1.3.3 常規理化指標檢測
干酪素中蛋白質、酪蛋白、脂肪、水分的測定,按照GB31638—2016《食品安全國家標準 酪蛋白》進行。
1.3.4 紅外光譜分析
紅外光譜分析采用KBr片涂布法進行,取2.0 mg凝乳酶干酪素與一定量預先干燥的KBr混合后經均勻研細,再置于模具中,用油壓機上壓成透明薄片;然后用紅外光譜儀在400~4 000 cm-1、分辨率為4 cm-1、掃描次數32次條件下進行掃描。
1.3.5 差示掃描量熱分析
參考WEE 等[12]的方法,對凝乳酶干酪素進行差示掃描量熱分析(differential scanning calorimetry,DSC)。取樣品10.0 mg裝入專用鋁坩堝中,加蓋密封后放入樣品室內,用空坩堝作空白對照,DSC分析在高純N2保護下進行。具體條件為在20 ℃保持3 min,以10 ℃/min的速率升至190 ℃,N2速率是50 mL/min,記錄其熱力學曲線。
2 結果與分析
2.1 單因素實驗結果與分析
2.1.1 酶的種類對出品率的影響
由圖1可知,以小牛皺胃酶作為對照,在相同的酶添加量條件下,不同酶在各自較適宜凝乳條件下對出品率的影響較大。盡管胃蛋白酶的出品率高于木瓜凝乳酶和酵母凝乳酶,但3種酶的出品率均較低。LUCEY等[13]認為,凝乳酶干酪素制備中最重要的環節就是酶促進蛋白的凝結過程,由于選用凝乳酶種類不同,其凝乳特性和蛋白水解特性會有所差異,從而影響干酪素的出品率。YAN等[14]也認為,凝乳酶通常都是酸性蛋白酶,具有一定的蛋白水解活性,在凝乳過程要防止蛋白的過度水解。因此,胃蛋白酶、木瓜凝乳酶和酵母凝乳酶制備的干酪素出品率都偏低,可能與酪蛋白被其水解有關。由于不同蛋白酶之間存在相互抑制作用,而且3種酶都是酸性蛋白酶,因此,在后續實驗中考慮將3種酶按適宜比例混合進行凝乳以提高出品率。

圖1 不同種類酶對出品率的影響

圖2 凝乳時間對出品率的影響
2.1.2 凝乳時間對出品率的影響
在pH 6.0、40 ℃、混合酶質量分數1%、CaCl2質量分數1%條件下,研究凝乳時間對出品率的影響,結果如圖2所示。
由圖2可知,凝乳時間在20~30 min時,隨著凝乳時間延長,出品率快速上升;在凝乳時間為30 min時達到最高,但凝乳時間超過30 min后,出品率隨著凝乳時間延長而下降。這是因為凝乳時間較短,酪蛋白凝固不充分,出品率相對較低;而混合酶本身是蛋白酶,凝乳時間太長,混合酶可能會對酪蛋白進行降解,導致出品率下降[15]。HAROUN等[16]以駱駝乳和牛乳為原料,利用駱駝胃蛋白酶制備干酪素時證實,凝乳時間太長,蛋白酶的凝結作用下降,水解蛋白質的能力會增強,導致出品率降低。因此,本試驗適宜凝乳時間為30 min。
2.1.3 凝乳溫度對出品率的影響
在pH 6.0、30 min、混合酶質量分數1%、CaCl2質量分數1%條件下,研究凝乳溫度對出品率的影響,結果見圖3。
由圖3可知,凝乳溫度在35~45 ℃,出品率隨著溫度上升而增加;在凝乳溫度為45 ℃時,出品率最高;當溫度超過45 ℃時,出品率隨著溫度上升而下降。通常溫度對酶促反應的影響有兩方面,一方面是在一定溫度范圍內,隨著反應溫度上升,單位時間內酶與底物分子間接觸頻率增加,酶促反應速度加快;另一方面是由于酶的本質是蛋白質,反應溫度過高,酶蛋白發生變性,其活性減弱從而降低酶促反應速度,導致出品率下降。酶促反應的最適溫度就是這2個過程平衡的結果。張衛兵等[17]以新鮮牛乳為原料,采用細菌凝乳酶作制備干酪素時也發現,隨著溫度升高干酪素得率先上升后下降,與本研究結果類似。因此,本試驗適宜酶解溫度為45 ℃。

