周超培 劉芊芊 楊春榮 楊陽(yáng) 高春生
中圖分類號(hào)R943
文獻(xiàn)標(biāo)志碼A
文章編號(hào)1001-0408( 2020)02-0238-08
DOI
10.6039/j .issn. 1001-0408.2020.02.21
摘要 目的:了解紅細(xì)胞作為載藥系統(tǒng)的研究進(jìn)展,以期為其相關(guān)研究和應(yīng)用提供參考。方法:以“紅細(xì)胞”“載藥體系”“Redblood cell”“"Erythrocyte”“Drug delivery system”等關(guān)鍵詞,對(duì)PubMed、Elsevier、中國(guó)知網(wǎng)等國(guó)內(nèi)外數(shù)據(jù)庫(kù)中收錄的于1960-2019年發(fā)表的文獻(xiàn)進(jìn)行單一或組合搜索,據(jù)此綜述紅細(xì)胞作為載藥系統(tǒng)的研究進(jìn)展。結(jié)果與結(jié)論:共檢索到相關(guān)文獻(xiàn)214篇,其中有效文獻(xiàn)70篇。紅細(xì)胞作為人體的內(nèi)源性成分,不需要通過(guò)合成就可作為天然的載藥體系。目前紅細(xì)胞的載藥方法包括滲透法、化學(xué)干擾法、電穿孔法、內(nèi)吞包埋法、電融合包埋法、脂質(zhì)體融合法等,其中滲透法又包括低滲稀釋法、改良低滲稀釋法、低滲溶血法、等滲滲透溶解法和低滲透析法等;此外,還可以采用紅細(xì)胞包載機(jī)或者將藥物偶聯(lián)到紅細(xì)胞膜上等方式。紅細(xì)胞作為藥物載體,可實(shí)現(xiàn)藥物靶向性遞送,延長(zhǎng)藥物在體內(nèi)的半衰期,增強(qiáng)藥物在體內(nèi)的穩(wěn)定性,提高藥物的生物相容性。目前,其已用于包載抗腫瘤藥、抗炎藥、鎮(zhèn)痛藥、抗感染藥、心血管系統(tǒng)藥物和免疫抑制劑等小分子藥物,還可包載部分大分子藥物和診斷劑等,被認(rèn)為是一種良好的藥物載體。但紅細(xì)胞載藥系統(tǒng)尚存在來(lái)源復(fù)雜、理化性質(zhì)不統(tǒng)一、載藥過(guò)程可能對(duì)紅細(xì)胞造成破壞、儲(chǔ)存過(guò)程中如何保持其生物活性等問(wèn)題。
關(guān)鍵詞 紅細(xì)胞;藥物載體;載藥系統(tǒng);細(xì)胞膜
大多數(shù)藥物都存在著一定的不良反應(yīng)及生物相容性差、半衰期短等缺點(diǎn)。為了克服這些缺點(diǎn),研究人員常采用改變藥物劑型的方式,例如使用合成類的載藥系統(tǒng)等。但是諸多合成材料生物相容性較差,且在降解期間會(huì)產(chǎn)生毒副產(chǎn)物[1],為此,研究者開始將人體內(nèi)源性物質(zhì)作為藥物載體進(jìn)行研究。近年來(lái),將紅細(xì)胞作為藥物載體受到了國(guó)內(nèi)外學(xué)者的廣泛關(guān)注。作為人體內(nèi)源性物質(zhì),紅細(xì)胞具有生物相容性良好、體內(nèi)半衰期長(zhǎng)等優(yōu)點(diǎn),并且由于成熟的紅細(xì)胞沒有細(xì)胞核,呈現(xiàn)兩側(cè)凹型的圓碟形,最薄處僅有1μm[2],這給物質(zhì)交換和藥物載入提供了很好的機(jī)會(huì)。但如何將藥物包載入紅細(xì)胞內(nèi),成為最為重要的研究熱點(diǎn)之一。近年來(lái),隨著對(duì)紅細(xì)胞載藥系統(tǒng)研究的深入,有不少研究報(bào)道了紅細(xì)胞的載藥方法及其應(yīng)用。為了解目前紅細(xì)胞載藥系統(tǒng)的研究進(jìn)展,筆者以“紅細(xì)胞”“載藥體系”“Red blood cell”“Erythro-cyte”“Drug delivery system”等為關(guān)鍵詞,對(duì)PubMed、Elsevier、中國(guó)知網(wǎng)等國(guó)內(nèi)外數(shù)據(jù)庫(kù)中收錄的于1960 -2019年發(fā)表的文獻(xiàn)進(jìn)行單一或組合搜索,結(jié)果共檢索到相關(guān)文獻(xiàn)214篇,其中有效文獻(xiàn)70篇?,F(xiàn)對(duì)紅細(xì)胞載藥遞送系統(tǒng)的相關(guān)研究進(jìn)行總結(jié)歸納,以期為該載藥體系的開發(fā)和應(yīng)用提供參考。
1 紅細(xì)胞載藥方法
1.1 滲透法
1.1.1 低滲稀釋法低滲稀釋法是將藥物載入紅細(xì)胞的一種最簡(jiǎn)單、最快速的方法。該方法用2~20倍體積含有藥物的溶液稀釋紅細(xì)胞,之后通過(guò)加入高滲緩沖液來(lái)恢復(fù)紅細(xì)胞膜的張力;然后離心,所得混合物棄去上清液,再用等滲緩沖液洗滌沉淀物,便可得到載有藥物的紅細(xì)胞[3]。但是該方法有著明顯的缺點(diǎn),例如包封率低,因?yàn)殡x心過(guò)程造成的大量血紅蛋白和其他細(xì)胞組分的損失使紅細(xì)胞遭到破壞,從而減少了紅細(xì)胞的載藥量和其在體內(nèi)的循環(huán)時(shí)長(zhǎng)。低滲稀釋法較常用于加載諸如半乳糖苷酶類、阿霉素和多功能納米粒等[4-6]。例如,繆婉琳等[5]采用低滲稀釋法,制備得到紅細(xì)胞同時(shí)裝載有磁性納米顆粒和阿霉素,將其回輸?shù)叫∈篌w內(nèi)之后,在外加磁場(chǎng)的作用下載體紅細(xì)胞可聚集到腫瘤部位。與游離的阿霉素相比,通過(guò)載體紅細(xì)胞給藥,可以抑制腫瘤細(xì)胞的生長(zhǎng),同時(shí)可以降低給藥劑量,從而減小藥物副作用。
1.1.2 改良低滲稀釋法該方法于1975年由Martin R首次提出,并由David J等對(duì)低滲稀釋法的載藥方式進(jìn)行了改良[7]。其原理和低滲稀釋法基本相同,不同的是,該方法通過(guò)梯度遞減、緩慢降低溶液滲透壓的方式,保證紅細(xì)胞腫脹形成小孔的同時(shí)不至于溶解;之后,通過(guò)低速離心回收腫脹的紅細(xì)胞,將小體積的水溶性藥物溶液通過(guò)小孔加載進(jìn)紅細(xì)胞內(nèi)。由于紅細(xì)胞膨脹緩慢,可使細(xì)胞質(zhì)成分得到很好的保留,因此紅細(xì)胞在進(jìn)入體內(nèi)后具有良好的存活率。該方法比低滲稀釋法更簡(jiǎn)單、快速,對(duì)紅細(xì)胞造成的損害較小。目前,使用該方法可包封在紅細(xì)胞中的藥物有長(zhǎng)春瑞濱和吉西他濱等[8-9]。例如,溫旭智[8]利用改良低滲透法建立了載長(zhǎng)春瑞濱的紅細(xì)胞載藥體系,其包載率為70.92%;該研究還評(píng)價(jià)了載藥紅細(xì)胞對(duì)人肺腺癌細(xì)胞株A549的抑制作用,結(jié)果顯示當(dāng)長(zhǎng)春瑞濱濃度為0.012 5、0.025 mg/mL時(shí),載長(zhǎng)春瑞濱紅細(xì)胞組的A549細(xì)胞增殖抑制率顯著高于長(zhǎng)春瑞濱裸藥組(P<0.05)。
