時間和相對峰面積見表3、表4。

2.6 聚類分析

以10批樣品的24個共有峰峰面積為變量，采用SPSS 21.0軟件對峰面積進行標準化處理，采用組間聯接，以平方Euclidean距離為測度進行聚類分析。結果，10批樣品可聚為4類，其中S1、S3、S6、S10為一類，S2、S7、S8為一類，S4、S9 為一類，S5為一類，詳見圖5。

2.7 主成分分析

采用 SPSS 21.0軟件對樣品中15 個共有峰（6～12、15～16、18～23號峰，剔除溶劑峰以及峰面積較小的不穩定峰對于分析結果的影響）峰面積進行標準化處理后，進行主成分分析（以特征值>1為標準[16-17]）。結果，得到4個主成分因子，累積方差貢獻率為86.774%>80%，即這4個主成分因子能反映樣品80%以上的質量信息，故以這4個主成分因子為指標，對10批樣品進行質量評價，詳見表5。

為了使提取的4個主成分能更加清晰、全面地反映原始數據所包含的信息，本研究以最大方差法對變量進行正交旋轉，得到旋轉后的公共因子載荷矩陣（表6）;同時以4個主成分因子為變量，繪制主成分分析碎石圖（圖6）和得分圖（圖7）。結果，除16、20號峰外，其余共有峰在主成分1中有明顯的正載荷;除8、9、21、22、23號峰外，其余共有峰在主成分2中有明顯的正載荷;除12、21、22、23號峰外，其余共有峰在主成分3中有明顯的正載荷;除16、19、20、21、22、23號峰外，其余共有峰在主成分4中有明顯的正載荷;10批樣品分為4類，其中S5為一類，S1、S3、S6、S10為一類，S2、S7、S8為一類，S4、S9為一類，與“2.6”項下聚類分析結果一致（F為各色譜峰峰面積經標準化后的數據）。

2.8 質量綜合評價

以X1、X2、X3、X4分別代表“2.7”項下提取的4個主成分，根據表6結果，得各主成分得分為X1=0.043F1+0.308F2+0.247F3+0.089F4+0.965F5+0.876F6+0.929F7+0.059F8-0.264F9+0.106F10+0.064F11-0.181F12+0.755F13+0.764F14+0.117F15;X2=0.859F1+0.789F2-0.038F3-0.063F4+0.057F5+0.261F6+0.094F7+0.374F8+0.190F9+0.873F10+0.760F11+0.835F12-0.350F13-0.015F14-0.127F15;X3=0.069F1+0.285F2+0.675F3+0.161F4+0.043F5+0.019F6-0.260F7+0.870F8+0.923F9+0.344F10+0.022F11+0.196F12-0.098F13-0.060F14-0.638F15;X4=0.061F1+0.312F2+0.649F3+0.952F4+0.149F5+0.326F6+0.059F7+0.084F8-0.050F9+0.177F10-0.376F11-0.152F12-0.500F13-0.574F14-0.179F15。同時，根據表5結果，得綜合得分（x）=（33.124X1+27.330X2+17.081X3+9.239X4）/86.774，綜合得分越高表示樣品整體質量越好[18]，結果見表7。由表7可知，S8樣品綜合得分最高，S1樣品最低，提示不同廠家由于炮制方式不同，其飲片質量存在差異。

3 討論

本研究前期試驗分別考察了回流和超聲提取對TLC斑點的影響，結果，兩種方法均呈現清晰的斑點;隨后，進一步考察了兩種方法對待測成分HPLC色譜峰的影響，結果，超聲提取樣品的色譜峰峰形好、響應強且雜質干擾少，故選擇超聲提取。同時，本研究考察了不同料液比（1 ∶ 15、1 ∶ 30、1 ∶ 35、1 ∶ 40、1 ∶ 45、1 ∶ 60，g/mL，下同）、超聲提取時間（30、45、60 min）對待測成分峰面積的影響。結果，當料液比為1 ∶ 40時，β-蛻皮甾酮峰面積最大;但增加料液比，其峰面積下降，故選擇料液比為1 ∶ 40。當超聲45 min時，β-蛻皮甾酮峰面積最大，故選擇超聲時間為45 min。此外，對不同流動相（甲醇-水、乙腈-水、乙腈-0.1%甲酸水溶液）、流速（0.8、1.0、1.2 mL/min）、柱溫（25、30、35 ℃）、色譜柱（Intertsil C18、Syncronis C18、Hedera ODS-2）進行考察，結果，采用“2.4.3”項下色譜條件時，待測物色譜峰峰形對稱、分離度良好且響應較強。

基于中藥多組分、多靶點的作用機制，影響其質量的因素除藥材飲片原料復雜外，還有炮制工藝，這使得“一品多家”的情況十分普遍。可見，建立揭示不同生產企業產品質量差異的統一標準可能會更有利于區分產品的優劣[19]。本研究在TLC鑒別的基礎上，對10批不同廠家懷牛膝飲片的水分、總灰分及醇溶性浸出物、總甾酮、β-蛻皮甾酮的含量進行測定，采用定性、定量結合指紋圖譜對懷牛膝飲片進行分析。結果顯示，10批樣品中水分含量為4.07%～6.33%，總灰分含量為5.04%～6.43%，醇溶性浸出物含量為6.57%～11.12%，總甾酮（以β-蛻皮甾酮計）含量為0.34%～0.56%，β-蛻皮甾酮含量為0.07%～0.09%，提示不同廠家樣品質量存在差異。本研究采用UV法檢測樣品中總甾酮的含量（β-蛻皮甾酮計），目的是為了確定牛膝飲片中大類成分（甾酮類）的含量;采用HPLC法檢測β-蛻皮甾酮的含量，是由于該化物在甾酮類成分中含量較高，且出峰穩定，是甾酮類成分中的主要成分。雖然均以β-蛻皮甾酮為指標，但由于采用的檢測方法不同，檢出的目標組分不同，因此并不沖突。

本研究結果顯示，10批樣品共有24個共有峰，相似度均大于0.900，并指認了10號峰為β-蛻皮甾酮。聚類分析結果顯示，10批樣品可聚為4類，其中S1、S3、S6、S10為一類，S2、S7、S8為一類，S4、S9 為一類，S5為一類，這可能與原藥材的生長環境及不同廠家飲片的炮制加工工藝不同有關[20]。主成分分析結果與上述結果一致。綜合質量評價結果顯示，S8>S5>S9>S4>S3>S7>S6>S10>S2>S1，提示不同廠家懷牛膝飲片質量有一定差異，這可能是由于炮制方式不同（即使同一炮制品，在輔料用量、炒制溫度、炒制時間和炮制程度判定方面也有差異[21]）或者采購的原藥材質量存在差異。

綜上所述，所建質量標準、含量測定方法和HPLC指紋圖譜穩定、準確性好，可用于全面評價懷牛膝飲片的質量。

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（收稿日期：2020-08-22 修回日期：2020-11-04）

（編輯：陳 宏）