圖3 凝乳溫度對出品率的影響

圖4 凝乳pH對出品率的影響
2.1.4 凝乳pH對出品率的影響
在凝乳時間30 min、45 ℃、混合酶質量分數1%、CaCl2質量分數1%條件下,研究凝乳pH對出品率的影響,結果如圖4所示。
由圖4可知,在pH 5.4~6.3,出品率隨著凝乳pH的升高而增加;在pH 6.3時出品率最高;當pH超過6.3時,出品率隨pH升高而下降。這可能與混合酶的最適酶解pH有關,過高或過低的pH都會對酶的結構產生影響,甚至使酶變性而失活,從而導致凝乳效果下降。而適宜的pH可以促進酶和底物之間的結合,改善凝乳效果,從而提高干酪素的出品率[18]。紀銀莉等[19]在以“曲拉”為原料,采用微小毛霉凝乳酶為凝乳劑制備干酪素時也認為,凝乳pH直接影響凝乳酶的活力,過低或過高的pH都會對凝乳酶活性有抑制作用,影響出品率。因此,本試驗適宜凝乳pH為6.3。
2.1.5 混合凝乳酶添加量對出品率的影響
在pH 6.3、30 min、45 ℃、CaCl2質量分數1%的條件下,研究混合凝乳酶添加量對出品率的影響,結果如圖5所示。
由圖5可知,酶添加量在0.4%~1%,隨著凝乳酶添加量的增加,干酪素出品率呈上升趨勢;酶質量分數在1%時,出品率達到最高值;當酶質量分數超過1%以后,繼續增加酶添加量,出品率則降低。HSIEH等[20]研究認為凝乳酶主要是通過水解κ-酪蛋白中的Phe105-Met106的肽鍵,生成κ-酪蛋白巨肽和副κ-酪蛋白;當大量κ-酪蛋白被水解時,通過Ca2+的作用,使副κ-酪蛋白發生聚集形成三維網狀凝膠。因此凝乳酶添加量較少時,κ-酪蛋白水解不充分,凝乳緩慢,出品率較低。當酶濃度過高,凝乳速度加快,但形成的凝塊彈性較差、易碎,水洗時容易造成損失。此外,酶濃度過高,酪蛋白容易被徹底水解為多肽和氨基酸,導致干酪素出品率降低。HORNE等[21]認為,凝乳酶的本質是蛋白酶,添加過量會對底物蛋白產生水解作用,凝乳酶的添加應充分考慮凝乳酶的凝固作用,避免水解酪蛋白。李學朋等[22]在用米黑毛霉制備酶凝干酪素時證實,酶添加量對干酪素的出品率影響較大,與本研究結果類似。因此,本試驗適宜添加凝乳酶質量分數為1%。