1.1.3 低滲溶血法該方法是基于紅細(xì)胞具有特殊的可逆形狀變化能力,即由于紅細(xì)胞的表面積是固定的,因此其體積的增加(紅細(xì)胞體積可以增加25%~50%)可使其從雙凹形變?yōu)榍蛐?,?50 mOsm/kg的滲透壓下可保證紅細(xì)胞在膨脹的同時(shí)保持其完整性,此時(shí)紅細(xì)胞膜外形成200~500A的一些瞬時(shí)孔,可以釋放出細(xì)胞內(nèi)容物[10]]。Mambrini G等[11]采用該方法將地塞米松磷酸鈉(DSP)加載入紅細(xì)胞膜的內(nèi)部,主要包括3個(gè)步驟:(l)使用滲透壓180 mOsm/kg和pH 4.5~7.O的低滲溶液處理紅細(xì)胞,使其適當(dāng)腫脹;(2)使用滲透壓120 mOsm/kg和pH 4.5~7.O的低滲溶液處理紅細(xì)胞,使其進(jìn)一步的腫脹而形成“小孔”,再將紅細(xì)胞放入含有DSP的等滲溶液中,使得DSP通過(guò)小孔進(jìn)入紅細(xì)胞中;(3)使用滲透壓285 mOsm/kg和pH 7.4±1.2的磷酸鹽一肌苷一葡萄糖一丙酮酸鹽一腺嘌呤(PIGPA)高滲溶液將紅細(xì)胞的“小孔”封閉,封裝DSP并恢復(fù)紅細(xì)胞初始的滲透壓,從而制得載入DSP的紅細(xì)胞。Coker SA等[12]將制得的載DSP紅細(xì)胞進(jìn)行體內(nèi)藥動(dòng)學(xué)考察,對(duì)10名志愿者經(jīng)靜脈注射給藥后發(fā)現(xiàn),地塞米松的血藥濃度在th時(shí)達(dá)到峰值,并且在注射后14 d和35 d時(shí)仍然可以檢測(cè)到地塞米松的持續(xù)釋放。
1.1.4 等滲滲透溶解法該方法也稱為滲透壓脈沖法,主要是通過(guò)物理和化學(xué)方法實(shí)現(xiàn)紅細(xì)胞等滲溶血。紅細(xì)胞在具有高膜透性物質(zhì)的溶液中溫育時(shí),由于具有濃度梯度,溶質(zhì)會(huì)擴(kuò)散到細(xì)胞中,為了保持滲透平衡,此時(shí)大量的水也會(huì)流入紅細(xì)胞內(nèi),溶于水的藥物就會(huì)隨之進(jìn)入到紅細(xì)胞內(nèi)。目前,尿素、聚乙二醇和氯化銨等化合物的溶液已被用于等滲溶血[13-14]。早在1987年,F(xiàn)rancoRS等[15]開發(fā)了一種將紅細(xì)胞懸浮在二甲基亞砜(DMSO)等滲溶液中的方法,成功將肌醇六磷酸(IHP)載入到紅細(xì)胞中,其采用DMSO來(lái)平衡紅細(xì)胞懸浮液的滲透壓,然后用等滲IHP溶液快速稀釋來(lái)誘導(dǎo)滲透壓梯度的形成。由于IHP可與血紅蛋白結(jié)合并降低其對(duì)氧的親和力,因此該方法可用于制備用于臨床和實(shí)驗(yàn)中的低氧親和力紅細(xì)胞。與用磷酸鹽緩沖溶液(PBS)作為稀釋劑比較,IHP誘導(dǎo)血紅蛋白滲漏在稀釋后約Is內(nèi)完成,而PBS誘導(dǎo)滲漏的時(shí)間較長(zhǎng),約10~120 s,且容易導(dǎo)致紅細(xì)胞裂解。這項(xiàng)研究還表明,紅細(xì)胞經(jīng)過(guò)低濃度DMSO處理后,細(xì)胞膜的滲透性可達(dá)到90%以上。
1.1.5 低滲透析法1959年,Klibansky C等[16]首次提出了低滲透析法,該方法的原理是將具有半透膜性的紅細(xì)胞裂解后,重密封時(shí)可使細(xì)胞內(nèi)載入的大分子藥物到達(dá)最大量。低滲透析法的基本過(guò)程為:首先,將紅細(xì)胞懸浮液和藥物溶液混合,以達(dá)到所需的血細(xì)胞比容,然后將該混合物置于透析管中,用管線將透析管的兩端連接起來(lái),透析管內(nèi)部容積中留出接近25%的氣體空間,將透析管置于含有100 mL裂解液的錐形瓶中,并將錐形瓶放置在4℃恒溫的磁力攪拌器上進(jìn)行間歇攪拌;將透析管置于100 mL等滲的PBS溶液(25~30℃,pH 7.4)中進(jìn)行重密封;在4℃用冷PBS洗滌,由此獲得載藥的紅細(xì)胞[14]。該方法可以獲得較好的包封率。目前,研究者已運(yùn)用該方法將戊脒富拉霉素、白細(xì)胞介素2、去鐵胺、介孔二氧化硅納米粒子、雙膦酸鹽和抗生素等藥物包載入紅細(xì)胞中[17-22]。例如,Chen ZA等[20]合成了一系列直徑范圍為10~200 nm的熒光聚乙二醇化介孔二氧化硅納米粒子(MSN),并通過(guò)低滲透析的方法將其包封于人紅細(xì)胞中;根據(jù)熒光圖像和流式細(xì)胞儀分析,發(fā)現(xiàn)直徑低于30 nm的MSN可以成功地嵌入紅細(xì)胞內(nèi)。
1.2 化學(xué)干擾法
該方法的原理是:紅細(xì)胞暴露于某些化學(xué)物質(zhì)時(shí)細(xì)胞膜通透性將會(huì)顯著增加,使得藥物可以順利進(jìn)入紅細(xì)胞內(nèi)。Kitao T等[24]采用該方法將抗腫瘤藥物道諾霉素包載在人和小鼠紅細(xì)胞中。此外,LinW等[25]使用氟烷也可達(dá)到化學(xué)干擾的目的。但是,Ahur VM等[26]在研究中發(fā)現(xiàn),經(jīng)鉛處理的紅細(xì)胞的滲透性有所增加,但其滲透脆性也有所增加,所觀察到的紅細(xì)胞壽命較正常紅細(xì)胞有所縮短。因此,化學(xué)干擾法會(huì)對(duì)細(xì)胞膜引起不可逆的破壞[27],該方法的應(yīng)用并不廣泛。
1.3 電穿孔法
