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右美托咪定對大鼠機械通氣相關(guān)肺損傷時小窩蛋白-1表達(dá)的影響

2020-07-06 06:32:28王華孟志鵬宋鵬濤劉靜趙燕
浙江醫(yī)學(xué) 2020年12期
關(guān)鍵詞:信號研究

王華 孟志鵬 宋鵬濤 劉靜 趙燕

機械通氣是急性呼吸窘迫綜合征等危重患者呼吸治療的主要手段,也是全麻患者術(shù)中生命安全不可或缺的保障措施;但是機械通氣相關(guān)肺損傷(ventilator-induced lung injury,VILI)等并發(fā)癥不可避免[1]。Toll樣受體 4(TLR4)/核因子-κB(NF-κB)信號通路介導(dǎo)的炎癥反應(yīng)是VILI發(fā)生、發(fā)展、轉(zhuǎn)歸的核心環(huán)節(jié)[2]。因此,阻斷TLR4/NF-κB信號通路、抗炎是防治VILI的關(guān)鍵。右美托咪定(dexmedetomidine,Dex)是一種新型高選擇性α2腎上腺素能受體激動劑,本課題前期研究證明Dex具有特異性抗炎并發(fā)揮肺保護(hù)的作用[3],有研究揭示Dex減輕大鼠VILI的機制與不同程度抑制TLR4介導(dǎo)的細(xì)胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路、減輕肺部炎性反應(yīng)密不可分[4-5]。研究表明,小窩蛋白-1(caveolin-1,Cav-1)參與機體病理、生理變化,如作用于TLR4信號通路而抑制機體炎性反應(yīng)[6],在調(diào)控體內(nèi)炎性反應(yīng)方面起到不可或缺的作用[7]。本研究旨在觀察Cav-1在Dex干預(yù)大鼠VILI時表達(dá)的變化,進(jìn)一步明確Dex減輕肺損傷的機制。

1 材料和方法

1.1 動物分組與模型制備 體重225~280g、清潔級成年健康雄性SD大鼠30只,由浙江省醫(yī)學(xué)科學(xué)院動物實驗中心提供[動物使用許可證號:SYXK(浙)2014-0001],按照實驗動物使用和管理指南進(jìn)行喂養(yǎng)和處理。恒溫環(huán)境中適應(yīng)性飼養(yǎng)1周。按隨機數(shù)字表法分為3組,每組10只:對照組(C組)、VILI組(V組)、Dex預(yù)注射+VILI組(DV組)。實驗大鼠自由飲水、禁食12h,股靜脈穿刺、置管、建立液體通道,200μg Dex(規(guī)格:200μg:2ml,批號:16100932,江蘇恒瑞醫(yī)藥股份有限公司)溶解于40ml 0.9%氯化鈉注射液中配置成5μg/ml Dex注射液(依據(jù)文獻(xiàn)[8]選擇Dex最佳劑量),DV組大鼠按1ml/kg經(jīng)股靜脈注射Dex注射液,C組、V組注射等量的0.9%氯化鈉注射液進(jìn)行對照;然后DV組按1ml/(kg·h)的速率持續(xù)靜脈泵注Dex注射液,C組、V組按相同速率持續(xù)靜脈泵注0.9%氯化鈉注射液,直至機械通氣期結(jié)束。20min后腹腔注射戊巴比妥鈉充分麻醉大鼠,然后置于棉墊上,仰臥位固定,備皮、消毒后行氣管切開術(shù),插入自制氣管導(dǎo)管(靜脈穿刺針套管),氣管插管成功后C組大鼠保留自主呼吸4h,V組、VD組行機械通氣4h,使用小動物專用呼吸機(美國Harvard公司),按文獻(xiàn)[9]設(shè)置通氣頻率40次/min、潮氣量40ml/kg、吸呼比1:1、吸入氣中的氧濃度分?jǐn)?shù)(FiO2)21%,維持呼氣末CO2分壓在35~45mmHg。4h后采取動脈快速放血法處死大鼠,迅速分離兩側(cè)肺組織并完全取出,絲線縫扎右主支氣管,灌胃針抽取3ml;4℃0.9%氯化鈉溶液灌洗左肺3次,回收全部支氣管肺泡灌洗液(BALF),保證回收率達(dá)到80%。

1.2 肺損傷定量評價指標(biāo)(IQA)檢測 取大鼠右肺上葉組織,常規(guī)4%多聚甲醛固定、包埋、切片、蘇木素-伊紅(HE)染色。根據(jù)文獻(xiàn)[10]的方法,在光學(xué)顯微鏡(×200)50個視野下計算損傷的肺泡數(shù)目占肺泡總數(shù)的比例,即IQA。

