李元敏,李 慧,梁小燕,高 靜,沈 霞,顏永剛,李依民,張 崗
(陜西中醫藥大學 藥學院,陜西省秦嶺中草藥應用開發工程技術研究中心,西安 712046)
解旋酶(Helicase)是所有生命體中普遍存在的、具有促進雙鏈DNA/RNA解鏈的驅動蛋白。根據蛋白序列結構域的差異,解旋酶被分為兩個主要的超家族SFⅠ和SFⅡ,其中RNA Helicase(RH)在后者中占比較大[1]。第二個基序具有的氨基酸殘基天冬氨酸-谷氨酸-丙氨酸-天冬氨酸(D-E-A-D)特征的一類RH命名為DEAD-box RNA Helicase(DEAD-box RH)[2]。研究表明,DEAD-box RH主要作為RNA分子伴侶,參與RNA轉錄與翻譯及其他加工修飾等一系列代謝過程[3]。
目前,已有大量關于病毒[4]、細菌[5]和動物[6]DEAD-box RH的研究報道,主要涉及RNA復制周期、細胞增殖和分化等功能,臨床醫學研究揭示RH與腫瘤發生、癌癥發展等密切相關。近年來,該基因在植物分子生理學與植物細胞生理學的研究受到關注。如OsRH2和OsRH34在調控水稻株高、花粉與種子發育方面起重要作用[7]。AtRH7是模式植物擬南芥在冷脅迫下生長發育所必需的條件[8]。蕨類問荊的EaRH1基因序列分析揭示其與植物體生理、生化和非生物脅迫應答等相關[9]。植物RH基因研究涉及的藥用物種數量目前較局限,大多是關于玉米[1]、水稻[7]、番茄[10]等農作物抗逆生理的研究。
蘭科鐵皮石斛DendrobiumofficinaleKimura et Migo為多年生植物,以莖入藥,具有益胃生津、滋陰清熱的功效[11]。其化學成分以多糖、生物堿類為主,同時藥理研究揭示其降低血糖、抗腫瘤、調節機體免疫力等方面的作用機制[12]。前期,課題組構建鐵皮石斛cDNA文庫進行功能基因研究[13],兩條EST C377、C468與植物RH家族成員序列相似性較高。鑒于RH在植物細胞生理過程中的重要作用,本研究利用RACE首次克隆獲得鐵皮石斛RNA解旋酶DoRH1和DoRH2基因全長,并進行序列結構分析及特性預測,為后續該基因在石斛中的分子功能研究奠定基礎。
野生植物材料于2017年10月采自浙江金華,經陜西中醫藥大學張崗教授鑒定為蘭科石斛屬鐵皮石斛D.officinaleKimura et Migo。鐵皮石斛幼苗正值營養生長時期,株高(10±2)cm,取5株幼苗根、莖、葉不同部位樣品,重復3次,置液氮速凍后超低溫保存。
利用RNA試劑盒(北京艾德萊)、RQ1無RNase活性DNA 酶(Promega,美國)、NanoDropTM2000分光光度計(Thermo Fisher,美國),依次進行總RNA的提取、DNA雜質的消除以及RNA質量和純度檢測的操作,利用1.2%瓊脂糖凝膠電泳鑒定RNA完整性。使用M-MLV Reverse Transcriptase kit(Promega,美國)合成cDNA第一鏈。
通過序列分析可知C377編碼的肽段N端和C段均不完整,因此需進行對其兩端進行RACE克隆,C468序列編碼的肽鏈片段在C末端含有58個氨基酸,所以只需操作5′-RACE克隆。使用RACE cDNA Amplification Kit(Clotech,Japan)設計基因特異引物(表1),然后利用設計所得特異引物分別與試劑盒中相應的UPM引物依次組合進行RACE反應。

表1 引物及其序列Table 1 Primers and sequence

使用在線相關分析工具對DoRH1和DoRH2基因進行核酸及蛋白序列分析。在 NCBI的BLASTx和ORF Finder分別對cDNA序列分析;用ExPASy Proteomics Server的一系列程序工具對2個基因編碼蛋白質的結構域和基元分析;使用Protparam和SOPMA相互對比分析蛋白理化特性和二級結構;SignalP 4.1和TMHMM推測其是否存在信號肽序列或跨膜域的個數;Plant-mPLoc預測亞細胞定位。使用DNASTAR 6.0軟件中的MegAlign程序對同家族蛋白之間進行多序列比對;借助MEGA 6.0軟件構建系統進化樹。