該方法也被稱為介電張力法,其原理是采用電擊引起紅細(xì)胞膜的變化:通過(guò)介電擊打從而擊穿紅細(xì)胞膜形成孔,電擊穿可能發(fā)生在脂質(zhì)區(qū)域或細(xì)胞膜中的脂質(zhì)蛋白質(zhì)連接處[28];隨后,在37℃的等滲溶液中溫育,孔被重新密封。實(shí)驗(yàn)證明,將電擊的條件設(shè)定為2 kV/cm的變化電壓、20 μs的極化時(shí)間,可使得紅細(xì)胞膜被介電擊穿,且孔形成的程度取決于懸浮介質(zhì)的電場(chǎng)強(qiáng)度、脈沖持續(xù)時(shí)間和離子強(qiáng)度[29]。該方法可包載的藥物包括伯氨喹、8.氨基喹啉、長(zhǎng)春堿、氯丙嗪和一些功能性納米粒等[29-31]。
Rao L等[29]在研究中證明了微流體電穿孔可以有效地促進(jìn)紅細(xì)胞一納米粒載體( CM-NP)的合成。該研究發(fā)現(xiàn),將Fe304磁性納米顆粒(MN)和紅細(xì)胞膜衍生的囊泡同時(shí)注入微流體裝置中,當(dāng)MN和紅細(xì)胞囊泡的混合物流過(guò)電穿孔區(qū)時(shí),電脈沖可以有效地促進(jìn)MN進(jìn)入紅細(xì)胞囊泡之中;之后,該團(tuán)隊(duì)又研究了該載體在大鼠體內(nèi)的抗腫瘤效果,結(jié)果發(fā)現(xiàn)由于MN核的優(yōu)異磁性和光熱性質(zhì)以及紅細(xì)胞囊泡具有的體內(nèi)長(zhǎng)循環(huán)特性,使得該載體可以有效地聚集于腫瘤部位;與空白組比較,該載體組大鼠體內(nèi)的腫瘤重量由600 mg以上減小至300 mg以下,可見通過(guò)電穿孔制備的CM-NP具有用于癌癥診斷和治療的潛力。
1.4 內(nèi)吞包埋法
Stanley SL等[32]于1987年首先報(bào)道了內(nèi)吞包埋法。該方法的基本操作是將1倍體積的紅細(xì)胞,加入9倍體積量的含有2.5 mmol腺嘌呤核苷三磷酸(ATP)、2.5mmol氯化鎂(MgCI2)和1 mmol氯化鈣(CaCI2)的緩沖液中,在室溫下孵育2 min,使紅細(xì)胞膜上形成孔;之后于37℃下在154 mmol/L氯化鈉(NaCI)藥物溶液中溫育2min,使得孔被重新密封,藥物通過(guò)內(nèi)吞作用被包載入紅細(xì)胞內(nèi)[33]。該方法的優(yōu)點(diǎn)是:從紅細(xì)胞膜上分離的囊泡膜可將藥物與細(xì)胞質(zhì)分離,從而保護(hù)藥物免受紅細(xì)胞內(nèi)環(huán)境的影響。目前通過(guò)該方法包載進(jìn)紅細(xì)胞的藥物包括:普萘洛爾、丁卡因和維生素A等[31, 34-35]。例如HarisaG等[36]通過(guò)內(nèi)吞包埋法成功將普伐他汀載人人紅細(xì)胞中,同時(shí)發(fā)現(xiàn),當(dāng)普伐他汀濃度為10 mg/mL時(shí),紅細(xì)胞的載藥量在37℃的條件下可達(dá)到最大,為0.069 mg/mL;當(dāng)普伐他汀濃度為4 mg/mL時(shí),在37℃條件下,包封率達(dá)到最大(94%),并且細(xì)胞回收率可以達(dá)到87%~93%。該研究還發(fā)現(xiàn),載有普伐他汀的紅細(xì)胞的血液學(xué)參數(shù)和滲透脆性行為與天然紅細(xì)胞相似;掃描電子顯微鏡顯示載紅細(xì)胞形態(tài)沒有明顯變化。這表明,該方法對(duì)紅細(xì)胞本身結(jié)構(gòu)并無(wú)影響,載藥物紅細(xì)胞可能具有與正常細(xì)胞相同的壽命。
1.5 電融合包埋法
該方法是指先將藥物分子包載到紅細(xì)胞膜(血影細(xì)胞)中,然后將這些載藥血影細(xì)胞黏附到靶細(xì)胞上,通過(guò)與靶細(xì)胞的融合完成包埋藥物的釋放,施加電脈沖還可以加強(qiáng)、加快融合的過(guò)程[36]。目前,已有研究將特異性單克隆抗體細(xì)胞加載到血影細(xì)胞上,載藥紅細(xì)胞可以通過(guò)與靶細(xì)胞表面的特異性受體蛋白進(jìn)行特異性結(jié)合,從而將細(xì)胞導(dǎo)向靶細(xì)胞[37]。Li LH等[38]通過(guò)電融合包埋法實(shí)現(xiàn)了不同尺寸細(xì)胞之間的高效電融合。該團(tuán)隊(duì)在特別設(shè)計(jì)的離心一電融合室中,以700 9的轉(zhuǎn)速連續(xù)離心形成5層沉淀,從而實(shí)現(xiàn)將較大的靶細(xì)胞堆疊在較小的血影細(xì)胞中。該研究發(fā)現(xiàn),以80 μs、300V的電脈沖使沉淀物進(jìn)行混合,可以得到80%以上的融合效果,并且電融合后細(xì)胞活力保持在80%以上。這種高效融合技術(shù)可用于介導(dǎo)藥物和基因轉(zhuǎn)移至靶細(xì)胞,并用來(lái)制備細(xì)胞來(lái)源有限的雜交細(xì)胞。
1.6 脂質(zhì)體融合法
該方法的基本原理是:含有藥物的脂質(zhì)囊泡可以直接與人紅細(xì)胞融合,從而使得脂質(zhì)囊泡中的藥物分子直接包載入紅細(xì)胞中[39]。例如有研究者將載IHP的單層脂質(zhì)囊泡通過(guò)與紅細(xì)胞融合將IHP包埋入紅細(xì)胞內(nèi)[40]。IHP可以與血紅蛋白緊密結(jié)合,由于IHP降低了血紅細(xì)胞與氧氣的結(jié)合能力,因此通過(guò)該方法可使紅細(xì)胞的氧氣釋放能力增加至正常值的270%,并且由于玻爾效應(yīng)的增大,也增加了人體二氧化碳的傳輸;同時(shí),該研究證明脂質(zhì)囊泡的摻入并未對(duì)紅細(xì)胞的精細(xì)結(jié)構(gòu)有所損傷。但是由于脂質(zhì)體的粒徑過(guò)大,并且與紅細(xì)胞膜的相容性不好,使得融合率較低,因此該方法的藥物包封率極低,僅能達(dá)到1%[41]。
1.7 使用紅細(xì)胞包載機(jī)
Magnani M等[42]開發(fā)了一種將非擴(kuò)散性藥物包埋入紅細(xì)胞的新方法,即“紅細(xì)胞包載機(jī)”。該方法用50 mL的血液樣品,于室溫條件下,在2h內(nèi)可以將不同的生物活性化合物包載到紅細(xì)胞中。該過(guò)程需要連續(xù)兩次使用低滲溶液洗滌紅細(xì)胞,然后用血濾器濃縮,再通過(guò)等滲溶液對(duì)紅細(xì)胞進(jìn)行重新密封。其載藥量可達(dá)到30%,細(xì)胞回收率為35%~50%。
1.8 將藥物偶聯(lián)到紅細(xì)胞上