1.3 肺組織濕干比(W/D)檢測 取大鼠右肺下葉組織,用濾紙立即吸盡其表面附著的殘余血液、水分,稱其重量為濕重(W);然后置于70℃烤箱烘烤、脫水48h直至重量不再改變,取出再次稱其重量為干重(D);計算兩者比值,即W/D。

1.4 BALF中clara細(xì)胞分泌蛋白16(clara cell protein-16,CC-16)及炎癥因子濃度檢測 采用ELISA法。BALF在低溫下離心10min(1 200r/min,離心半徑10cm),取上清液。使用試劑盒(美國R&D公司)測定BALF中CC-16、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、白細(xì)胞介素(IL)-1β、IL-6濃度,嚴(yán)格按照說明書進(jìn)行操作。

1.5 肺組織Cav-l、TLR4及NF-κB蛋白相對表達(dá)量檢測 采用鏈霉菌抗生物素蛋白-過氧化物酶(SP)法。取左肺上葉組織,多聚甲醛溶液固定,嚴(yán)格按照SP免疫組化試劑盒(北京中杉金橋公司)說明書進(jìn)行免疫組化染色。免疫組化反應(yīng)陽性產(chǎn)物為淡黃色、棕黃色或棕褐色顆粒。每個標(biāo)本觀察2張病理切片,每張切片隨機選擇5個不同視野,Olympus相機拍照;利用Image-pro plus 6.0圖像軟件分析每張照片的累積吸光度值和面積,計算5個視野的平均吸光度值。平均吸光度值=累積吸光度值/面積,即目的蛋白相對表達(dá)量。

1.6 肺組織Cav-l、TLR4、NF-κB mRNA相對表達(dá)量檢測 采用逆轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)(RT-PCR)法。液氮研磨肺組織后,Trizol法提取總RNA,肺組織中RNA濃度用紫外分光光度計測定。采用兩步法RT-PCR試劑盒進(jìn)行擴(kuò)增反應(yīng),將RNA逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,嚴(yán)格按照試劑盒說明進(jìn)行操作,引物序列見表1。采用25μl反應(yīng)體系,擴(kuò)增條件:95℃預(yù)變性 5min;95℃ 1min,56℃40s,72℃40s,循環(huán) 40次;72℃延伸 10min;4℃保存。使用 RTPCR儀(Light Cyeler 480,美國Roche公司)檢測各樣本的域值循環(huán)數(shù)(CT)值,利用△CT法計算目的基因mRNA相對表達(dá)量。

表1 目的基因引物序列

1.7 統(tǒng)計學(xué)處理 應(yīng)用SPSS 19.0統(tǒng)計軟件。計量資料用表示,多組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用SNK-q檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 3組大鼠IQA及W/D比較 與C組比較,V組、

DV組IQA、W/D均明顯升高(均P<0.05);與V組比較,

DV組IQA、W/D均明顯下降(均P<0.05),見表2。

表2 3組大鼠IQA及W/D比較

2.2 3 組大鼠 BALF 中 CC-16、TNF-α、IL-1β、IL-6 濃度比較 與C組比較,V組、DV組CC-16、TNF-α、IL-1β、IL-6濃度均明顯升高(均 P<0.05);與 V 組比較,DV組 CC-16、TNF-α、IL-1β、IL-6 均明顯下降(均 P<0.05),見表3。

2.3 3組大鼠肺組織Cav-1、TLR4、NF-κB蛋白相對表達(dá)量比較 與C組比較,V組、DV組Cav-1蛋白相對表達(dá)量均明顯降低,TLR4、NF-κB蛋白相對表達(dá)量均明顯升高,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05);與V組比較,DV組Cav-1蛋白相對表達(dá)量明顯升高,TLR4、NF-κB蛋白相對表達(dá)量均明顯降低,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均 P<0.05),見表 4。

2.4 3組大鼠肺組織 Cav-1、TLR4、NF-κB mRNA 相對表達(dá)量比較 與C組比較,V組、DV組Cav-1 mRNA相對表達(dá)量均明顯降低,TLR4、NF-κB mRNA相對表達(dá)量均明顯升高,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05);與V組比較,DV組Cav-1 mRNA相對表達(dá)量明顯升高,TLR4、NF-κB mRNA相對表達(dá)量均明顯降低,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),見表5。