經過兩次巢式RACE反應,C377F2、C468R2′與UPM組合擴增分別獲得預期單條帶(圖1),經克隆測序獲得長1 578、1 595 bp的兩條序列,均包含完整的開放閱讀框(open reading frame,ORF),無需進行RT-PCR驗證。分別拼接相應的RACE產物和原始EST得到兩條cDNA序列分別長為1 648 bp和1 851 bp。通過BLASTx比對發現兩條序列與已注冊的多種植物RH家族成員基因的一致性評價較高(>83%),故此定名分別為DoRH1和DoRH2,提交GenBank獲得注冊號分別為KT957555和KT957556。序列分析顯示,DoRH1與DoRH2兩序列的完整ORF分別長1 287 bp、1 500 bp,其中二者的 5′-UTR和3′-UTR分別為75 bp和 286 bp及62 bp和289 bp;且在兩條序列中均含有真核生物特有的polyA尾巴結構,起始密碼子附近堿基序列分別為AGAATGG、GTCATGA,DoRH1符合KOZAK規則[16]。

M.DL 2000; 1.DoRH1-5′ RACE;2.DoRH1-3′RACE;3.DoRH2-5′RACE
Compute pI/MW預測DoRH1和DoRH2基因編碼蛋白的分子式分別為C2135H3405N581O641S23和C2458H3903N695O737S14,相對分子質量分別為48 206和55 432,等電點分別為5.51和8.65;DoRH1和DoRH2蛋白所帶正電殘基(Arg+Lys)為51和68,負電殘基(Asp+Glu)為68和64。兩個蛋白的不穩定系數(Instability index)為41.01和39.56,脂肪系數(Aliphatic index)為94.49和82.08,親水性系數(Grand average of hydropathicity)為-0.197和-0.430。SOPMA分析表明,DoRH1和DoRH2的二級結構主要由延伸鏈(16.59%和16.63%)、α-螺旋(45.09%和32.46%)、隨機卷曲(31.07%和42.69%)及β-轉角(7.24%和8.22%)組成。
利用InterProScan與PROSITE的在線分析預測結果一致表明(圖2), DoRH1和DoRH2蛋白均含有3個保守的RH結構域,分別為 Q_MOTIF(DEAD-box RNA解旋酶Q基序)、 HELICASE_ATP_BIND_1(超家族1和2解旋酶ATP結合型-1結構域)、HELICASE_CTER(超家族1和2解旋酶C末端結構域)。PROSITE SCAN分析表明,兩個蛋白均含有不同氨基酸位點的蛋白家族基元(表2)。使用SignalP 4.1和TMHMM在線分析一致表明,兩個蛋白信號肽或跨膜域,同時Plant-mPLoc預測兩個蛋白均定位在細胞核。

圖2 DoRH1和DoRH2蛋白的PROSITE分析Fig.2 PROSITE analyses of DoRH1 and DoRH2 proteins

表2 DoRH1和DoRH2蛋白序列的保守基元Table 2 Conserved motifs of DoRH1 and DoRH2 proteins
借助DNAStar 6.0軟件中的MegAlign對RH家族的兩個目的蛋白和其他植物蛋白進行多序列比對(圖3-A、3-B)。數據分析顯示,DoRH1與葡萄Vitisvinifera(XP_002268833)、可可Theobromacacao(EOY29499)、番木瓜Caricapapaya(XP_021912509)和芝麻Sesamumindicum(XP_011070464)的相似性分別高達94%、95%、95%和95%。DoRH2與中華獼猴桃Actinidiachinensisvar.chinensis(PSS18057)、葡萄Vitisvinifera(XP_002268823)、苦瓜Momordicacharantia(XP_002279117)和柑桔Citrussinensis(XP_006466042)等蛋白的相似性分別高達86%、85%、84%和84%。此外,兩個蛋白各有3個保守的RH結構域,符合DEAD-box RNA helicases家族的結構特點。
為分析鐵皮石斛DoRH1、DoRH2基因編碼蛋白的分子進化關系,采用MEGA 6.0軟件鄰接法(Neighbour-Joining)從利用phytozome數據庫選取擬南芥、水稻、大豆和雷蒙德氏棉等4種植物的部分DEAD-box RNA helicase蛋白家族成員[17],構建分子進化樹。對比擬南芥進化樹發現Ⅲ支中AT2G45810(AT2G45810.1)、AT4G00660(AT4G00660.1、AT4G00660.2)、AT3G61240(AT3G61240.1、AT3G61240.2)分別被命名為ATRH6、ATRH8、ATRH12;Ⅳ支中AtRH20 (AT1G55150.1) DEAD-box解旋酶是酵母Dbp2 DEAD-box解旋酶的直系同源物,同支水稻基因LOC_Os01g68320.1、LOC_Os01g68320.2、LOC_Os01g10050.1、LOC_Os01g10-050.2均具有相同的Dbp2基因,系Dbp2 DEAD-box解旋酶[18]。從圖4可以看出,所選RH蛋白被聚成Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ 4小支;目標DoRH1、DoRH2蛋白分別聚在Ⅲ、Ⅳ支。