目前所有的紅細(xì)胞載藥方法尤其是電穿孔法,都或多或少會(huì)對(duì)紅細(xì)胞膜的性質(zhì)造成影響,進(jìn)而影響紅細(xì)胞一藥物復(fù)合物的生物相容性、半衰期等。開發(fā)無(wú)損的藥物包載方式,是當(dāng)前迫切需要解決的問(wèn)題?;谶@種想法,研究者開發(fā)了將藥物偶聯(lián)到紅細(xì)胞表面的載藥方法。Skorokhod OA等[43]用戊二醛將柔紅霉素偶聯(lián)到紅細(xì)胞上,并在14名白血病患者身上進(jìn)行初步臨床試驗(yàn),對(duì)其藥動(dòng)學(xué)特征和耐藥性等進(jìn)行了研究。結(jié)果發(fā)現(xiàn),靜脈給藥后,其藥物的峰濃度和消除率低于游離的柔紅霉素,且患者耐受性良好;在接受3次載藥紅細(xì)胞輸注的9名患者中,副作用發(fā)生的頻率低于使用游離柔紅霉素治療的患者。Muzykantov VR等[44]將鏈激酶偶聯(lián)到紅細(xì)胞上,連接效率可達(dá)90%,平均每個(gè)紅細(xì)胞上可附著約5X105個(gè)鏈激酶分子;該復(fù)合物能夠溶解血管內(nèi)的纖維蛋白凝塊,以用來(lái)預(yù)防血管手術(shù)時(shí)血栓的形成。Muller M等[45]將巰基化的低分子量肝素通過(guò)一種偶聯(lián)試劑連接到紅細(xì)胞上,該復(fù)合物也有著長(zhǎng)期抗凝和預(yù)防血栓的潛能。Brenner JS等[46]則開發(fā)了“紅細(xì)胞搭便車”(Redblood cell-hitchhiking)技術(shù),將藥物制備成納米顆粒,再將納米顆粒吸附到紅細(xì)胞上,然后通過(guò)靜脈注射或者動(dòng)脈血管插管的方式,將載藥紅細(xì)胞輸注給患者,可實(shí)現(xiàn)多個(gè)器官的靶向功能。
2 紅細(xì)胞作為藥物載體的優(yōu)點(diǎn)
由于紅細(xì)胞自身的一些性質(zhì),其載藥后可發(fā)揮諸多功能,包括增強(qiáng)藥物的靶向性,延長(zhǎng)藥物在體內(nèi)的半衰期,同時(shí)還能減少藥物的不良反應(yīng)等。
2.1 實(shí)現(xiàn)藥物靶向性遞送
當(dāng)紅細(xì)胞膜表面的性質(zhì)發(fā)生變化,在體內(nèi)經(jīng)過(guò)脾、肝、肺等器官時(shí)可以被網(wǎng)狀內(nèi)皮系統(tǒng)識(shí)別和吞噬,因此紅細(xì)胞可以作為人體內(nèi)源性的網(wǎng)狀內(nèi)皮系統(tǒng)天然靶向載體[47]。最早關(guān)于紅細(xì)胞網(wǎng)狀內(nèi)皮系統(tǒng)靶向性的報(bào)道是在20世紀(jì)80年代末,由SuyamaK和TanemuraA等人將人、貓和鼠類的免疫缺陷病毒(即HIV-1、FIV、LP-BM5)選擇性抑制劑的磷酸化核苷類似物分別包載人人、貓和小鼠的紅細(xì)胞中,可以直接作用于巨噬細(xì)胞。通過(guò)體外和體內(nèi)分析發(fā)現(xiàn),包封人哺乳動(dòng)物紅細(xì)胞中的磷酸化核苷類似物非常穩(wěn)定,并可有效地被遞送到巨噬細(xì)胞中,從而通過(guò)逆轉(zhuǎn)錄病毒感染的方式保護(hù)巨噬細(xì)胞[48-50]。
紅細(xì)胞除了對(duì)網(wǎng)狀內(nèi)皮系統(tǒng)具有靶向性之外,還可以通過(guò)磁化紅細(xì)胞實(shí)現(xiàn)其他部位的靶向性。目前,關(guān)于此項(xiàng)研究的方向以抗腫瘤藥物為主??鼓[瘤藥物由于在抑制/殺死腫瘤細(xì)胞的同時(shí)還可作用于正常細(xì)胞從而引起不良反應(yīng),而使用磁化的紅細(xì)胞載藥可以解決這一問(wèn)題。例如吳江等[51]通過(guò)電穿孔法使用納米級(jí)的Fe304磁流體用來(lái)制備磁化紅細(xì)胞和磁化載多柔比星紅細(xì)胞,在體外磁場(chǎng)的引導(dǎo)下,磁化載多柔比星紅細(xì)胞可以準(zhǔn)確地作用于腫瘤細(xì)胞,使用較少的劑量即可起到常規(guī)化療劑量的效果。
2.2 延長(zhǎng)藥物在體內(nèi)的半衰期
正常的紅細(xì)胞半衰期為26d,將藥物包載入紅細(xì)胞內(nèi)可以顯著延長(zhǎng)藥物在體內(nèi)的半衰期?;艟52]分別向大鼠注射載有甲氨蝶呤的紅細(xì)胞和游離甲氨蝶呤,藥動(dòng)學(xué)分析結(jié)果顯示,游離的甲氨蝶呤在體內(nèi)的代謝符合三室模型,消除半衰期為(3.9±0.8)h,而載甲氨蝶呤的紅細(xì)胞在體內(nèi)的代謝符合二室模型,消除半衰期為(13.5±2.0)h。吳江等[51]對(duì)長(zhǎng)春新堿進(jìn)行了相似的對(duì)比研究,結(jié)果顯示,游離長(zhǎng)春新堿半衰期為1.53 h,而載長(zhǎng)春新堿紅細(xì)胞在體內(nèi)半衰期為4.1 h,為前者的2.68倍。
2.3 增強(qiáng)藥物在體內(nèi)的穩(wěn)定性,降低免疫系統(tǒng)對(duì)藥物的免疫活性
由于藥物被包載入紅細(xì)胞內(nèi)后,在來(lái)自人體內(nèi)源性的紅細(xì)胞內(nèi)形成了一個(gè)相對(duì)隔離的空間,從而保護(hù)藥物不受體內(nèi)內(nèi)源性物質(zhì)干擾,提高了藥物在體內(nèi)的穩(wěn)定性。而一些外源性的大分子藥物,如蛋白質(zhì)、酶等,直接進(jìn)入體內(nèi)大多會(huì)引起免疫反應(yīng)。Bernhardt I等[53]使用紅細(xì)胞來(lái)運(yùn)輸1一天冬酰胺酶,對(duì)單劑量l一天冬酰胺酶包載于紅細(xì)胞后的釋藥特征進(jìn)行了評(píng)價(jià)。結(jié)果顯示,藥物的半衰期明顯延長(zhǎng):當(dāng)注射劑量為30 IU/kg時(shí),1一天冬酰胺酶在10 d內(nèi)可被清除;而如果注射劑量提高到150~200 IU/kg時(shí),其作用可延長(zhǎng)至50 d。該研究未測(cè)得有害的免疫反應(yīng)發(fā)生,這也證明了紅細(xì)胞載1一天冬酰胺酶可以有效降低免疫系統(tǒng)對(duì)藥物的免疫活性。
2.4 提高藥物的生物相容性,減小不良反應(yīng)