3 討論

VILI是一種常見的直接肺損傷,機械應(yīng)力作用于肺組織后會改變細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)及體內(nèi)與之相關(guān)的多種信號酶鏈,可引起肺血管內(nèi)皮和肺泡上皮直接損傷等病理變化,受損的肺組織瀑布樣釋放透明質(zhì)烷、高遷移率族蛋白等導(dǎo)致TLR4被激活,而活化的TLR4/NF-κB信號通路會引發(fā)一系列趨化因子、促炎因子蓄積、炎癥介質(zhì)釋放,應(yīng)力性肺損傷轉(zhuǎn)化肺部炎癥失衡性生物傷[11]。本研究依據(jù)文獻(xiàn)[9]介紹的方法,采用潮氣量40ml/kg機械通氣4h制備大鼠VILI模型。VILI組BALF中CC-16濃度明顯升高,肺組織內(nèi)過量炎性細(xì)胞浸潤、肺泡結(jié)構(gòu)破壞、肺泡壁增厚、肺泡腔增大等改變提示模型制備成功。

CC-16是由clara細(xì)胞和肺泡上皮細(xì)胞分泌的一種特異性功能蛋白,因其分子量小、易入血液循環(huán)的特點,常被用作反映肺-血管屏障功能及肺損傷嚴(yán)重程度的指標(biāo)[12]。有學(xué)者認(rèn)為BALF中炎癥因子TNF-α、IL-6濃度與VILI程度密切相關(guān),VILI早期明顯升高可特異性反映VILI嚴(yán)重程度,或可作為診斷呼吸機相關(guān)肺炎導(dǎo)致的急性肺損傷和(或)急性呼吸窘迫綜合征的潛在生物學(xué)標(biāo)志物[13]。Cav-1是位于細(xì)胞膜小窩內(nèi)表面的的標(biāo)志蛋白和整合蛋白,在調(diào)控炎性反應(yīng)、腫瘤轉(zhuǎn)移等病理過程中發(fā)揮著關(guān)鍵的橋梁作用。它能調(diào)節(jié)炎癥細(xì)胞和炎癥因子的產(chǎn)生,通過調(diào)控炎癥細(xì)胞的廣泛釋放來改善呼吸系統(tǒng)病情[14]。既往研究表明,Cav-1還可以調(diào)節(jié)人氣道上皮細(xì)胞TLR4/NF-κB信號通路活性[15-16]。然而,Cav-1在VILI病理、生理過程中的作用尚未闡明,目前存在一定的爭議。

眾所周知,Dex具有特異性抗炎、臟器保護(hù)等作用,是目前研究熱點。本研究參照文獻(xiàn)[8]并結(jié)合課題前期實驗,DV組選擇5μg/kg預(yù)注射及5μg/(kg·h)劑量持續(xù)靜脈泵注。研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)C組IQA、W/D,CC-16、TNF-α、IL-6 濃度,Cav-1、TLR4、NF-κB 蛋白及 mRNA 相對表達(dá)量均在較低水平,而VILI組IQA、W/D升高,TLR4、NF-κB蛋白及mRNA相對表達(dá)量增加,CC-16、TNF-α、IL-6釋放增多,這表明VILI誘發(fā)了TLR4/NF-κB信號傳遞鏈啟動,炎癥介質(zhì)隨之過量釋放,炎性反應(yīng)失衡導(dǎo)致IQA、W/D升高,導(dǎo)致VILI發(fā)生、發(fā)展。值得注意的是,本研究同時發(fā)現(xiàn)Cav-1蛋白及mRNA相對表達(dá)量隨著肺部機械應(yīng)力性病變明顯下降,與預(yù)實驗和前期研究結(jié)果相符[16]。而Cav-1的重要功能之一是通過調(diào)控TLR4/NF-κB信號通路參與炎性反應(yīng),因此本研究VILI的發(fā)生可能與Cav-1下調(diào)、TLR4/NF-κB活性增強有關(guān)。與V組比較,DV組肺組織Cav-1蛋白及mRNA相對表達(dá)量明顯升高,筆者推測預(yù)注射Dex能改善損傷應(yīng)激導(dǎo)致的Cav-1下調(diào)情況,保證Cav-1能繼續(xù)發(fā)揮抑制TLR4/NF-κB信號通路的作用,減輕炎性反應(yīng),從而減輕大鼠VILI程度,這與Powter等[6]研究結(jié)果一致。但DV組肺損傷情況并未得到完全緩解,這說明炎性反應(yīng)是VILI發(fā)生的關(guān)鍵,但不是唯一機制,其他分子機制的參與仍需進(jìn)一步研究證實。

綜上所述,Dex能上調(diào)大鼠肺組織Cav-1表達(dá),有效抑制TLR4/NF-κB信號通路,減少VILI引起的TNF-α等炎癥因子釋放,減輕肺部炎癥水腫,從而對VILI發(fā)揮保護(hù)作用。Dex減輕肺損傷的機制與上調(diào)Cav-1有關(guān),增加Cav-1表達(dá)可能成為防治VILI藥物作用方向。對于Dex通過何種機制調(diào)控Cav-1表達(dá),有待進(jìn)一步深入研究。

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