圖5 凝乳酶添加量對出品率的影響

圖6 CaCl2添加量對出品率的影響
2.1.6 CaCl2添加量對出品率的影響
在pH 6.3、30 min、45 ℃、混合凝乳酶質量分數為1%條件下,研究CaCl2添加量對出品率的影響,結果如圖6所示。
由圖6可知,在添加CaCl2質量分數0.4%~1%,隨著CaCl2添加量的增加,干酪素出品率增加;CaCl2質量分數為1%時,出品率最高;繼續添加CaCl2,出品率變化不大。通常Ca2+通過增強靜電吸附作用,在副酪蛋白分子間形成“鈣橋”以促進酪蛋白膠體完成凝聚過程[23]。當Ca2+濃度較低時,鈣橋形成不完全,影響凝乳效果。因此隨著Ca2+的添加,出品率增加。SMIALOWSKA等[24]研究認為Ca2+不僅參與乳的凝固過程,而且還能穩定凝乳酶的三維結構,保護酶凝乳活性,使凝乳速度加快。當Ca2+濃度超過一定量時,對凝乳效果影響不大。因此,本試驗適宜的添加CaCl2質量分數為1%。
2.2 混料試驗結果與分析
2.2.1 混料試驗模型的建立
通過Design-expert 11.0軟件中混料試驗設計原理,以胃蛋白酶添加比例(A)、木瓜凝乳酶添加比例(B)和酵母凝乳酶添加比例(C)為自變量,以出品率(Y)為響應值,將3種酶百分含量分別限定在0.1≤A<1,0.1≤B<1,0.1≤C<1范圍內,且A+B+C=1(100%)。經過軟件自動優化處理后,約束條件分別被修訂為0.1≤A≤0.8、0.1≤B≤0.8和0.1≤C≤0.8,生成各因素的試驗方案進行試驗,結果如表1所示。

表1 混料設計試驗方案及結果
通過軟件對表1的數據進行優化分析,得到Y與A、B和C之間回歸方程模型如下:
Y=68.25A+40.41B+44.58C+15.96AB+34.85AC+7.26BC+211.54ABC+107.87(A-B)+100.95(A-C)-74.30(B-C)
2.2.2 混料試驗模型的顯著性檢驗
對混料設計得到的回歸方程模型進行方差分析,對模型系數進行顯著性檢驗,結果如表2所示。

表2 回歸方程方差分析結果
注:P<0.05表示差異顯著,標注為*;P<0.01表示差異極顯著,標注為**
由表3可知,該回歸方程模型極顯著(P<0.01),說明該回歸方程的因變量與自變量之間的相關關系顯著,其中A、B、C、AB、AC、BC、ABC、A-B、A-C、B-C對試驗結果的影響顯著(P<0.05)或極顯著(P<0.01),表明各個試驗因素對響應值不是簡單的線性關系,而是二次拋物線關系。失擬項檢測不顯著(P>0.05),表明該方程對試驗的擬合情況好,誤差小,可以用該方程對不同條件下的提取效果進行分析和預測。由表3可知,ABC三因素間存在交互作用,對試驗結果影響極顯著(P<0.01)。3種酶交互作用的等高線圖和響應面圖如圖7所示。

a-等高線圖;b-響應面圖
由圖7可知,而當胃蛋白酶用量較高,木瓜凝乳酶和酵母凝乳酶用量較少時,出品率較高,為75%左右。當木瓜凝乳酶用量較高,胃蛋白酶和酵母凝乳酶用量較少,或酵母凝乳酶用量較高,胃蛋白酶和木瓜凝乳酶用量較少時,出品率約為45%,可見3種酶以不同比例混合對出品率影響顯著。KRUIF等[25]認為,酶凝干酪素出品率的差異主要與酶對酪蛋白的凝結特性和分解活性的差異有關,凝乳酶凝結性強,分解性弱,則出品率較高。HUPPERTZ等[26]和JACOB等[27]認為,混合酶制備干酪素的核心是如何確定不同凝乳酶的比例,而凝乳酶干酪素凝膠是一種蛋白質凝膠,其形成主要是因為蛋白質分子的聚集作用,同時也是變性的蛋白質分子間吸附和水解相平衡的結果。本研究表明3種酶在凝乳過程中,胃蛋白酶起到了主導作用,而胃蛋白酶對蛋白質的分解作用可能被木瓜凝乳酶和酵母凝乳酶抑制。由于木瓜凝乳酶和酵母凝乳酶同樣具有凝乳活性,但是其對蛋白質的降解能力更強。而胃蛋白酶的使用能夠對木瓜凝乳酶和酵母凝乳酶降解蛋白質的能力產生抑制,因此木瓜凝乳酶和酵母凝乳酶對出品率同樣有所貢獻。由于圖7中的響應面圖出現了曲面,表明3種酶之間存在交互作用。因此在凝乳過程中,將3種酶按照適宜配比后組成的混合酶系對凝乳酶干酪素的制備可產生協同作用,顯著提高出品率。
2.2.3 驗證試驗
通過Design expert 11.0軟件對模型方程進行求解,得出理想的混合酶配比為m(胃蛋白酶)∶m(木瓜凝乳酶)∶m(酵母凝乳酶)=0.60∶0.18∶0.22,即胃蛋白酶添加質量分數60%、木瓜凝乳酶添加質量分數18%及酵母凝乳酶添加質量分數22%,此時理論出品率為81.77%。為了驗證該配比的可靠性,通過3次驗證試驗,得到的出品率平均值為(80.35±0.62)%,與理論預測值基本吻合。這也表明將胃蛋白酶、木瓜凝乳酶和酵母凝乳酶按比例混合后進行凝乳酶干酪素的制備,其出品率明顯高于單一酶的出品率。
2.3 理化指標檢測結果與分析
將本實驗獲得的凝乳酶干酪素和小牛皺胃酶干酪素進行理化指標檢測,結果如表3所示。