紅細(xì)胞作為人體內(nèi)源性物質(zhì),不存在生物不相容的問(wèn)題,并且在體內(nèi)降解后也不會(huì)產(chǎn)生有害物質(zhì)。一些較為敏感的人群靜脈注射納米制劑類藥物時(shí)會(huì)引起心肺方面的不良反應(yīng),而Wibroe PP等[54]將聚苯乙烯材料的納米制劑黏附于紅細(xì)胞表面后,有效地避免了巨噬細(xì)胞對(duì)納米制劑的識(shí)別,從而減小了藥物對(duì)患者心肺功能的不良反應(yīng)。
3 紅細(xì)胞載藥遞送系統(tǒng)的常見用途
3.1 包載小分子藥物
3.1.1 抗腫瘤藥物 目前,由于腫瘤的高發(fā)性,紅細(xì)胞載抗腫瘤藥物的研究日益廣泛。常見的抗腫瘤藥物,如長(zhǎng)春新堿、甲氨蝶呤、紫杉醇和多柔比星,均可見采用紅細(xì)胞包載的相關(guān)報(bào)道[55-58]。載腫瘤藥物的紅細(xì)胞可以發(fā)揮紅細(xì)胞的諸多優(yōu)點(diǎn)。例如ZarrinA等[58]將載多柔比星的紅細(xì)胞與傳統(tǒng)給藥進(jìn)行比較,發(fā)現(xiàn)前者體內(nèi)藥物濃度一時(shí)間曲線下面積(AUC)是傳統(tǒng)給藥方式的5倍;Yu-an SH等[56]比較了載甲氨蝶呤的紅細(xì)胞(MTK-RBCs)與游離甲氨蝶呤的藥動(dòng)學(xué)參數(shù),結(jié)果顯示游離甲氨蝶呤的t1/2為(3.9±0.8)h,而MTK-RBCs的t1/2為(13.5±2.0)h,并且后者的平均滯留時(shí)間(MRT)也由(5.7±1.2)延長(zhǎng)到(19.5±5.9)h。這說(shuō)明,經(jīng)過(guò)紅細(xì)胞包載的甲氨蝶呤在體內(nèi)的半衰期較傳統(tǒng)給藥方式明顯延長(zhǎng)。
3.1.2 抗炎藥物對(duì)于炎性疾病的治療,Millan CG等[59]研究了紅細(xì)胞載皮質(zhì)類固醇和抗生素來(lái)實(shí)現(xiàn)低劑量給藥以減少藥物的毒副作用。Coker SA等[12]將地塞米松-21-磷酸(地塞米松的非擴(kuò)散性前藥)載入紅細(xì)胞中,其在紅細(xì)胞中可被常駐酶轉(zhuǎn)化為具有可擴(kuò)散活性的地塞米松(DSP),從而實(shí)現(xiàn)藥物的緩慢釋放。該研究表明,患者在單次靜脈輸注載地塞米松紅細(xì)胞后,35 d內(nèi)可檢測(cè)到地塞米松的持續(xù)釋放。
3.1.3 鎮(zhèn)痛藥物駱璇等[60]比較了冠狀動(dòng)脈旁路移植術(shù)患者應(yīng)用紅細(xì)胞載嗎啡(RBC-M)溶液與0.01%游離嗎啡的鎮(zhèn)痛效果,分別于患者術(shù)前、鎮(zhèn)痛前及鎮(zhèn)痛開始后1、2、3、8、12、24、36、48 h時(shí)對(duì)其疼痛、鎮(zhèn)靜和舒適狀態(tài)進(jìn)行評(píng)分。結(jié)果顯示,與游離嗎啡組比較,RBC-M組患者在鎮(zhèn)痛開始后2h內(nèi)疼痛感降低,鎮(zhèn)靜效果增強(qiáng);RBC-M溶液的藥動(dòng)學(xué)模型為二室模型,半衰期為15.37h,清除率為2.1 mL/(kg.min),穩(wěn)態(tài)表觀分布容積為0.088 L/kg,AUC為7 911.6 ng.h/mL。這表明,RBC-M與游離嗎啡相比更為有效。
3.1.4 抗感染藥物Alanazi FK等[61]通過(guò)胞吞作用將抗瘧藥物伯氨喹載入紅細(xì)胞中,結(jié)果表明,在伯氨喹的藥物濃度為8 mg/mL時(shí)具有較高的載藥量。與未載藥的紅細(xì)胞相比,該藥物濃度下載藥紅細(xì)胞的谷胱甘肽含量下降。這使得紅細(xì)胞膜脂質(zhì)和蛋白質(zhì)更易于氧化修飾,從而使得載伯氨喹的紅細(xì)胞更易被網(wǎng)狀內(nèi)皮器官識(shí)別而起到靶向作用,同時(shí)可使藥物的釋放時(shí)間延長(zhǎng)到18 h以上。
3.1.5 心血管系統(tǒng)藥物Harisa GI等[62]采用低滲透析法將普伐他汀載入到紅細(xì)胞中:將普伐他汀溶于0.6%的NaCI溶液,在10 mg/mL的藥物濃度下孵育th可以達(dá)到34%的包封率;體外溶出實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,普伐他汀在磷酸鹽緩沖液(PBS)中23 h后的釋放率為83%。這表明,普伐他汀成功地被包埋在紅細(xì)胞中,且可以有效延長(zhǎng)其釋放。
3.1.6 免疫抑制劑 環(huán)孢菌素A(CsA)和他克莫司(FK506)具有免疫抑制活性,能夠改善器官移植導(dǎo)致的排斥反應(yīng),但其生物利用度較低,且具有較高的毒性。Biagiotti S等[63]將紅細(xì)胞作為藥物遞送系統(tǒng)以改變兩者的藥動(dòng)學(xué)行為,并達(dá)到抑制毒性的目的。其通過(guò)低滲透析和等滲重新密封程序?qū)sA和FK506加載到紅細(xì)胞中。結(jié)果表明,由于相應(yīng)的靶蛋白的靶向作用,上述兩種免疫抑制劑可被捕獲到紅細(xì)胞中,并可有效地抑制人體免疫器官產(chǎn)生的特異性免疫反應(yīng)。這表明,該紅細(xì)胞載藥系統(tǒng)可作為潛在的免疫抑制劑藥物遞送系統(tǒng)。
3.2 包載大分子藥物
目前紅細(xì)胞載藥系統(tǒng)包載的大分子藥物主要有酶、蛋白質(zhì)以及核酸等。紅細(xì)胞載藥系統(tǒng)可以解決一些大分子藥物本身固有的諸如半衰期短、藥物毒性、過(guò)敏反應(yīng)等問(wèn)題。例如He H等[64]使用膜轉(zhuǎn)位低分子量魚精蛋白(IMWP)在紅細(xì)胞中加載l一天冬酰胺酶,結(jié)果發(fā)現(xiàn)載藥紅細(xì)胞的表面形態(tài)與正常紅細(xì)胞沒有差異,可以通過(guò)控制給藥劑量,有效地延長(zhǎng)1一天冬酰胺酶在體內(nèi)的作用時(shí)間,其緩釋時(shí)長(zhǎng)可以控制在10~50 d。除此之外,如尿激酶、葡萄糖氧化酶和己糖激酶,也被用于紅細(xì)胞載藥的研究中[65]。另外,纖溶酶原激活劑(PA)通過(guò)抗原一抗體結(jié)合或抗生物素蛋白一生物素橋的方式可與紅細(xì)胞形成偶聯(lián)復(fù)合物( RBC-PA) [66-67],有助于延長(zhǎng)藥物的體內(nèi)循環(huán)時(shí)間,增強(qiáng)生物利用度。