Vv.葡萄;Cp.番木瓜; Si.芝麻;Tc.可可豆;Do.鐵皮石斛;Acc.中華獼猴桃;Cs.柑桔;Mc.苦瓜;實線為2個RH結構域,1.DEAD-box RNA解旋酶Q基序譜;2.超家族1和2解旋酶ATP結合型-1結構域;3.超家族1和2解旋酶C末端結構域
分別提取鐵皮石斛根、莖、葉各樣品總RNA,借助qPCR檢測2個基因的不同組織表達特性。由圖5可見,DoRH1和DoRH2基因轉錄本在3種組織中的相對表達量有差異,但基因表達趨勢類似,二者均在根中高豐度表達。DoRH1在根中的相對表達量為葉中的1.26倍,而在莖中為葉中的0.76倍;DoRH2在根中的相對表達量為葉中的3.26倍,莖中與葉中的表達量近似,僅葉中的1.04倍。
DEAD-box RNA解旋酶通過NTP(大多為ATP)水解產生能量來修飾RNA,廣泛參與RNA生物化學反應各個過程,在細胞核內主要參與核糖體發生、轉錄和mRNA前體剪接,胞質中主要參與miRNA加工、無義突變介導的mRNA降解、蛋白翻譯和細胞器特異的RNA代謝等[19]。目前已有玉米[1]、水稻[7]和擬南芥[8]等植物中DEAD-box RNA解旋酶家族基因的系統研究,揭示其在植物生長發育和生理適應中的作用。本研究首次從鐵皮石斛中分離到DoRH1和DoRH2基因全長,與GenBank中已注冊的植物DEAD-box RNA解旋酶家族成員基因一致性很高,2個基因編碼蛋白各有3個保守域,如DEAD-box RNA解旋酶Q基序,符合其家族高度保守的特征[1]。2個蛋白預測都定位在細胞核,可能參與細胞核生化反應,與已報道中DEAD-box RNA解旋酶主要作用于核RNA加工的研究相符合[20]。

以AT、LOC_Os、Glyma和GRMZM起始的符號分別為擬南芥、水稻、大豆和雷蒙德氏棉的RH基因注冊號

圖5 q-PCR分析 DoRH1和 DoRH2基因的組織表達Fig.5 Tissue-specific expression of DoRH1 and DoRH2 genes using q-PCR analysis
進化樹分析2個鐵皮石斛RH基因分別聚為Ⅲ、Ⅳ兩大支,Ⅲ支中ATRH6會受低溫誘導,ATRH8是馬鈴薯屬病毒VPg(Viral genome-linked protein)蛋白感染過程中所需要的一個宿主因子,幫助病毒復制,若敲除后會使植物體不僅在表型上與野生型無異,還會在被病毒侵染過程產生抗性[19]。Ⅳ支中AtRH20與Dbp2蛋白功能在tombusvirus家族TBSV病毒(Tomatobushystuntvirus)的復制中具有高度相似性,均促進RNA病毒復制[21];據報道在該病毒天然宿主植物番茄、模式植物擬南芥以及菠菜植株體內感染TBSV病毒后,植物的表型均發現明顯的發育畸變,生長發育遲緩,葉量濃密,葉子尺寸變小且卷曲,基部葉片褪綠呈紫色,果實產量大大降低且多無籽[22]。因此,推測DoRH1、DoRH2參與石斛特殊生境下的生理適應,其具體作用方式仍需要深入研究。
解析基因功能多樣性的首要工作是對基因表達差異的研究。DEAD-box RNA helicase家族成員的基因表達具有組織表達、時空表達或響應脅迫等特點,功能涉及到植物生長發育和抗逆生理性等多方面[23]。擬南芥中有多個DEAD-box家族基因參與抗逆,其中AtRH38和AtRH42是對溫度脅迫反應最具典型的代表[19]。對玉米配子體細胞質雄性不育系分析發現,ZmRH2表達在葉、根和雌穗3個器官中無明顯差異,而對于花絲和花粉器官中的表達明顯可育系高于不育系S-Mo17rf3rf,說明ZmRH2參與可育系花粉發育調控[1]。PRH75基因在菠菜下胚軸、根和頂芽等器官中表達水平較高,在葉子發育進程中明顯下降,表明PRH75與葉細胞的快速增殖和分裂有關[24]。在本研究中,qPCR對DoRH1和DoRH2基因檢測分析發現,DoRH1不具有器官表達差異,推測參與在石斛各器官本底的生長發育;DoRH2在各器官中表達豐度差異明顯,依次為根>莖>葉,推測在根中發揮重要的調控作用。由此可見,多基因家族成員通過協同表達調控發揮基因功能。當然,更具體確切的作用機制還需進一步研究。鐵皮石斛作為珍稀傳統名貴中藥材,臨床療效顯著,具有可觀的經濟價值;但其生長環境條件特殊,表現出一定的生理適應。后續通過RNAi或過表達研究DoRH1和DoRH2的分子作用,為石斛資源可持續控制與利用提供 支撐。