表3 產品理化指標檢測 單位:g/100g
由表3可知,本實驗獲得的凝乳酶干酪素的蛋白質、酪蛋白、脂肪、水分等指標與小牛皺胃酶干酪素差異不顯著(P>0.05),而且均符合GB31638—2016《食品安全國家標準 酪蛋白》的要求,這表明本實驗獲得的凝乳酶干酪素質量較好,具有開發前景。
2.4 紅外光譜分析
將小牛皺胃酶制備的干酪素和混合酶制備的干酪素用傅立葉變換紅外光譜儀進行官能團檢測分析,結果如圖8所示。

a-混合酶;b-小牛皺胃酶

2.5 DSC分析
將小牛皺胃酶制備的干酪素和混合酶制備的干酪素采用差示掃描量熱儀進行熱力學分析,結果如圖9所示。

a-混合酶;b-小牛皺胃酶
由于加熱能夠使蛋白質的結構發生變化而導致其功能受到影響,因此研究食品蛋白質的熱穩定性對于蛋白質的合理利用具有重要意義。對于DSC而言,在熱分析圖譜上出現吸熱峰可以表示該點處在蛋白質熱變性溫度區,而且這個峰值對應的溫度即為該樣品的熱變性溫度[29]。由圖9可知,2種方法制備干酪素的變性焓值(ΔH)也很接近,分別為165.1和165.5 J/g,表明2種方法制備干酪素在變性時吸入的熱量相似。熱分析曲線在123 ℃附近均出現1個主要的吸熱峰,這可能是干酪素的變性溫度。由于蛋白質的穩定性與蛋白質變性溫度的高低密切相關,變性溫度越高標志蛋白質的熱穩定性越好。因此,干酪素具有相對較好的熱穩定性。此外,2種方法制備的干酪素的熱分析曲線形狀和峰型均相似,表明酶法制備干酪素的工藝沒有對其熱力學性質產生影響。
3 結論
以牦牛“曲拉”為原料,通過單因素試驗和混料設計,確定了混合酶法制備干酪素的最優工藝條件為:添加混合酶質量分數1%(其中胃蛋白酶∶木瓜凝乳酶∶酵母凝乳酶的質量比為0.60∶0.18∶0.22),在pH 6.3、溫度45 ℃、CaCl2質量分數1%條件下,凝乳30 min,出品率為(80.35±0.62)%,通過驗證試驗,證實了該工藝具有可靠性。
通過對本實驗獲得干酪素與小牛皺胃酶干酪素進行對比分析,結果表明,混合酶法制備干酪素的理化性質、紅外光譜特性和熱力學性質與小牛皺胃酶干酪素差異不顯著,而且符合GB31638—2016《食品安全國家標準 酪蛋白》的要求,這表明本實驗獲得的凝乳酶干酪素質量較好,具有開發價值。
因此,采用混料設計優化混合酶制備干酪素,所需工藝設備簡單、提取條件溫和、操作安全,可為凝乳酶干酪素的生產提供參考。