3.3 包載診斷劑等其他藥物
除了藥物之外,紅細(xì)胞還可用于包載核磁共振成像造影劑等診斷性藥物,如磁共振成像(MRI)造影劑,超順磁性氧化鐵(SPIO)、超小型超順磁性氧化鐵(USPIO)納米粒等[68]。有研究利用結(jié)合到人紅細(xì)胞中的金納米顆粒(AuNPs)的高X射線吸收特性,用于實(shí)現(xiàn)對(duì)血流動(dòng)態(tài)運(yùn)動(dòng)情況的觀察[69]。該研究表明,AuNPs具有更好的空間分辨率和更強(qiáng)的血流圖像對(duì)比度。
4 結(jié)語(yǔ)
盡管與傳統(tǒng)的載藥系統(tǒng)相比,紅細(xì)胞載藥系統(tǒng)存在著諸多優(yōu)勢(shì),但其仍有一些不足之處,其中最關(guān)鍵的問(wèn)題就是紅細(xì)胞的存儲(chǔ)和來(lái)源[70]。由于紅細(xì)胞來(lái)源于人體,自身就有著個(gè)體差異性,很難做到理化性質(zhì)的統(tǒng)一;其次,紅細(xì)胞載藥過(guò)程中對(duì)紅細(xì)胞的破壞是另一大問(wèn)題;再次,如何保持紅細(xì)胞在儲(chǔ)存過(guò)程中的生物活性也是亟待解決的問(wèn)題。但是隨著相關(guān)研究的深入,在不久的將來(lái)這些問(wèn)題都有望解決,紅細(xì)胞載藥體系在臨床應(yīng)用方面具有很可觀的潛力。
參考文獻(xiàn)
[1] LUCAS A.LAM D.CABRALES P.Doxorubicin-10adedred blood cells reduced cardiac toxicity and preserved anti-cancer activity[J].Drug Deliv,2019,26(1):433-442.
[2]唐華非,李霞,貢聯(lián)兵.紅細(xì)胞載藥體系研究現(xiàn)狀[J].中國(guó)醫(yī)院用藥評(píng)價(jià)與分析,2011,11(10):959-960.
[3]
IHLER GM,TSANG CW. Hypotonic hemolysis methodsfor entrapment of agents in resealed erythrocytes[J]. Me-thod Enzvmol, 1987, 149(1):221-229.
[4] DELOACH JR, HARRIS RL, IHLER GM. An erythrocyteencapsulator dialyzer used in preparing large quantities oferythrocyte ghosts and encapsulation of a pesticide inerythrocyte ghosts[J]. Anal Biochem,1980,102(1):220- 227.
[5]繆婉琳.鼠源紅細(xì)胞裝載阿霉素與磁性納米顆粒用于靶向治療腫瘤的研究[D].南京:東南大學(xué),2016.
[6]陳伯瑋,史澍睿,萬(wàn)國(guó)運(yùn),等.多功能納米紅細(xì)胞載藥體系構(gòu)建及其光熱/光動(dòng)力效應(yīng)[J].國(guó)際生物醫(yī)學(xué)工程雜志,2018,41(1):32-37.
[7]
GOEL V, KAUR C, DEVI R, et al.Nautiyal resealed ery-throcytes a specified tool in novel drug delivery system:areview [J]. Int,Pharm Med Res,2017,5(1):420-429.
[8]溫旭智.載長(zhǎng)春瑞濱紅細(xì)胞載藥體系的建立及其體外評(píng)價(jià)[D].南京:東南大學(xué),2015.
[9]席蕓,負(fù)載吉西他濱的紅細(xì)胞載藥系統(tǒng)的建立及體外抗腫瘤作用評(píng)價(jià)[D].南京:東南大學(xué),2014.
[10]
GATKAL SH, GAIKWAD NM, PATIL PM, et al. Re-sealed erythrocytes:a novel drug delivery system[J]. Int J,Pharm Sci Rev Res,2012,12(2):42-50.
[11]
MAMBRINI G, MANDOLINl M, ROSSI L, et al.Ex vi-vo encapsulation of dexamethasone sodium phosphate in-to human autologous erythrocytes using fully automatedbiomedical equipment[J]. Int J ,Pharm,2016, 517 (1):175-184.
[12]
COKER SA, SZCZEPIORKOWSKl ZM, SIEGEL AH, eta1.A study of the pharmacokinetic properties and the in vi-vo kinetics of erytluocytes loaded with dexamethasone so-dium phosphate in healthy volunteers[J]. Teansfus MedRev,2018, 32(2):102-110.
[13] SAHDEV AK, SETHI B.Important role, isolation and ba-sic concept of resealed erythrocytes[J]. RJPT, 2019, 12(5):2603-2611.
[14] KUMARI R, PANDA PD, SINGH R, et al. Resealederythrocyte: an approach to targeted drug delivery[J]. To Chem.j,2018, 1(1):1-11.
[15]
FRANCO RS, BARKER R, NOVICK S,et al.Effect ofinositol hexaphosphate on the transient behavior of redcells following a DMSO-induced osmotic pulse[J].., CellPhysiol, 1986, 129(2):221-229.
[16]
KLIBANSKY C, KATCHALSKY A. The penetration ofalbumin and hemoglobin in the erythrocytes during hemo-lysis[J]. Pathol Biol, 1960,8(5):2005-2014.
[17] DE FA, BENATTl U,GUIDA L, et al. Encapsulation ofadriamycin in human erythrocytes[J].PNatl Acad SciUSA ,1986, 83(18): 7029-7033.
[18]
DELOACH JR, ANDREWS K, SHEFFIELD CL, et al.Subcutaneous administration of [35-S] r-lL-2 in mice ca-mer erytluocytes : alteration of IL-2 pharmacokinetics[J].Adv Biosci, 1987 , 67 ( 12) : 183-190.
[19]
JRADE M , VILLEREAL MC , BOYNARD M, et al. Rheo-logical approach to human red blood cell carriers desferriox-anune encapsulation[J]. Adv Biosci, 1987 , 67 ( 12) : 29-36.
[20]
CHEN ZA, WU SH, CHEN PL, et al. Critical features formesoporous silica nanoparticles encapsulated into erythro-cytes[J] . ACS Appl Mater Inter , 20 19 , I I ( 5 ) : 4790-4798.
[21]
RAFFAELLA S, ANTONELLA A, SERAFINA B, et al.Macrophage depletion by free bisphosphonates and zole-dronate-loaded red blood cells[J]. PIoS One , 2014 , 9 ( 6) :1-12.
[22] WANG PY, WANG XD , LUO Q , et al. Fabrication of redblood cell-based multimodal theranostic probes for secondnear-infrared window fluorescence imaging-guided tumorsurgery and photodynamic therapy[J]. Theranostics , 2019 ,9(2) : 369-380.
[23]
DEUTICKE B, KIM M,ZOLLNER C. The influence ofamphotericin B on the permeability of mammalian eryth- rocytes to nonelectrolytes , anions and cations[J]. BBA-Bio- membranes , 1973 , 318( 3) : 345-359.
[24]
KITAO T, HATTORI K, TAKESHITA M. Agglutinationof leukemic cells and daunomycin entrapped erythrocyteswith lectin in vitro and in vivo[J]. Experientia, 1978, 34( 1) : 94-95.
[25]
LIN W,F(xiàn)REITAS DMD , ZHANG Q, et al. Nuclear mag-netic resonance and oxygen affinity study of cesium bin-ding in human erythrocytes[J]. Arch Biochem Biophys,1999 , 369 ( 1) : 78-88.
[26]
AHUR VM, ANIKA SM, UDEM SC. Perturbations oferythrocyte membrane integrity by subchronic low-levellead exposure in New Zealand white rabbits[J]. J Clin Pathol, 2018, 27(4) : 893-900.
[27]
SOLANKI D. Resealled erythrocytes : a biocarriarfor drugdelivery[J]. JPharmPharm Sci, 2017 , 129 (4) : 836-852.
[28]李小曼,萬(wàn)利杰,王曉娟,脈沖電場(chǎng)在醫(yī)學(xué)中的基礎(chǔ)研究及電穿孔的臨床應(yīng)用 [J].現(xiàn)代生物醫(yī)學(xué)進(jìn)展 , 2017, 17( 6 ) : 195 .1190-1193 .1186.
[29]
RAO L, CAI B, BU L L, et al. Microfluidic electropora-tion-facilitated synthesis of erythrocyte membrane-coated magnetic nanoparticles for enhanced imaging-guided can- cer therapy [J]. A CS Nano , 2017 , 11( 4) : 3496-3505.
[30]
CONNOR J, SCHROIT AJ. Red blood cell recognition bythe reticuloendothelial system[J]. Adv Biosci, 1987, 67(12) :163-171.
[31] SELVAMANl P , LATHA S , MONISHA A, et al. A reviewon resealed erythrocyte as a novel drug delivery sys-tem[J]. Asian J Pharm Clin Res , 2015 ,8(4 ) : 101-107.
[32]
SCHRIER SL. Drug-induced endocytosis and entrapmentin red cells and ghosts[J]. Methods Enzymol, 1987, 149(1) : 260-270.
[33]
MISHRA A, KESHARWANl R, TIWARI AK, et al. Re-sealed erythrocytes : an engineering approach for drug de-livery and drug targeting[J]. J Chem Pharma Res , 2016 , 8( 5) : 376-384.
[34]
ALVAREZFIGUEROA MJ, BLANCOMACNDEZ J.Transdermal delivery of methotrexate: iontophoretic de-livery from hydrogels and passive delivery from microe- mulsions [J]. Int JPharm , 2001 , 215( 1) : 57-65.
[35]
HARISA G , lBRAHIM MF , ALANAZl FK. Characteriza-tion of human erythrocytes as potential carrier for pravas-tatin : an in vitro study [J]. Int J Med Sci, 2011 , 8 ( 3) : 222-230.
[36] BALASUBRAMANIAN J, NARAYANAN N , KUMARV Resealed erythrocytes: a novel drug carrier in drug de-livery[J]. Drug Discov, 2012 , 2( 6) : 30-32.
[37]
HAMIDI M, TAJERZADEH H, DEHPOUR AR, et al. Invitro characterization of human intact erythrocytes loadedby enalaprilat[J]. J Toxicol Sci, 2001 , 8 (4 ) : 223-230.
[38]
11 LH, HENSEN ML , ZHAO YL , et al. Electrofusion be-tween heterogeneous-sized mammalian cells in a pellet:potential applications in drug delivery and hybridoma for-mation[J]. Biophys J, 1996 , 71 ( I ) : 479-486.
[39]
JAIN T, ADHAV R, VASWANI P. Erythrocytes as drug delivery system: a boon to cure[J]. Int Res J Pure ApplChem, 2015 , 1( 1) : 21-26.
[40]
NICOLAU C, GERSONDE K. Incorporation of inositolhexaphosphate into intact red blood cells[J]. Naturwissen-schaften, 1979, 66(11) : 563-566.
[41] JAITELY V , KANAUJIA P, VENKATESAN N, et al. Re-sealed erythrocytes : drug carrier potentials and biomedicalapplications[J]. Indian Drugs , 1996 , 33 ( 12 ) : 589-594.
[42]
MAGNANI M, ROSSI L , D ' ASCENZO M, et al. Erythro-cyte engineering for drug delivery and targeting[J]. Bio-thchnol Appl Bioc , 1998 , 28 ( I ) : 1-6.
[43]
SKOROKHOD OA, VITVITSKY VM, ISAEV VG, et al.Pharmacokinetics of erythrocyte-bound daunorubicin inpatients with acute leukemia[J]. Med Sci Monitor, 2004,10(4) :155-164.
[44] MUZYKANTOV VR, CHRISTOFIDOU-SOLOMIDOU M , BALYASNIKOVA I, et al. Streptavidin facilitates inter-nalization and pulmonary targeting of an anti-endothelialcell antibody (platelet-endothelial cell adhesion molecule1) : a strategy for vascular immunotargeting of drugs[J].Proc Natl Acad Sci USA , 1999 , 96( 5 ) : 2379-2384.
[45]
MULLER M, BUCHI L, WOODTLI K, et al. Preparationand characterization of "heparinocytes" : erythrocytes withcovalently bound low molecular weight heparin[J]. FEBSLetters, 2000 ,468( 2) : 115-119.
[46] BRENNER JS, PAN DC, MYERSON JW, et al. Redblood cell-hitchhiking boosts delivery of nanocarriers tochosen organs by orders of magnitude[J]. Nature Com-mun, 2018, 9( 1) : 1-14.
[47]
VILLA CH, ANSELMO AC , MITRAGOTRI S , et al. Redblood cells: supercarriers for drugs, biologicals, andnanoparticles and inspiration for advanced delivery sys-tems[J]. Adv Drug Deliv Rev, 2016, 106(11):88- 103.
[48]
SUYAMA K, KAWASAKI Y, MIYAZAKl K, et al.Theefficacy of recombinant human soluble thrombomodulinfor the treatment of shiga toxin-associated hemolytic ure-mic syndrome model mice[J]. Nephrol Dial Transpl,2015, 30(6):969-977.
[49] TANEMURA A, KURIYAMAN,AZUMI Y, etal.Throm-bomodulin administration attenuates ischemia-reperfusioninjury of the remnant liver after 70% hepatectomy in rats:simulated model of small-for-size graft in living donor li—ver transplantation[J]. Transpl P, 2014, 46 (4): 1107-1111.
[50]
IKEZOE T,YANG J, NISHIOKA C,et al.Thrombomodu-lin alleviates murine GVHD in association with an in-crease in the proportion of regulatory T cells in thespleen[J]. Bone Marrow Transpl,20 15,50(1):113- 120.
[51]吳江,錢寶華,長(zhǎng)春新堿載體紅細(xì)胞制備及性能的實(shí)驗(yàn)研究[D].上海:第二軍醫(yī)大學(xué).2004.
[52]霍晶.甲氨蝶呤紅細(xì)胞載體的制備及在大鼠體內(nèi)藥代動(dòng)力學(xué)研究[D].南京:南京中醫(yī)藥大學(xué),2008.
[53]
BERNHARDT I,ELLORY JC. Red cell membrane lrans-port in health and disease[M]. Second Edition Berlin:Springer Science& Business Media, 2013: 373-405.
[54]
WIBROE PP, ANSELMO AC, NILSSON PH, et al.By-passing adverse injection reactions to nanoparticlesthrough shape modification and attachment to erythro-cytes[J]. Nature Nanotechnol, 20 17,12(6):589-594.
[55]張?jiān)?,楊?yáng),翟美芳.T7肽修飾的載長(zhǎng)春新堿低密度脂蛋白納米粒的制備及腦膠質(zhì)瘤靶向性和治療作用評(píng)價(jià)[J].藥學(xué)學(xué)報(bào),2018,53(3):460-466.
[56]
YUAN SH, GE WH, HUO J, et al.Slow release propertiesand liver-targeting characteristics of methotrexate erythro-cyte carriers.[J]. Fund Clin Pharmacol, 2009, 23 (2):189-196.
[57] 任偉.融合蛋白ANTl-EGFR-IRGD修飾的負(fù)載紫杉醇的紅細(xì)胞膜納米粒子的構(gòu)建及其對(duì)食管癌的放療增敏作用與機(jī)制[D].南京:南京醫(yī)科大學(xué),2018.
[58] ZARRIN A,F(xiàn)OROOZESH M, HAMIDI M. Carrier eryth-rocytes: recent advances, present status, current trends andfuture horizons[J]. Expert Opin Drug Del, 2014,11(3):433-447.
[59]
MILLaN CG, CASTANEDA AZ, LOPEZ F G, et al.En-capsulation and in vitro evaluation of amikacin-loadederythrocytes[J]. Drug Deliv, 2005, 12(6):409-416.
[60]駱璇,汪小海,徐鑫,等,冠脈搭橋術(shù)病人紅細(xì)胞包蔽嗎啡溶液術(shù)后鎮(zhèn)痛的可行性[J].中華麻醉學(xué)雜志,2005, 25(6):410-413.
[61]
ALANAZI FK, GELD H,MAQBOULA,et al.Biochemi-cally altered human erythrocytes as a carrier for targeteddelivery of primaquine:an in vitro study[J]. Arch PharmRes , 2011, 34( 4) : 563-571.
[62]
HARISA Gl, IBRAHIM MF , ALANAZl FK. Erythro-cyte-mediated delivery of pravastatin : in vitro , study of ef-fect of hypotonic lysis on biochemical parameters andloading efficiency[J]. Arch Pharm Res , 2012 , 35 ( 8) : 1431- 1439.
[63] BIAGIOTTI S, ROSSI L, BIANCHI M, et al. Immu-nophilin-loaded erythrocytes as a new delivery strategyfor immunosuppressive drugs[J]. J Control Release , 2011 ,154(3) :306-313.
[64]
HE H, YE J, WANG Y, et al. Cell-penetrating peptidesmeditated encapsulation of protein therapeutics into intactred blood cells and its application[J]. J ControZ Release,2014,176(1) : 123-132.
[65]
MAGNANI M, ROSSl L. Approaches to erythrocyte-me- diated drug delivery[J]. Expert Opin Drug Del, 2014,11(5):677-687.
[66] DANIELYAN K, GANGULY K, DING BS, et al.Cerebro-vascular thromboprophylaxis in mice by erythrocyte-cou-pled tissue-type plasminogen activator[J]. Circulation,2008, 118(14):1442-1449.
[67]
ZAITSEV S,SPITZER D, MURCIANO JC, et al. Sus-tained thromboprophylaxis mediated by an RBC-targetedpro-urokinase zymogen activated at the site of clot forma-tion[J]. Blood, 2010, 115( 25): 5241-5248.
[68] ANTONELLIA,SFARAC,BATTISTELLI S,et al.Newstrategies to prolong the iIlvivo life span of iron-basedcontrast agents for MRI[J]. PloS One, 2013,8(10):1-17.
[69] AHN S,JUNG SY, SEOE,et al. Gold nanoparticle-incor-porated human red blood cells( RBCs) for X-ray dynamicimaging[J]. Biomaterials,2011,32( 29):7191-7199.
[70]孫雅楠,馬琳,張彪,等.基于紅細(xì)胞的載藥系統(tǒng)研究進(jìn)展[J].中國(guó)藥科大學(xué)學(xué)報(bào),2015, 46(4):481-487.
(收稿日期:2019-05-07修回日期:2019-12-12)
(編輯:孫冰)
△基金項(xiàng)目:國(guó)家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(No.81874305);國(guó)家重大新藥創(chuàng)制科技重大專項(xiàng)(No.2018ZX09711003-008-001);黑龍江省自然科學(xué)基金面上項(xiàng)目(No.H2017073)
*碩士研究生。研究方向:靶向緩釋給藥系統(tǒng)及新藥開發(fā)。E-mail: 947923758@qq.com
#通信作者:教授,碩士生導(dǎo)師。研究方向:靶向緩釋給藥系統(tǒng)及新藥開發(fā)。E-mail:yangchunrong98@163.com